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.2016年3月11日;291(11):5664-5675.
doi:10.1074/jbc。M115.696849。 Epub 2016年1月21日。

PKD1通过丝氨酸491磷酸化抑制AMPKα2并损伤骨骼肌细胞的胰岛素信号

附属公司

PKD1通过丝氨酸491磷酸化抑制AMPKα2并损伤骨骼肌细胞的胰岛素信号

金伯利·A·考夫兰等。 生物化学杂志. .

摘要

AMP-activated protein kinase(AMPK)是一种能量敏感酶,其活性在胰岛素抵抗时受到抑制。最近研究表明,暴露于高糖浓度下会增加AMPKα1/α2亚单位Ser(485/491)的磷酸化;然而,它这样做的机制尚不清楚。二酰甘油(DAG)也在暴露于高糖的肌肉中增加,它激活了许多信号分子,包括蛋白激酶(PK)C和PKD1。我们试图通过引起骨骼肌细胞中Ser(485/491)磷酸化来确定PKC或PKD1是否参与AMPK的抑制。用PKC/D1激活剂佛波醇12-肉豆蔻酸13-醋酸盐(PMA)处理C2C12肌管,PMA作为DAG模拟物。这导致了AMPK-Ser(485/491)磷酸化的剂量和时间依赖性增加,这与AMPKα2活性降低~60%有关。磷酸缺陷型AMPKα2突变体(S491A)的表达阻止了PMA诱导的AMPK活性降低。广泛的PKC抑制剂Gö6983部分阻止了丝氨酸磷酸化和AMPK活性的抑制,而特定的PKD1抑制剂CRT0066101则完全阻止了这一过程。PKD1的基因敲除也阻止了AMPK的Ser(485/491)磷酸化。抑制先前确定的在此位点磷酸化AMPK的激酶(Akt、S6K和ERK)并不能阻止这些事件的发生。PMA治疗也导致通过Akt的胰岛素信号传导受损,而PKD1的抑制可以阻止这种情况的发生。最后,重组PKD1在无细胞条件下在Ser(491)磷酸化AMPKα2。这些结果确定PKD1是AMPKα2 Ser(491)的一种新型上游激酶,在肌肉细胞的胰岛素信号传导中起负作用。

关键词:AMP活化激酶(AMPK);Akt PKB;丝氨酸485/491;胰岛素抵抗;蛋白激酶C;蛋白激酶D(PKD);骨骼肌。

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数字

图1。
图1。
PMA治疗时间和剂量依赖性刺激血清AMPK磷酸化485/491在C2C12肌管中。肌管用10–100 nPMA持续30分钟(A类,B类)或50 nPMA持续5–180分钟(C类,D类). 细胞被裂解,蛋白质表达和磷酸化被Western blot分析。典型的Western印迹(A类,C类)及其密度分析(B类,D类)如图所示。结果为平均值±S.E(n个=每治疗3–6次)。所有实验均一式三份。*,第页与对照组相比<0.05。
图2。
图2。
PKD抑制阻止PMA诱导的AMPK-Ser磷酸化485/491在C2C12肌管中。用非特异性PKC抑制剂Gö6983(5μ) (A类,B类)或特定PKD抑制剂CRT0066101(10μ) (C类,D类)PMA处理前1小时(50 n,30分钟)。细胞被裂解,蛋白质表达和磷酸化被Western blot分析。典型的Western印迹(A类,C类)及其密度分析(B类,D类)如图所示。结果为平均值±S.E(n个=每治疗3–6次)。所有实验均一式三份。*,第页与对照组相比<0.05;†,第页与PMA治疗相比<0.05。
图3。
图3。
PMA治疗可降低C2C12肌管中的AMPK活性,而PKC和PKD的抑制或S491A AMPKα2的表达可阻止这种降低。C2C12肌管用非特异性PKC抑制剂Gö6983(5μ) (A类)或特定PKD抑制剂CRT0066101(10μ) (C类)PMA处理前1小时(50 n,30分钟)。通过SAMS肽分析测定AMPKα2活性。B类D类显示AMPKα2活性与血清485/491磷酸化。E类用FLAG标记的WT AMPKα2或S491A AMPKβ2转染C2C12细胞。48小时后,用PMA处理细胞(50 n,30分钟),然后使用抗FLAG抗体进行裂解和免疫沉淀。蛋白质磷酸化和表达通过Western blot分析。使用SAMS肽分析法测定AMPK活性。结果为平均值±S.E(n个=每次治疗3-6次)。*,第页与对照组相比<0.05;†,第页与PMA治疗相比<0.05。
图4。
图4。
PKD1敲除阻止PMA诱导的AMPK-Ser磷酸化485/491在C2C12肌管中。用打乱或PKD1 siRNA转染C2C12肌管。48小时后,用PMA(50 n)处理肌管,30分钟)。细胞裂解,蛋白质表达和磷酸化通过Western blot分析。典型的Western印迹(A类)及其密度分析(B类)如图所示。结果为平均值±S.E(n个=每治疗3–6次)。所有实验均一式三份。*,第页与对照组相比<0.05;†,第页与PMA治疗相比<0.05。
图5。
图5。
Akt、S6K或ERK的抑制不能阻止PMA诱导的AMPK-Ser磷酸化485/491.用PI3K/Akt抑制剂沃特曼(100 n)处理肌管) (A类)mTOR/P70S6K抑制剂雷帕霉素(100 n) (B类)或ERK抑制剂U0126(5μ) (C类)PMA处理前2小时(50 n,30分钟)。细胞裂解,蛋白质表达和磷酸化通过Western blot分析。显示了典型的Western blot及其密度分析。结果为平均值±S.E(n个=每治疗3–6次)。所有实验均一式三份。*,第页与对照组相比<0.05;†,第页与PMA治疗相比<0.05。
图6。
图6。
PMA刺激PKD1损害胰岛素信号传导。 A类B类,C2C12肌管接受或不接受Gö6983(5μ)或CRT0066101(10μ)PMA处理前1小时(50 n,30分钟),然后进行胰岛素刺激(100 n,15分钟)。C类D类用打乱或PKD1 siRNA转染C2C12肌管。48小时后,用PMA(50 n)处理肌管,30分钟),然后进行胰岛素刺激(100 n,15分钟)。细胞被裂解,Akt、AMPK、PKD1和IRS-1磷酸化通过Western blot分析。代表性斑点(A类,C类)和量化(B类,D类)如图所示。*,第页与对照组相比<0.05;†,第页与胰岛素治疗相比<0.05。
图7。
图7。
S491A AMPKα2的表达通过Akt阻止PMA诱导的胰岛素信号损伤。用WT-AMPKα2或S491A AMPKα2转染C2C12细胞。48小时后,用PMA处理细胞(50 n,30分钟),然后进行胰岛素刺激(100 n,15分钟)。然后对细胞进行裂解,并在Ser473Western blot分析。显示了具有代表性的印迹和定量。结果为平均值±S.E(n个=每治疗3–6)。*,第页与WT+胰岛素相比<0.05。
图8。
图8。
重组PKD1在血清中磷酸化AMPK485/491在无细胞测定中。重组AMPKα2/β1/γ1与重组PKD1或重组Akt孵育,如“实验程序”所述491Western blot检测。所示的代表性图像来自单个凝胶/曝光。A类,PKD和Akt的共有底物基序与AMPKα2的486–491残基排列(B类).n个=每组3人。所有实验均一式三份。

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