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.2012年8月;82(4):401-11.
doi:10.1038/ki.2012.84。

转录因子FoxO1是慢性肾脏疾病中肌肉萎缩的主要介质,被微小RNA-486抑制

附属机构

转录因子FoxO1是慢性肾脏病肌肉萎缩的主要介质,被microRNA-486抑制

静旭等人。 肾脏Int. 2012年8月.

摘要

慢性肾脏病(CKD)通过激活E3连接酶、Atrogin-1/MAFbx和MuRF-1刺激泛素-蛋白酶体系统,加速肌肉蛋白质降解。叉头转录因子(FoxO)可以控制这些E3连接酶的表达,但个别FoxO对肌肉萎缩的作用尚不清楚。为了研究这一点,我们创建了肌肉特异性FoxO1缺失的小鼠。FoxO1的缺失阻断了CKD诱导E3连接酶增加的70%,以及蛋白水解和肌肉质量损失。因此,FoxOl在控制泛素-蛋白酶体系统相关蛋白水解中发挥作用。据报道,由于microRNA(miR)-486抑制FoxO1的表达及其活性,我们将miR-486模拟物转染到肌管的原代培养物中,发现这可以阻止地塞米松刺激的蛋白质降解,而不影响蛋白质合成。它还通过下调PTEN磷酸酶(p-Akt的负调控因子)降低FoxO1蛋白翻译并增加FoxOl磷酸化。为了测试其体内疗效,我们将miR-486电穿孔到肌肉中,发现E3连接酶的表达受到抑制,肌肉质量增加,尽管存在CKD。因此,FoxO1是CKD诱导的肌肉萎缩的主要介质,miR-486协同降低FoxOl和PTEN,以防止这种分解代谢反应。

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数字

图1
图1。肌肉特异性FoxO1基因敲除(MFKO)预防CKD诱导的肌肉萎缩
A: 通过免疫染色评估,MFKO小鼠的肌纤维中没有FoxO1蛋白。B: MFKO小鼠肌肉的Western blot显示FoxO1显著降低,而FoxO3a和FoxO4水平不变。C: 通过将肌肉重量标准化为胫骨长度来评估肌肉质量,MFKO防止了CKD小鼠胫骨前肌(TA)、趾长伸肌(EDL)和比目鱼肌(Sol)的重量损失(*,与lox/lox+CCKD相比,p<0.05,n=5)。D: 对照组(lox/lox)或MFKO小鼠的肌纤维大小分布是相同的(n=3,每只小鼠检查200多个肌纤维)。E: 在患有CKD的MFKO小鼠中,CKD的lox/lox小鼠的肌纤维大小向左移动被阻止(每只小鼠检查了n=5,>200个肌纤维)。
图2
图2。CKD MFKO小鼠肌肉中的蛋白水解和泛素E3连接酶被大量阻断
A: FoxO1的缺失对EDL和Sol肌肉的蛋白质合成速率影响最小(n=5)。B: MFKO和lox/lox小鼠EDL和Sol肌肉的蛋白质降解率表明,FoxO1的缺失抑制了CKD刺激的肌肉蛋白水解的增加(n=5 in)。C: 通过northern blotting检测TA肌肉中Atrogin-1/MAFbx和MuRF-1 mRNA的表达。Atrogin-1/MAFbx和MuRF-1在CKD肌肉中的表达增加,lox/lox小鼠在患有CKD的MFKO小鼠的肌肉中的表达消除(*,与lox/lox+CDK相比,p<0.01,n=5)。D: 通过western blotting检测Akt和FoxOs转录因子的磷酸化。CKD抑制了lox/lox和MFKO小鼠肌肉中的p-Akt(Ser 473)、p-FoxO1(Thr 24)和FoxO3a(Thr 32),但没有改变肌肉中的p-FoxO4(Ser 262)。
图3
图3。miR-486阻断Dex刺激的肌管蛋白降解
A: 将miR-486模拟物(miR-486mc)转染到肌管原代培养物中,并用q-Real-time PCR评估转染效率。与转染对照miRNA(CTL-miR)的细胞相比,miR-486模拟物增加了12倍以上。B: miR-486模拟抑制Dex刺激的肌肉蛋白水解。肌管原代培养物(转染miR-486mimo或CTL-miR)与[H] 酪氨酸过夜,然后用PBS或2 m Dex处理。释放的放射性(指示蛋白质降解)绘制为总放射性的百分比[H] 酪氨酸并入细胞蛋白。显示了蛋白质水解速率(根据16至24小时之间的线性斜率计算)。以重复和独立重复的树时间进行测量(*,p<0.05 vs.CTL-miR+Dex)。C: miR-486模拟物对肌管原代培养中的蛋白质合成影响最小。蛋白质合成被测量为[H] -经Dex或不经Dex处理后的酪氨酸(2 M)。测量重复进行,并独立重复3次。
图4
图4。miR-486抑制Dex刺激的Atrogin-1/MAFbx和MuRF-1的表达
A: 用northern blot检测肌管原代培养物中Atrogin-1/MAFbx和MuRF-1的表达。miR-486模拟物阻断了泛素E3连接酶对Dex反应的mRNA(*,p<0.01 vs.CTL-miR+Dex,n=5)。B: western blotting检测这些肌管中p-Akt(ser 473)和PTEN的水平。C: p-Akt的增加与转染miR-486模拟物的肌管中PTEN含量的减少有关。D: miR-486模拟物刺激了FoxO1的磷酸化并降低了FoxO3的蛋白质含量。*,与CTL-miR+PBS相比,p<0.01;#,与CTL-miR+Dex相比,p<0.01;n=5。
图5
图5。miRNA电穿孔的验证体内
TA肌肉注射Dy547标记的对照miRNA(cel-miR-67),并通过测量荧光(A到E)评估转染效率。A: TA肌肉注射生理盐水或B:注射Dy547标记,控制miRNA而不电穿孔。C: 电穿孔后2天,肌纤维中存在Dy547标记的miRNA。在电穿孔(D和E)后8和15天检测荧光。F: 用RT-PCR检测cel-miR-67 miRNA水平。
图6
图6。增强miR-486对CKD诱导的骨骼肌损伤的保护作用
A: 用对照miRNA(CTL-miR)或miR-486模拟物(miR-486mc)转染假手术对照、lox/lox(sham)或CKD小鼠(FVB背景)的TA肌肉。电穿孔后2周通过RT-PCR检测miR-486模拟物。B: 显示了使用miR-486模拟物或CTL-miR电穿孔后TA肌肉中肌纤维的横截面积,现场杂交显示miR-486存在于TA肌肉的肌纤维中。C: 转染miR-486mimo的CKD小鼠TA肌肉重量(由胫骨长度决定)有所改善(*,p<0.05;每组n=5)。D: CTL-miR或miR-486模拟物处理的假手术和CKD小鼠肌肉中肌纤维大小的分布。数据来自每组7只动物。
图7
图7。miR-486抑制CKD小鼠肌肉中泛素E3连接酶的表达
A: 通过northern印迹法检测Atrogin-1/MAFbx和MuRF-1 mRNA的表达。这些E3泛素连接酶在接受miR-486模拟物治疗的CKD小鼠的肌肉中受到抑制(*,p<0.01 vs.CTL-miR+CKD;n=7)。B: 用western blotting法在假手术组和用miR-486模拟物或CTL-miR C电穿孔的CKD小鼠的肌肉中评估PTEN。随着p-Akt的增加,用miR-486模拟物电穿孔的肌肉中的p-FoxO1水平升高。D: Western blot还显示,与使用CTL-miR电穿孔的肌肉相比,使用miR-486模拟物电穿孔肌肉中的p-Akt增加*与CTL-miR+Sham相比,p<0.01#与CTL-miR+CKD相比,p<0.01;n=5。E: 用CTL-miR或miR-486模拟物电穿孔CKD小鼠肌肉miRNA的qRT-PCR分析。
图8
图8。增强miR-486抑制分解代谢条件刺激的骨骼肌蛋白水解
在萎缩的肌肉细胞中,miR-486抑制PTEN的翻译,导致Akt和FoxO1磷酸化增加;miR-486还直接抑制FoxO1翻译。这两种作用导致泛素E3连接酶的抑制,以阻止肌肉萎缩。

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