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.2021年6月;11(6):1731-1738.
doi:10.1002/2211-5463.13177。 Epub 2021年5月19日。

c-Abl激酶通过FHL2磷酸化调节细胞增殖和电离辐射诱导的G2/M阻滞

附属公司

c-Abl激酶通过FHL2磷酸化调节细胞增殖和电离辐射诱导的G2/M阻滞

王广飞等。 FEBS开放式生物. 2021年6月.

摘要

非受体酪氨酸激酶c-Abl通过磷酸化转录因子或辅因子参与多种细胞过程。c-Abl结合并磷酸化四个半LIM-only蛋白2(FHL2),但磷酸化位点的身份及其对细胞周期调节的贡献尚不清楚。在本研究中,我们通过质谱和酪氨酸对苯丙氨酸(Y→F)突变分析证明c-Abl在Y97、Y176、Y217和Y236高度磷酸化FHL2。表达野生型(WT)FHL2的细胞增殖受到抑制,但不表达磷酸化缺陷突变型FHL2(4YF)的细胞增殖受抑制。此外,FHL2有助于电离辐射诱导的G2/M细胞周期阻滞。FHL2 WT而非FHL2(4YF)通过引起IR诱导的G2/M阻滞,挽救了FHL2缺失细胞中的FHL2功能。这些结果表明,c-Abl通过磷酸化FHL2调节细胞周期进程。

关键词:FHL2;G2/M期阻滞;c-Abl;细胞增殖;磷酸化。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明没有利益冲突。

数字

图1
图1
鉴定c-Abl介导的FHL2上的磷酸化位点。(A) 将从Flag‐FHL2或Flag载体转染的HEK293T细胞制备的免疫沉淀物与活性c-Abl蛋白在30°c下孵育30分钟。反应产物通过SDS/PAGE进行解析并进行免疫印迹。(B) 将HEK293T细胞与Flag‐FHL2和Myc‐c‐Abl共转染,并通过SDS/PAGE分离抗Flag免疫沉淀物。凝胶用考马斯亮蓝(CBB)染色,切除含有Flag‐FHL2的条带,胰蛋白酶消化,并进行LC-MS/MS分析。HC:重链;LC:轻链。*:未知蛋白质。C–G类。具有磷酸化酪氨酸残基Y(p)的肽的质谱。肽序列显示在面板顶部,离子得分和期望值显示在面板中。
图2
图2
c-Abl磷酸化FHL2。(A) HEK293T细胞与表达Myc‐Abl和Flag‐FHL2或Flag­FHL突变体的质粒共转染。使用抗pTyr或抗Flag抗体通过免疫印迹法分析抗Flug免疫沉淀物(左)。对Flag‐FHL2和突变体的相对pTyr水平进行量化和绘制(右)。数值表示为平均值±SD。(B) 用表达Myc‐Abl WT/(K290R)和Flag‐FHL2 WT/(4YF)的质粒共同转染HEK293T细胞。使用抗pTyr、抗Flag和抗Myc抗体进行免疫印迹分析,以分析抗标志免疫沉淀物。
图3
图3
细胞增殖受c-Abl介导的FHL2磷酸化调节。(A) 使用CRISPR‐Cas9策略建立的FHL2‐敲除MCF‐7细胞克隆通过使用抗FHL2抗体的免疫印迹进行确认。(B) 用所示质粒转染MCF‐7 KO细胞,并通过免疫印迹检测其表达。(C) 将转染有所示质粒的MCF‐7 KO细胞与EdU孵育12 h或不孵育,然后通过流式细胞仪分析EdU掺入率。每个面板的两个峰值表示非EdU并入和EdU并入细胞(R1峰值表示非EdU并入细胞数量;R2峰值表示EdU并入的细胞数量),每个面板显示EdU并入比率。图的顶部显示了包含或不包含EdU的细胞的代表性图像。BF:亮场。试验重复三次。(D) 显示了三个独立实验中EdU掺入的平均比率。数值表示为平均值±SD。使用Student’st吨‐测试*第页 < 0.05, **第页 < 0.01.
图4
图4
c‐Abl介导的FHL2磷酸化调节FHL2参与的G2/M阻滞,以应对辐射。(A) 用10 Gyγ射线照射MCF‐7 WT或FHL2 KO细胞,并用流式细胞仪分析细胞周期。一式三份实验中G2/M期细胞百分比的平均值显示在每个面板的顶部。(B) 免疫印迹法检测转染或未转染Flag-FHL2或Flag-FHL2(4YF)质粒的WT MCF-7和KO细胞中的FHL2。(C) 用Flag-FHL2或Flag-FHL2(4YF)质粒转染MCF‐7 KO细胞,然后按照A.D.中的描述进行处理和分析。IR后24 h A和C的G2/M期细胞比率显示为平均值±SD。使用Student’st吨‐测试*第页 < 0.05.

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