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.2013年1月9日;32(1):9-29.
doi:10.1038/emboj.2012.300。 Epub 2012年11月13日。

OXPHOS突变与神经变性

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OXPHOS突变与神经变性

沃纳·J·H·科普曼等。 欧洲工商管理硕士J. .

摘要

线粒体氧化磷酸化(OXPHOS)维持细胞器功能,并在细胞能量代谢中发挥核心作用。OXPHOS系统由5个多亚单位复合物(CI-CV)组成,由核(nDNA)和线粒体DNA(mtDNA)编码的92种不同结构蛋白组成。功能性OXPHOS系统的生物发生还需要nDNA编码的OXPHOS组装因子的协助,目前已鉴定出其中35个。在人类中,结构基因和组装基因以及参与mtDNA维持、复制、转录和翻译的基因的突变都会诱导与神经退行性疾病相关的“原发性”OXPHOS疾病,包括Leigh综合征(LS),这可能是儿童早期最经典的OXPHOS疾病。在这里,我们介绍了有关OXPHOS系统的功能、生物发生、调控和超分子结构的最新见解,以及其遗传起源。接下来,我们提供了OXPHOS结构和组装基因的清单,这些基因在突变时会诱导人类神经退行性疾病。最后,我们讨论了单细胞水平上OXPHOS结构和组装基因突变的后果,以及这些信息如何促进我们对OXPHOS功能障碍在神经退行性变中的作用的理解。

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图1
图1
典型哺乳动物细胞的能量代谢。为了满足细胞能量需求,ATP由糖酵解途径(蓝色)、三羧酸(TCA)循环和氧化磷酸化(OXPHOS)系统生成。主要能量底物葡萄糖(GLC)通过GLC转运蛋白(GLUTs)进入细胞并转化为丙酮酸(PYR)。或者,多余的GLC可以作为糖原储存起来供以后使用,或者进入戊糖磷酸途径(绿色)。PYR可能有两种不同的命运:要么转化为乳酸(LAC)离开细胞,要么进入线粒体(黄色)形成乙酰辅酶A(AcCoA)。后者通过TCA循环进行处理,生成NADH和FADH2,是OXPHOS系统的基板。除GLC外,果糖(FRC)、半乳糖(GAL)、脂肪酸(FAs)和谷氨酰胺(GLN)也可以进入ATP生成系统(详见正文)。6PG,6-磷酸葡萄糖酸盐;6PGL,6-磷酸葡萄糖醇内酯;磷酸二羟基丙酮;FRU6P,6-磷酸果糖;FRUBP,果糖1,6-二磷酸;GA3P,3-磷酸甘油醛;GLU,谷氨酸;葡萄糖6-磷酸脱氢酶;G6PGDH,6-磷酸葡萄糖酸脱氢酶;GT,谷氨酰胺转运体;磷酸糖苷异构酶;HK,己糖激酶;乳酸脱氢酶;MCT,单羧酸转运体;丙酮酸脱氢酶;PFK,磷酸果糖激酶;RL5P,5-磷酸核酮糖;R5P,5-磷酸核糖;TA,转醛酶;转酮酶;TPI,三磷酸异构酶。
图2
图2
线粒体氧化磷酸化(OXPHOS)复合物的遗传起源和功能相互作用。线粒体OXPHOS系统由位于线粒体内膜(MIM)中的五个多亚单位复合物(CI–CV)组成。MIM包围线粒体基质,并被线粒体外膜(MOM)包围。膜间空间(IMS)位于MIM和MOM之间。CI、CIII、CIV和CV的亚基由线粒体(mtDNA;红色)和核DNA(nDNA;蓝色)编码,而CII仅由nDNA编码的亚基组成(顶部表格)。OXPHOS的生物发生由nDNA编码的组装因子(绿色)介导。nDNA编码的蛋白质通过TOM(内膜转运体)和TIM(内壁转运体”)系统导入线粒体基质。在CI和CII、NADH和FADH2分别被氧化,释放的电子通过辅酶Q传输到CIII10(CoQ公司10; ‘Q’)。从那里,电子通过细胞色素传输到CIV-c(c)(cyt公司)-c(c); ‘c(c)')并捐赠给氧气(O2). CI-CIV共同构成电子传输链(ETC)。电子传输产生的能量用于排出质子(H+)来自MIM的线粒体基质。这建立了一种电化学质子动力,与内部负的线粒体膜电位(Δψ)和增加的基质pH值有关+CV用于驱动ATP的生产(详见正文)。
图3
图3
OXPHOS系统和线粒体代谢的整合。图左下角所示的五种OXPHOS复合物(另请参见图2)保持线粒体膜内负电位(Δψ),并以超氧化物(O)的形式生成活性氧物种(ROS;红色)2·−)和过氧化氢(H2O(运行)2). 在NADH/NAD升高的条件下,TCA循环酶α-酮戊二酸脱氢酶(αKGDH)也可以生成ROS+比率。ROS通过几种抗氧化系统(绿色)去除。除了通过CV刺激ATP生成外,一个足够负的Δψ对于通过TIM系统导入nDNA编码的线粒体前蛋白(PreP)也至关重要。此外,线粒体内膜(MIM;图右侧)上的代谢物和离子交换由Δψ(橙色)或其相关pH梯度(ΔpH;蓝色)驱动(详细信息见正文)。腺嘌呤核苷酸转定位酶;GR,谷胱甘肽还原酶;谷胱甘肽过氧化物酶;谷胱甘肽;HCa,质子/钙转运蛋白;F类,CI中的黄素位点;、CoQ10-CI中的结合位点;KH,钾/质子转运蛋白;NaCa,钠/钙转运蛋白;NaH,钠/质子转运蛋白;Pi,无机磷酸盐/质子转运蛋白;丙酮酸盐/质子转运蛋白;o个、CoQ10-CIII结合位点;SOD2、超氧化物歧化酶2;硫氧还蛋白还原酶;TIM,内膜转运体;解偶联蛋白;UNI,线粒体钙单转运蛋白。
图4
图4
OXPHOS系统的生物发生和神经退化相关突变。线粒体DNA(mtDNA;red)编码核糖体RNA(rRNA)、转移RNA(tRNA)和OXPHOS亚单位。线粒体核糖体蛋白、tRNA合成酶、线粒体DNA修复蛋白、dNTP(脱氧核苷三磷酸)池维护蛋白和介导线粒体DNA复制、转录和翻译的蛋白均由核DNA编码(nDNA;紫色)。此外,OXPHOS组装因子(绿色)和OXPHOS亚基的其余部分(蓝色)是nDNA编码的。与神经退行性变相关的突变基因显示(斜体)。基因名称根据HGNC(HUGO基因命名委员会)标准给出(详见正文)。细胞周期-c(c)细胞色素c生物发生;铁硫簇生物成因;CoQ公司10、CoQ10生物成因。
图5
图5
活细胞水平线粒体(dys)功能的定量分析。(A类)说明如何应用活细胞显微镜技术研究OXPHOS功能障碍的流程图。与相应方框相关的主题/决定显示在右侧。(B类)图像处理策略允许量化健康个体初级人类皮肤成纤维细胞(#5120)中的线粒体结构和功能。活细胞用Δψ敏感荧光阳离子四甲基罗丹明(TMRM)染色,并用表观荧光显微镜观察。对获得的图像(RAW)进行背景荧光(COR)校正,并进行二值化以突出线粒体结构(BIN;白色物体)。通过用线粒体结构的BIN图像信息掩蔽COR图像,将线粒体的数量和位置(BIN图像)与来自COR图像的TMRM强度信息相结合。这允许从MSK图像中同时量化这些参数。在这个例子中,线粒体物体的数量等于341个,线粒体的平均大小等于69±7(s.e.m.)像素,即平均形状因子F类(线粒体长度和丝状程度的综合测量)等于2.7±0.2(s.e.m.)个任意单位,线粒体TMRM的平均荧光强度等于100±0.2(s.e.m)个灰度值。(C)线粒体对象根据其大小进行排序(从上到下和从左上到右下按列排列)。颜色编码表示TMRM强度,表明Δψ在单个线粒体对象之间是异质的。()线粒体大小(x轴)、TMRM强度(y轴)和形态因子(z轴)之间的关系允许多变量分析和多参数分类。深灰色球体表示原始数据点(每个代表MSK图中的线粒体对象),蓝色圆点表示yz平面上的数据投影,红色圆点表示xy平面上数据投影,浅灰色圆点表示xz平面上数据的投影)。后者显示出线性相关性(R(右)=0.97,P(P)<0.001)线粒体大小和线粒体形状因子之间F类.

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