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.2013年3月15日;375(2):128-39.
doi:10.1016/j.ydbio.2012.12.010。 Epub 2012年12月22日。

克鲁珀样因子5控制胚胎肠上皮绒毛的形成和细胞分化的启动

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克鲁珀样因子5控制胚胎肠上皮绒毛的形成和细胞分化的启动

希拉·贝尔等。 求文献一篇. .

摘要

Kruppel-like factor 5(Klf5)是一种转录因子,由形成胃肠道衬里的胚胎内胚层祖细胞表达。在Shh启动子的控制下,Cre转基因可有效地从肠上皮中删除Klf5漂浮等位基因,从而抑制绒毛形态发生和上皮分化。虽然肠上皮细胞的增殖得到维持,但在Klf5缺陷的肠中,Elf3、Pparγ、Atoh1、Ascl2、Neurog3、Hnf4α、Cdx1和其他与上皮细胞分化相关的基因的表达受到抑制。在E18.5,Klf5(Δ/Δ)胎儿缺乏肠细胞的顶端刷状边界特征,并观察到杯状细胞和肠内分泌细胞丢失。绒毛形成的失败并不是由于缺乏HH或PDGF信号,而这些信号是该发育过程的已知介导物。Klf5缺失阻断了正常绒毛形态发生过程中FoxA1和Sox9表达的减少。KLF5直接抑制FoxA1启动子的活性,反过来,FoxA1在体外抑制Elf3基因表达,将观察到的Elf3缺失与KLF5缺陷小鼠中观察到的FoxA1持续表达联系起来。遗传网络分析确定KLF5是调节肠道细胞分化和细胞粘附的关键转录因子。这些研究表明,KLF5的一个新需求是启动早期内胚层的形态发生,形成由绒毛和末端分化细胞组成的分隔的肠上皮。

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数字

图1
图1。高效删除Klf5型从肠上皮通过Egfp/Cre公司
KLF5免疫组织化学:箭头表示(A,A′)肠上皮的正常表达模式,而KLF5在大多数肠上皮中缺失Klf5公司Δ/Δ胚胎(B)。十二指肠发生无效重组(B中的箭头)。E18.5胃肠道的大体外观(C–D)。Klf5公司Δ/Δ胚胎期,肠长度缩短,肠管变得更加透明和扩张。St(胃),Ce(盲肠)。
图2
图2。KLF5是绒毛形态发生和上皮分化所必需的
在E18.5,杯状细胞标记物CLCA3对小肠绒毛(A中的箭头)和对照胎儿结肠内的杯状细胞进行染色。Klf5公司Δ/Δ肠(B,箭头)或结肠(箭头)中存在上皮(B)和少量杯状细胞。嗜铬粒蛋白A阳性染色的肠内分泌细胞在对照组(C,箭头)中存在,但在Klf5公司Δ/Δ组织(D,箭头)。肠细胞刷状缘在Klf5型Δ/Δ通过透射电子显微镜评估上皮(E,vs.F,箭头)。两种组织中紧密连接的位置相似(E、F箭头)。E-cadherin染色表明,与对照组(G)一样Klf5公司Δ/Δ(H) 肠在扁平区域和基本的绒毛状结构上呈柱状形态。肠腔(lu)、结肠腔(c)、细胞核腔(nu)。每个污渍的比例尺显示在Klf5公司Δ/Δ图像。
图3
图3。在没有KLF5的情况下继续扩散
通过免疫组织化学染色,在指定的年龄,每个年龄和基因型n≥3个胚胎,检测磷蛋白H3(A–B)、溴脱氧尿苷(Brdu)(C–D)、细胞周期蛋白D1(E)或Ki67(G–H)的增殖细胞。在对照组和对照组的上皮和间质中观察到类似的增殖水平Klf5公司Δ/Δ每个时间点的胚胎。在对照组(C,箭头)的间充质和绒毛间区检测到细胞周期蛋白D1,但在Klf5公司Δ/Δ上皮细胞(C,蓝色箭头)。在对照上皮(C、G、箭头)中,上皮增殖仅限于绒毛间区,但在整个Klf5公司Δ/Δ上皮细胞(D,H,箭头)。A中的比例尺用于图像A–F。G中的比例尺用于G–H。
图4
图4。E15.5绒毛羽化需要KLF5
在E14.5,对照组和Klf5公司Δ/Δ均匀表达CDX2(A、B)的胚胎。在E15.5,对照胎儿的近端区域正在形成绒毛,同时绒毛尖端的SOX9下调(C,箭头插图)。SOX9在肠的远端区域(C,箭头)表达均匀。SOX9在肠道内分布均匀Klf5公司Δ/Δ胚胎(D,箭头)。在E16.5,在FOXA1定位于绒毛细胞子集的对照组中存在明确的绒毛(G,箭头)。绒毛在Klf5公司Δ/Δ胚胎和FOXA1染色存在于整个上皮(H,箭头)。在E18.5,SOX9(E,箭头)和FOXA1(I,箭头)在对照组中的表达受到限制,并且两者都在扁平上皮中高水平表达Klf5公司Δ/Δ胎儿(F,J,箭头),但在罕见的绒毛状结构中不存在(蓝色箭头,F和J)。每对图像的比例尺代表100μm。
图5
图5。KLF5调节绒毛形态发生
处于控制和Klf5公司Δ/ΔE15.5胚胎中,免疫组织化学检测到上皮细胞(箭头,a,B)下方的细线细胞间充质和小肠近端的间充质细胞簇中的PDGFRα(箭头)。通过E16.5,在对照组(C,箭头)的整个小肠的形成绒毛尖端检测到PDGFRα染色。虽然一些表达PDGFRα的间充质细胞簇在肿瘤的远端区域被观察到Klf5公司Δ/Δ肠(D,箭头)无细长绒毛,PDGFRα表达细胞簇与上皮的扁平区域(D,箭)无关。英国标准普尔4在对照组和对照组的上皮下间质中均存在mRNAKlf5公司Δ/Δ肠(E、F、箭头)。注意到在Klf5公司Δ/Δ胚胎与对照组相比。SOX2在两种基因型(G、H、箭头)的肠间质(Int)和结肠中均检测到。结肠上皮的形态发生受到干扰Klf5公司Δ/Δ胚胎(G与H,箭头)。在以下方面存在显著差异Pdgfa公司(P(P).03),Ihh公司(P(P)<.02),Ptc1型(P(P)<.03)、和Gli2公司(P(P).007)用QRT-PCR检测mRNA,每个基因型(I)n=5。αSMA检测到Klf5公司Δ/Δ和对照胚胎(J,K)。Lu(流明)。
图6
图6。KLF5缺陷肠的转录组分析
之间差异表达的所有基因的热图Klf5公司Δ/ΔmRNA表达变化>1.5倍的对照肠,P≥.05。绿色表示存在较低水平的mRNA(a)。已知介导E14.5和E16.5上皮细胞末端分化的关键转录因子的QRT-PCR分析(*,P(P).006), (**,P(P).001)(***,P(P).0005)(B)。E14.5肠的QRT-PCR也证实了与终末成熟相关的信号分子和结构蛋白的差异表达(*,P(P).04)(**,P≤.01)(***,P(P).005)(C) ●●●●。对于QRT-PCR,使用双尾学生T检验评估统计差异,(E16.5时n=5;E14.5时n=4)。
图7
图7。KLF5调节的肠道转录网络的鉴定与表征
对微阵列中差异表达基因的独创性途径分析确定了功能上富含“细胞分化和细胞粘附的转录调控”的基因网络(A)。实线(直接交互)、虚线(间接交互)。B–C)HEK293T细胞的代表性瞬时转染试验。转染后24小时,将萤光素酶活性标准化为雷尼拉活性。对于所有实验,空载体为pcDNA3.1。KLF5过表达抑制所有mFoxA1型启动子结构包含区域+43/+355(B)。FOXA1表达抑制了两者mElf3型启动子pGL3荧光素酶结构,而KLF5没有作用(C)。通过Western blot分析确认FOXA1表达(数据未显示)。双尾学生T检验用于评估统计差异(*,P(P).03), (***,P(P).005).

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