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.2002年10月1日;99(20):12801-6.
doi:10.1073/pnas.202477599。 Epub 2002年9月12日。

生长因子剥夺期间线粒体呼吸控制丧失

附属公司

生长因子缺乏期间线粒体呼吸控制丧失

埃亚尔·戈特利布等。 美国国家科学院院刊. .

摘要

细胞保持生物能量上有利的ATP/ADP比率的能力,使消耗ATP的细胞事件和ATP生成速率之间保持紧密平衡。然而,在退出生长因子后,细胞ATP/ADP比率下降。为了研究这些变化,体外对凋亡开始前分离的生长因子衍生细胞的线粒体进行了表征。生长因子缺乏细胞的线粒体已经失去了对ADP进行基质浓缩的能力,这伴随着ADP偶联呼吸的失败。在分析时,生长因子衍生细胞的线粒体没有耗尽细胞色素c,细胞色素c依赖的呼吸也没有受到影响,这表明呼吸速率的抑制不是由于细胞色素c的丢失。破坏线粒体外膜的药物,如洋地黄素、,或维持腺嘌呤核苷酸(如Bcl-x(L))的外膜交换,恢复ADP依赖的线粒体呼吸控制。总之,这些数据表明线粒体外膜通透性的调节有助于呼吸控制。

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图1
图1
从IL-3分泌细胞分离的线粒体对还原底物有反应,但对ADP无反应。将细胞在有或无IL-3的条件下保存12 h。分离线粒体,将其单独放置在反应缓冲液中(无底物=状态1)或与琥珀酸盐(+琥珀酸=状态4)或琥珀酸和ADP(+琥珀酸盐+ADP=状态3)一起放置5 min,然后进行固定和EM分析。暗区(较高的电子密度)对应于基体。
图2
图2
来自IL-3脱附细胞的线粒体显示ADP-耦合呼吸减少。(A类)细胞在有或无IL-3的条件下维持12小时,然后分离线粒体。将线粒体(500μg)稀释到含有鱼藤酮和琥珀酸盐的反应缓冲液中,并记录氧含量。记录状态4呼吸200秒,然后添加ADP以诱导状态3呼吸。(B类)从对照(+IL-3)或IL-3缺失(-IL-3)细胞分离的线粒体在状态4和状态3下的耗氧速率。结果是3个独立实验的平均值和标准偏差。
图3
图3
细胞色素c(c)IL-3戒断后RCR的下降不能用IL-3的损失来解释。(A类)细胞色素c(c)-使用在有或无IL-3条件下生长12小时的细胞线粒体测量依赖性呼吸。分离后,线粒体(500μg)在抗霉素A存在下稀释到反应缓冲液中。如有指示,TMPD和抗坏血酸作为细胞色素的电子供体c(c),添加到腔室中。(B类)在存在或不存在外源细胞色素的情况下,从对照(+IL-3)或IL-3缺失(−IL-3)细胞分离的线粒体的琥珀酸介导呼吸的RCRc(c)制备线粒体并进行分析,如图2所示。(C类 上部)从存在IL-3的细胞中分离出线粒体,并与tBid或不与tBid孵育5分钟(下部)在存在或不存在外源细胞色素的情况下分析双处理线粒体c(c)加入鱼藤酮和琥珀酸后,在呼吸计中对样品进行分析,如图2所示。(D类)用tBid处理或不处理线粒体的RCR,无论是否有外源细胞色素c(c)如所示C类.
图4
图4
洋地黄素会破坏线粒体外膜,但不会导致细胞色素的大量释放c(c). (A类)从对照(+IL-3)或IL-3脱辅(−IL-3)细胞中分离出线粒体,并保存在无底物的隔离缓冲液(MIB)中。如有指示,添加洋地黄素,并按照材料和方法并进行EM分析。箭头表示外膜的不同类型损伤,包括1)膜夹伤,2)小间隙,3)大间隙。(B类)细胞色素c(c)(cytc)水平与细胞色素c(c)氧化酶(COX IV)水平,作为负载对照,通过从在有或没有IL-3的存在下生长12小时的细胞中分离的线粒体的蛋白质印迹分析来评估,有或没有洋地黄素处理。
图5
图5
洋地黄素治疗可恢复从IL-3分泌细胞分离的线粒体对ADP的反应。从存在或不存在IL-3的细胞中分离线粒体12小时。用洋地黄素处理或不处理线粒体,并在呼吸计中进行分析,如图2所示。在缺乏外源性细胞色素的情况下进行呼吸c(c). (A类)来自对照(+IL-3)细胞的线粒体。(B类)剥夺IL-3 12小时的细胞线粒体(C类)从有或无IL-3的细胞中分离出的线粒体的RCR,并用或不用洋地黄素孵育。结果是3个独立实验的平均值和标准偏差。
图6
图6
膜透性电子供体恢复IL-3脱附细胞线粒体的非耦合呼吸及Bcl-x对耦合呼吸减少的预防作用L(左)表达式。(A类)用杜洛喹醇作为电子供体对未偶联线粒体的呼吸分析。在鱼藤酮和羰基氰化物存在的反应缓冲液中培养来自对照细胞或IL-3衍生细胞的线粒体(500μg)-氯苯腙。如有指示,向试验箱中添加100μM杜洛喹醇(DQH2)。(B类)用控制载体(Neo)或编码Bcl-x的载体转染FL5.12细胞L(左)(四十) 将线粒体(500μg)稀释到鱼藤酮存在的反应缓冲液中,并测量耗氧量。记录状态1呼吸(无底物)100秒,然后添加琥珀酸。200秒后加入ADP诱导状态3呼吸。

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