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.2002年6月25日;99(13):8968-73.
doi:10.1073/pnas.132197599。

携带家族性帕金森病相关Ala-53-->Thr基因突变的人α-突触核蛋白在转基因小鼠中引起具有α-突触核蛋白聚集的神经退行性疾病

附属公司

携带家族性帕金森病相关Ala-53-->Thr基因突变的人α-突触核蛋白在转基因小鼠中引起具有α-突触核蛋白聚集的神经退行性疾病

迈克尔·K·李等。 美国国家科学院程序. .

摘要

α-突触核蛋白(alpha-Syn)突变在少数家族性帕金森氏病(PD)家系中引起帕金森氏症(PD)。此外,α-Syn积累为路易体和路易神经节的主要成分,是PD的神经病理学特征。为了更好地了解α-Syn生物学改变与PD相关神经退行性变之间的致病关系,我们培育了多个转基因小鼠系,表达高水平的野生型或家族型PD-linked Ala-30->Pro(A30P)或Ala-53-->Thr(A53T)人类α-Syns。表达A53T人类alpha-Syn而非野生型或A30P变异体的小鼠会发展成成人期神经退行性疾病,并伴有渐进性运动功能障碍,最终导致死亡。病理学上,受影响的小鼠表现出神经元异常(胞体周围和神经突),包括α-Syn和泛素的病理性积聚。与alpha-Syn的异常神经元聚集相一致,大脑病理区的洗涤剂不溶性alpha-Sym和alpha-Ssyn聚集物增加。我们的结果表明,与其他alpha-Syn变异体相比,A53T突变体α-Syn引起的体内神经毒性明显更大。此外,α-Syn依赖性神经退行性变与洗涤剂不溶性α-Syn.的异常积聚有关。

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图1
图1
Huα-Syn在转基因小鼠中的表达。()使用Huα-Syn cDNA探针对非转基因(ntg)同窝小鼠、MoPrP–Huα-Syn(WT)转基因小鼠(系B2-1、B2和I2-2)、MoPr–Hu al-Syn(A53T)转基因鼠(系L5、N2-5、H5和G2-3)和MoPrP-Huα-Syn(A30P)转基因鼠的大脑总RNA进行Northern blot分析。放射自显影显示Huα-Syn mRNA在转基因小鼠的大脑中高水平表达。由于Hu-和Moα-Syn之间的序列同源性,cRNA探针还检测内源性Moα-Syn mRNA(Mo)。(b条c(c))MoPrP–Huα-Syn转基因小鼠α-Syn-多肽的免疫印迹分析。非转基因和转基因小鼠的总脑蛋白(车道与)用HuSyn-1兔多克隆抗体进行免疫印迹分析(b条)或Syn-1(c(c)),一种抗泛α-Syn单克隆抗体。
图2
图2
转基因小鼠中Huα-Syn表达的细胞定位。(b条)现场Huα-Syn转基因小鼠脑内Huα-Syn mRNA表达的杂交分析。反义()和控制感(b条)Huα-Syn mRNA探针显示,Huα-Syn在大多数脑区高水平、广泛表达。(c(c)d日)为了确定Huα-Syn mRNA在转基因小鼠的SNpc中表达,对相邻切片进行处理就地杂交(c(c))酪氨酸羟化酶免疫细胞化学(d日)。箭头显示了SNpc中多巴胺能神经元的位置。(e(电子)如果)MoPrP–Huα-Syn转基因小鼠脑中Huα-Syn多肽的免疫细胞化学分析。非转基因小鼠冠状脑切片(e(电子))和来自I2-2的Huα-Syn(WT)转基因小鼠(如果)用HuSyn-1抗血清进行免疫反应。Huα-Syn多肽的点状、神经纤维定位与突触末端α-Syn的富集一致。Huα-Syn(A53T)和Huα-Syn(A30P)的免疫细胞化学分析结果与WT蛋白相似。ctx,皮层;齿状凹痕。
图3
图3
Huα-Syn(A53T)的表达导致转基因小鼠的神经异常和寿命缩短。(b条)中间的G2-3(AT)转基因小鼠()而且很晚了(b条)神经功能障碍阶段。(c(c))Huα-Syn(A53T)转基因株系的存活曲线。转基因的高表达与疾病的早期发病和死亡有关。
图4
图4
Huα-Syn转基因小鼠的神经病理学。(c(c))病态G2-3(A53T)转基因小鼠神经元中α-Syn的病理性神经元积聚。小脑深部核内神经元α-Syn异常积聚(),网前核附近(b条)和新皮质(c(c))。(d日如果)HuSyn-1监测的O2(A30P)小脑深部细胞核内神经元中α-Syn积累增加()和Syn-1(b条)。注意α-Syn积累的神经元分布更加均匀。(j)患病G2-3(A53T)小鼠的泛素病理学。脑桥中泛素的病理性染色体和神经炎积聚突出(小时)和小脑()。偶尔出现的皮层神经元(j)也表现出泛素病理学。(k个)尽管来自O2系(A30P)的小鼠体内α-Syn积累(如图所示d日如果),这些小鼠不会发生泛素病理。A53T病鼠的其他病理学表现包括小脑深部核内磷酸化NF-H的积聚()和硫黄素S-阳性结构(插入)。(n个)硫黄素-S处理的非转基因小鼠显示为阴性对照. (o个第页)α-合成(o个)和泛素(第页)临床前H5(A53T)转基因小鼠Pons的病理学。星号表示核周病理,箭头表示神经炎病理。
图5
图5
星形胶质细胞反应仅限于表现出广泛神经病理学的大脑区域。临床感染G2-3(A53T)转基因小鼠的矢状脑切片(,b条、和插入)和一只年龄相配的同窝老鼠(c(c)d日)进行GFAP免疫细胞化学分析。G2-3转基因小鼠皮层(ctx)和海马(Hippo)中的GFAP免疫反应()表现出很少的病理学,几乎与非转基因(ntg)同窝婴儿的病理学相同(c(c))。然而,中脑(中脑)和脑干区域(b条)受影响的G2-3转基因小鼠中,GFAP免疫抑制的星形胶质细胞与未转基因的同卵鼠相比明显增加(d日)。cblm,小脑。
图6
图6
神经系统受损的Huα-Syn(AT)转基因小鼠中非离子洗涤剂不溶性α-Syn-多肽的积累。(b条)使用Syn-1单克隆抗体对SDS-soluble脑干进行免疫印迹分析()和皮质提取物(b条)来自Huα-Syn转基因小鼠和非转基因(nTg)幼崽配偶。在转基因小鼠提取物中,全长α-Syn≈16 kDa(α-Syn16)和截短α-Syn12 kDa。(c(c)d日)使用Syn-1单克隆抗体对脑干非离子洗涤剂不溶性(P2)组分进行免疫印迹分析(c(c))和皮层(d日)。(d日)临床受影响小鼠脑干(G2-3-Sick和H5-Sick)的神经病理学改变与全长α-Syn(α-Syn16)、截短α-Syns(α-Sn12和α-Syn10)和高分子量α-Syn-多肽积累增加有关。未经病理检查的小鼠脑干中未发现α-Syn的这些生化变化。(d日)与皮层缺乏明显病理学一致,皮层P2组分均未显示异常α-Syn多肽。分子质量标准(凝胶右侧的勾选)为9、13、20、35、50、60、80、111和173 kDa。

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