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.2017年4月3日;16(7):673-684.
doi:10.1080/15384101.2017.1295179。 Epub 2017年2月22日。

招募到紫外线损伤位点的错配修复蛋白导致G1期许可因子Cdt1降解

附属公司

招募到紫外线损伤位点的错配修复蛋白导致G1期许可因子Cdt1降解

田中美由纪夫等。 细胞周期. .

摘要

Cdt1被CRL4迅速降解抄送2紫外线照射后的E3泛素连接酶。先前的报道表明,核苷酸切除修复(NER)途径是导致Cdt1蛋白快速降解的原因。这里,我们表明错配修复(MMR)蛋白也参与了紫外线照射后G1期Cdt1的降解。首先,与正常成纤维细胞中Cdt1的快速降解(约15分钟内)相比,在NER缺乏的XP-A细胞中,Cdt1在约30分钟内保持稳定,但在约60分钟内降解。延迟降解也依赖于PCNA和CRL4抄送2MMR蛋白Msh2和Msh6被招募到G1期XP-A细胞的紫外线损伤部位。用小干扰RNA耗尽这些因子可以阻止XP-A细胞中Cdt1的降解。与XP-A细胞的发现类似,XPA的缺失延迟了正常成纤维细胞和U2OS细胞中Cdt1的降解,Msh6的共同缺失进一步阻止了Cdt1降解。此外,仅Msh6的缺失就延迟了这两种细胞类型中Cdt1的降解。当Cdt1的高表达减弱了Cdt1降解时,受损部位的修复合成受到抑制。我们的研究结果表明,紫外线照射可诱导激活CRL4的多种修复途径抄送2在细胞周期的G1期降解其靶蛋白,从而有效修复DNA损伤。

关键词:CRL4Cdt2;Cdt1;不匹配修复(MMR);PCNA;紫外线。

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数字

图1。
图1。
紫外线照射后XP-A细胞中Cdt1的降解被延迟,并且它还依赖于PCNA和CRL4抄送2(A)以5 J/m的紫外线照射正常成纤维细胞(NF)和XP-A细胞2并在指定的时间点收集进行Western blotting。RCC1被用作负荷控制。(B) 将盖玻片上生长的细胞照如(A)所示进行照射,并用Cdt1和Cyclin A(CyA)抗体进行染色。在指定的时间点对Cdt1(+)或Cyclin A(+)阳性的细胞进行计数,并绘制NF和XP-A细胞的频率(%)。(C) 对XP-A细胞和补充野生型XPA基因(wtXPA)的XP-A电池进行紫外线照射(5 J/m2)并在指定的时间点收集进行Western blotting(左侧面板)。紫外线照射后XP-A、XP-A(wtXOA)和NF中Cdt1降解的时间过程比较(右面板;显示了3个独立实验的平均值和标准偏差)。(D)XP-A细胞中延迟的Cdt1的降解也依赖于CRL4介导的泛素蛋白酶体途径抄送2将NF或XP-A细胞与MG132一起孵育,10分钟后用5J/m的UV照射2并在指定的时间点(min)收集进行Western blotting(左上面板)。用所示的siRNA转染细胞培养物两次,共培养3天。细胞以5 J/m的紫外线照射2并在指定的时间点(min)收集进行Western blotting。测量了Cdt1蛋白水平,并显示了其相对量(归一化为RCC1)。使用用于荧光素酶的siRNA作为对照(siLuc)。星号表示非特定带。
图2。
图2。
PCNA、Cdt2和Cdt1在XP-A细胞的紫外线照射部位积聚,但在正常成纤维细胞中积聚较晚。(A) 非同步生长的正常成纤维细胞(NF)和XP-A细胞被一层5μm孔的膜覆盖,局部用紫外线照射(100 J/m2; 微孔分析),并培养指定时间。细胞固定并用CPD和PCNA抗体染色。棒材,10μm。UV(-)中的白色三角形表示S相细胞(见正文)。(B) 使用ImageJ在CPD点测量PCNA强度,如(A)所示(每个时间点>25个点),并绘制平均值(任意)。(C) 将异步生长的NF、XP-A和XP-A(wtXPA)细胞作为(A)处理,培养30分钟,并用CPD和PCNA抗体染色。(D) 使用ImageJ(30个点/细胞株)测量(C)中CPD部位的PCNA强度,并显示平均值(任意)。(E) 异步生长的细胞按(A)中的方法处理,并用CPD和Cdt1抗体染色。为了可视化Cdt1蛋白,在紫外线照射前10分钟将MG132添加到培养基中。棒材,5μm。在CPD部位检测细胞的Cdt1染色(每个时间点>100个位点),Cdt1阳性位点的频率显示为(%)(左侧面板)。还测量了细胞的Cdt1强度,并显示了平均值(任意)(右图)。
图3。
图3。
Msh2和Msh6蛋白被招募到XP-A细胞中的紫外线照射位点。(A) 同步于G1期的细胞通过具有5-μm孔的膜局部照射(+)或不照射(-)。细胞孵育1 h,预提取,并用CPD和Msh2或Msh6抗体固定。(B) 在CPD部位检测细胞Msh2或Msh6染色。显示了Msh2或Msh6阳性的CPD位点的频率(%)(检查了>100个CPD位点)。(C) 如(A)中所述处理的XP-A细胞与Msh2和PCNA共同染色。92.5%的CPD位点Msh2阳性(62/67个CPD位点)。(D) 同步于G1期的细胞用紫外线(+)局部照射,并在指定的时间点用CPD和Msh2抗体染色。(−):未经紫外线照射。检测细胞CPD和Msh2,绘制细胞与CPD和Msh2共染的频率。棒材,5μm。
图4。
图4。
MMR参与XP-A细胞中Cdt1的降解。(A) XP-A细胞转染两次Ape1、Msh2、Msh6或荧光素酶(siLuc)的siRNA作为对照。三天后,一半的细胞培养物用5 J/m的紫外线照射2并在指定的时间段内孵化。在指定的时间点收集细胞,用Cdt1、Msh2、Msh6、Ape1和RCC1的抗体进行蛋白质印迹。测量Cdt1蛋白水平并显示其相对量。(B) XP-A细胞按(A)处理,并用Cdt1和Cyclin A(CyA)抗体固定和染色。检测细胞进行Cdt1染色,显示Cdt1阳性细胞的频率(%)。棒材,10μm。
图5。
图5。
MMR参与正常细胞中Cdt1的降解。(A) 正常成纤维细胞(NF)转染所示的siRNA,3天后,紫外线照射(25 J/m2)并在指定的时间点收集。用Mcm6蛋白对Cdt1蛋白水平进行标准化,并显示了3个独立实验的平均值和标准偏差。(B) U2OS细胞按(A)处理并进行分析。(显示了3个独立实验的平均值和标准偏差)。(C) Cdt2–3xFLAG与MMR蛋白的相互作用。分离出Cdt2–3xFLAG–表达稳定的U2OS细胞,并用Cdt2抗体进行Western blotting检测Cdt2-3xFLAG(3xFLAG-)和内源性Cdt2(end.)的表达水平。用MG132处理U2OS细胞和表达Cdt2–3xFLAG的U2OS电池10分钟,并用紫外线照射(25 J/m2)(+)或不(−)。培养30分钟后,收集细胞,用多聚甲醛固定,并用材料和方法中描述的抗FLAG免疫沉淀。对沉淀中的指示蛋白质进行了检测。测量Msh2、Mas6和PCNA的带强度,并将其归一化为UV(−)。显示了Mas2和Mas6的3个独立实验的平均值和标准偏差。对于PCNA,显示了两次独立分析的平均值。星号表示用抗Cdt2抗体重新绘制后,Msh2条带仍然存在。
图6。
图6。
Cdt1降解对DNA修复合成非常重要。(A) HeLa细胞仅转染Cdt1(1–101)-Cy-9myc或9myc。第二天,用紫外线局部照射细胞,在EdU存在下孵育30分钟,并用myc和Alexa Fluor 488叠氮化物抗体固定以检测制造商提供的EdU。开放箭头表示EdU染色较低的Cdt1(1–101)-Cy-9myc表达细胞,而填充箭头表示只有9myc的表达细胞带有EdU斑点信号。(B) 检测(A)中EdU斑点阳性细胞是否表达Cdt1(1–101)-Cy-9myc(Cdt1-Cy)或仅9myc,并显示每个转染细胞培养物中不表达(蓝色)或不表达(红色)细胞的频率(%)。显示了两次独立分析的平均值。(C) 如A中所述对HeLa细胞进行处理,并对EdU和CPD进行染色。开放箭头表示具有低或负EdU信号的CPD站点。(D) 检测(C)中CPD斑点阳性细胞的EdU掺入情况,并显示每个转染细胞培养物中EdU阳性(+;绿色)或阴性或低(-;白色)细胞的频率(%)。显示了两次独立分析的平均值。

中的注释

  • 失配修复调节紫外线损伤后的Cdt1。
    Panagopoulos A、Taraviras S、Lygerou Z。 Panagopoulos A等人。 细胞周期。2017年6月18日;16(12):1143-1144. doi:10.1080/15384101.2017.1319687。 细胞周期。2017 PMID:28426347 免费PMC文章。 没有可用的摘要。

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