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精液细胞开发生物学。作者手稿;PMC 2011年2月1日提供。
以最终编辑形式发布为:
PMCID公司:项目经理2823823
NIHMSID公司:美国国立卫生研究院154886
PMID:19857593

乳腺发育和疾病中的基质

摘要

越来越明显的是,正常和恶性乳腺组织需要复杂的局部和系统基质相互作用才能发育和进展。在发育过程中,乳腺细胞的命运规范和分化需要来自基质的高度调控的上下文信号。同样,在乳腺癌发展过程中,组织基质可以提供抑制肿瘤和促进肿瘤的环境,从而调节上皮的肿瘤生长。这篇综述的重点是间质作为正常乳腺发育的介质,以及乳腺癌恶性转化和进展的关键调节因子的作用。认识到基质在乳腺癌进展过程中的重要作用,就有可能找到新的靶点来治疗最初的乳腺癌病变以及预防复发。

关键词:乳腺发育、乳腺癌、肿瘤发生、基质、癌相关成纤维细胞

1.简介

乳腺是一个复杂的组织,由嵌入基质细胞阵列中的上皮薄壁组织组成,基质细胞调控乳腺的增殖、分化和存活。乳腺在女性一生中经历着动态变化,从青春期的扩大发育,到月经周期中激素控制的增殖和凋亡,再到哺乳期的全小叶肺泡发育。DeOme及其同事的开创性小鼠乳腺上皮细胞移植工作证明了乳腺上皮的再生可塑性以及其发育对基质的依赖性[1,2]. 此外,通过类似的上皮移植实验,非乳腺细胞被重新编程以执行乳腺上皮细胞功能,部分原因是旁分泌与宿主乳腺基质的相互作用[,4].

乳腺癌也是高度复杂的组织,癌细胞仅构成许多不同细胞类型中的一种。事实上,在许多乳腺肿瘤肿块中,癌细胞可能只占总细胞数的一小部分(<20%)。剩余的细胞类型通常被归入“肿瘤相关基质”这一集合术语下”,其中包括成纤维细胞、肌纤维母细胞、巨噬细胞、其他免疫细胞、脂肪细胞和内皮细胞等。由于越来越多的证据表明基质具有促进肿瘤发生的能力,基质在乳腺癌发病机制中的作用已成为一个深入研究的领域[5,6]. 已经反复证明,乳腺癌的发展和进展高度依赖于专门的基质,因为肿瘤很少在没有这种微环境的情况下发生[7,8].

本文重点回顾了基质在正常乳腺发育过程中的作用与基质在乳腺肿瘤发育和进展中的作用之间的相似性。基质在恶性转化和进展中的关键作用表明,与癌细胞联合靶向基质可能是治疗干预的协同策略。

2.正常乳房发育

2.1基质对乳腺命运的影响

啮齿类动物的乳腺发育伴随外胚层增厚而发生,形成表皮“乳腺嵴”。胚胎第11天(E11)1和E12,乳腺板发育,形成乳头和下面的导管树[9]. placode被一个与真皮其余部分无法区分的初级间充质所包围,但通过E14,placode周围的同心成纤维细胞层在基因表达方面表现出特殊的差异,例如类固醇受体和细胞外基质成分的上调[10,11]. 随着发育的进行,板层伸长并穿透次级间充质,真皮深层的前脂肪细胞簇将成为乳腺脂肪垫。

在这个发育阶段,间充质是决定乳腺命运的关键因素。在优雅的组织重组研究中,非哺乳动物的鸡和鸭表皮与兔乳腺间质重组后,能够形成分支腺组织[12]. 为了探讨间充质对非乳腺上皮功能性乳腺分化的影响,将小鼠胚胎背部皮肤上皮与同基因乳腺间充质结合,移植到同基因宿主的肾包膜下。当生长在植入催乳素分泌垂体同种异体移植物的宿主体内时,产生的导管结构的上皮细胞表达乳蛋白酪蛋白和α-乳清蛋白[13]. 同样,当胚胎乳腺上皮与唾液间充质重组并移植到肾包膜下时,产生的副产物在形态上与唾液腺相似。然而,作为对激素刺激的反应,移植的上皮能够合成乳蛋白[14]. 这些研究表明,上皮细胞与间质的接触决定了上皮外生长的结构,然而,其生物合成功能的调控尚不清楚。

虽然初级成纤维细胞乳腺间质决定了乳腺的细胞命运,但次级前脂肪细胞间质对导管分支结构的特征性形成至关重要。胚胎或成人乳腺上皮细胞与成纤维细胞间质的重组导致导管不典型分支和增生,而与前脂肪细胞的移植导致导管正常伸长[15]可能是由于基底膜的成分不同[16]. 目前尚不清楚前脂肪细胞在人类乳腺发育中是否发挥类似作用。虽然成熟的小鼠乳腺脂肪垫主要由脂肪细胞组成,但人类正在发育的乳腺上皮仍被成纤维细胞基质包裹,最终导致成熟组织中形成专门的小叶间和小叶内基质;此外,人们认为富含脂肪的组织会抑制人类乳腺上皮的生长[17].

通过多个配体家族及其同源受体的复杂信号传导似乎通过表皮和间充质中的时间限制和高度定位的表达来发挥作用,以控制胚胎期的发育。这些家族中最具特征的包括Wnt、成纤维细胞生长因子(FGF)、甲状旁腺激素相关肽(PTHrP)和刺猬;最近对胚胎发育过程中特定时间的信号传导模式进行了综述[9,1820]. 在小鼠中进行的基因敲除研究已经证明了特定基因的非冗余作用。例如,在基板发育期间未能表达FGF10或其受体FGFR2b导致无法形成乳腺芽1、2、3和5,并维持芽4[21]. 尽管FGF家族成员在胚胎发育的相似阶段表达,但其作用似乎与Wnt家族平行,因为Wnt途径的抑制不会改变FGF10或FGFR1的表达[11,22]. 然而,这些家族似乎通过诱导转录因子间接相互影响[23],例如Tbx3[22]. 虽然这些相互作用在小鼠中开始被阐明,但对这些家族在人类腺体发育过程中所起的作用知之甚少。

2.2导管树的基质和生长

与胚胎期的生长不同,小鼠乳腺的充分发育和分化依赖于循环激素和局部生长因子之间的协调沟通。末端芽(TEB)在导管尖端形成,并开始异形生长到乳腺脂肪垫中[24]. 青春期时,循环雌激素水平升高通过其受体雌激素受体α(ERα)和β(ERβ)发挥作用。ERα的移植−/−野生型腺体中的上皮仅发育出局限于乳头区域的基本导管结构[25,26]表明该受体对雌激素诱导的导管树生长至关重要。早期研究表明,ERα在青春期间质中的表达对导管的伸长至关重要,上皮细胞和间质内的表达对成人的功能是必要的[27]. 然而,这些研究被ERα活性的不完全清除所混淆,进一步的功能敲除研究表明上皮ERα的表达在这两个点上都至关重要[26]. 表达ERα的上皮细胞不增殖[2830]表明生长存在旁分泌相互作用。有趣的是,ERβ−/−小鼠没有任何明显的乳房异常,乳酸正常[31].

虽然上皮中ERα的表达对发育至关重要,但基质ERα表达似乎在调节发育所必需的生长激素受体及其配体的表达中起作用。通过移植研究,基质表皮生长因子受体(EGFR)和生长激素受体(GH)在导管延长中的作用已被揭示。虽然胚胎致死,EGFR−/−女性在出生前表现出正常的乳腺导管发育,然而,移植研究表明,青春期时导管外生长受损,这取决于基质EGFR的表达[32,33]. 外源性EGFR配体可以挽救两个卵巢切除患者的导管发育[34]和ERα−/−老鼠[35]和外源性雌二醇诱导去卵巢小鼠EGFR激活,证明这些途径之间存在串扰[32]. 虽然EGFR有多种配体,但在导管伸长过程中,上皮中表达的两性调节蛋白和基质中EGFR之间的旁分泌相互作用对正常发育至关重要[36]. 同样,基质中GH的表达对正常的导管伸长是必要的[37],至少部分由胰岛素样生长因子I(IGF-I)上调介导。局部产生的IGF-I是关键的,观察表明,IGF-I肝特异性缺失导致循环IGF-I减少75%的小鼠乳腺生长正常[38]. GH信号在清除内源性上皮的乳腺脂肪垫中诱导IGF-I和ERα表达,雌二醇增强GH对IGF-I的诱导,只有GH处理的腺体表达基质ERα(供审查[39]). 这些观察结果支持这样的观点,即上皮和基质对于整合卵巢雌激素对导管延长的信号作用至关重要。

除了在导管伸长过程中的增殖作用外,雌激素还可能通过转化生长因子β(TGFβ)的局部活性来控制这种生长。TGFβ超家族是一个分泌的多功能肽大家族,几乎参与调节细胞行为的各个方面[40,41]. 该家族最具特征的是TGFβ1,它在上皮和基质中表达[42,43]. 在小鼠乳腺肿瘤病毒(MMTV)启动子的控制下或从乳房植入物中定位的TGFβ已证明TGFβ在青春期抑制导管伸长中发挥着不可或缺的作用[44,45]. TGFβ对乳腺上皮的主要作用似乎是抑制生长[46,47]受卵巢激素调节[42,47]. 相反,TGFβ增加培养中成纤维细胞的增殖[48]雌激素显著提高皮肤成纤维细胞中TGFβ的水平[49,50],表明雌激素可能对TGFβ介导的上皮和基质细胞的增殖具有相反的作用。这种对增殖的差异影响可能定义了乳腺发育过程中所显示的导管分支的特定模式。

3.恶性乳房发育

3.1正常乳腺间质与肿瘤相关间质的差异

众所周知,与正常乳腺发育相关的基质与与癌症相关的基质有显著不同[8]. 与正常组织相比,乳腺肿瘤伴随的基质中含有更多的成纤维细胞和免疫细胞浸润,毛细血管密度增加,I型胶原和纤维蛋白沉积增加,所有这些共同改变了ECM的结构和硬度,并诱导邻近上皮内信号的改变[8,51]. 与正常乳腺基质相比,肿瘤相关基质显示α-平滑肌肌动蛋白(αSMA)、IV型胶原、脯氨酸-4-羟化酶、成纤维细胞活化蛋白(FAP)、tenascin、结蛋白、钙调素、钙调蛋白等的表达升高[5254].

一些报告使用转录组分析报告了与肿瘤发展相关的基质基因表达的变化[5558]. 显著上调的基因包括ECM成分和基质金属蛋白酶,它们负责基质重塑[59]以及分泌蛋白和细胞表面蛋白[55]. 事实上,根据SAGE和SNP分析,基因表达的最显著和一致的改变发生在从原发性人类乳腺肿瘤中分离出来的成纤维细胞和肌上皮部分[55]. 基因表达中的这些基质改变是否是基因改变的结果仍有争议[60,61]然而,人们普遍认为,表观遗传改变至少在一定程度上是造成这种现象的原因[62].

3.2基质激活在促进肿瘤形成中的作用

对小鼠的研究试图解决活化基质细胞直接参与乳腺肿瘤形成的问题。照射小鼠乳腺基质可通过释放活性TGFβ促进激活的间充质反应,从而在注射COMMA-D细胞后导致肿瘤形成,COMMA-D-细胞是一种非肿瘤原性鼠上皮细胞,p53基因突变[5]. 这些结果表明,基质的分子或表观遗传激活促进了肿瘤的形成,但也提出了一个问题,即肿瘤细胞本身是否必须首先包含遗传改变才能容易受到激活的基质影响。为了解决这个问题,使用分离的正常人类乳腺上皮细胞(类器官),Kuperwasser等。建立正常和恶性乳腺生长的人性化小鼠模型(小时人类-n个-ouse,HIM模型)[63,64]. 在该模型中,将经辐照和未经辐照的永生化乳腺成纤维细胞(RMF)引入清洁的小鼠乳腺脂肪垫中,以创建一个富含成纤维细胞的微环境,该微环境更接近人类乳腺组织,并允许正常的人类乳腺上皮生长。辐照后的成纤维细胞通过重塑脂肪基质的ECM蛋白,使未辐照的成纤维纤维细胞存活并定植于乳腺[63,64]. 为了创造一个与肿瘤相关基质具有某些特征的微环境,在引入乳腺类器官之前,使用过表达肝细胞生长因子(HGF)或转化生长因子β的RMF单独或共同使清除的脂肪垫人源化[63]. 与非永生化、正常的原代人类乳腺成纤维细胞不同,这些成纤维细胞只允许正常的生长,而富含生长因子的RMF可以促进罕见的(1/10患者样本)导管癌就地(DCIS)样病变、腺瘤和表面上正常器官的低分化肿瘤[63].

为了进一步探讨基质成纤维细胞对人类乳腺癌发展的影响,最近将HIM模型与人类乳腺类器官慢病毒基因转导相结合,用于组织重建[65]. 当转基因类有机物与表达或不表达HGF的永生化成纤维细胞混合时,组织重组体可以有效地生成肿瘤。然而,当类有机物单独植入或与正常原代成纤维细胞混合植入时,很少观察到肿瘤的发展,这进一步证明,即使存在致癌突变,人类乳腺癌的形成也需要激活的气孔[65]. 这些结果进一步强调了这样一个观点,即即使存在强大的癌基因信号,基质环境的激活也是人类乳腺上皮恶性转化的重要组成部分体内.

HIM模型代表了一种独特的体内研究特定信号分子(如癌相关成纤维细胞(CAF)和构成肿瘤相关基质的其他细胞类型表达的信号分子)如何促进肿瘤进展的平台。值得注意的是,与许多基于细胞系的人类乳腺癌异种移植模型不同,HIM模型中由慢病毒转化的类有机物和单细胞悬浮液生成的人类乳腺肿瘤显示出人类患者肿瘤相关基质的若干组分(即血管生成性毛细血管、,αSMA阳性肌成纤维细胞、巨噬细胞和其他免疫细胞(图1)表明这是一个研究基质微环境对肿瘤发展和进展影响的有用模型。

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HIM模型中的基质细胞与肿瘤微环境

(A) 注射GFP-慢病毒感染的HMEC或GFP+致癌病毒感染的hmEC的人源化腺体的GFP-整体安装和H&E染色(顶面板)。成纤维细胞稀疏地存在于包埋正常上皮生长物的人源化区域(上图)内,并作为肿瘤生长物周围的致密基质反应。(B) GFP标记的人永生化成纤维细胞用于使清除的乳腺脂肪垫人源化,在人源化后2周出现(左),但被小鼠源性基质细胞的大量补充所取代(右)。小鼠Cot1 DNA(红色)的荧光原位杂交表明,招募的基质细胞(S)来源于小鼠。人类肿瘤细胞(T)仅通过DAPI染色(蓝色)进行鉴定。(C) (左)新生基质细胞(S)包括αSMA阳性(绿色)肌纤维母细胞样细胞和F4/80阳性(红色)巨噬细胞。人类肿瘤细胞(T)仅用DAPI标记(蓝色)。(右)人特异性波形蛋白抗体染色的人肿瘤细胞(红色)。

3.3肿瘤纤维化和进展

肿瘤和伤口都会引发基质反应,其特征是ECM重塑、生长因子分泌、细胞迁移和血管生成。在正常伤口愈合过程中,这种基质反应由骨髓源性造血细胞启动,伴随着血管通透性、血浆外渗、纤维蛋白沉积、血小板活化和炎性细胞浸润的显著增加,共同导致大量细胞因子和生长因子的释放[66]. 这种反应导致肉芽组织的生成,其特征是血管生成、成纤维细胞活化为αSMA阳性肌成纤维细胞和基质重塑。

损伤组织基质内的肌成纤维细胞与肿瘤基质内的αSMA阳性成纤维细胞(CAFs)的区别在于后者与肿瘤细胞的共同进化以及支持小鼠肿瘤生长的能力[52,67]. 然而,这两种细胞类型表达相似的标记物,它们在基质中的出现与基底膜的破坏和纤维化特征相一致。值得注意的是,TGFβ是纤维化反应的主要煽动者,因为它可以促进应力纤维和含纤维连接蛋白的纤维的组装,这些纤维产生肌成纤维细胞特有的收缩力[7]. 然而,由于这些细胞类型之间缺乏分子差异,TGFβ是否能促进常驻组织成纤维细胞转化为促肿瘤CAF而非肌成纤维细胞尚不清楚。

同样,血小板衍生生长因子亚型BB(PDGF-BB)也被证明能促进肿瘤内的促结缔组织增生和纤维化反应。与缺乏基质反应的对照细胞相比,PDGF-B cDNA稳定转染人WM9黑色素瘤细胞诱导结缔组织隔巢内血管化肿瘤的形成[68]. 类似地,PDGF-B在永生化、非肿瘤源性人类角质形成细胞中的强制表达也能促进间充质细胞增殖、血管生成和上皮细胞增殖体内[6]. 利用三维共培养系统,研究表明肿瘤细胞足以在培养的常驻组织成纤维细胞中诱导肌成纤维细胞表型;然而,只有一小部分与肿瘤细胞接触最密切的成纤维细胞以这种方式作出反应[54]. 这些和其他研究共同表明,CAF可以由间质-上皮细胞串扰产生[6]PDGF和TGFβ可能是诱导乳腺肿瘤CAF表型的信号。

虽然CAF明显促进肿瘤生长[52,67]它们的起源在很大程度上仍然不得而知。CAF和肌成纤维细胞可以从循环纤维细胞中获得[69]表达造血干细胞标记以及单核细胞谱系和成纤维细胞标记的细胞。已知纤维细胞可分化为肌成纤维细胞,并已在乳腺浸润性导管癌和DCIS病变中发现[70,71]. 此外,骨髓源性间充质干细胞(MSCs)也被证明能分化为具有CAF样特征的αSMA阳性细胞[72,73]. 多种细胞类型的转分化也被认为是CAF的来源。例如,内皮-间充质转化在暴露于TGFβ后可产生肌纤维母细胞样细胞[74]. 内皮细胞特异性LacZ报告小鼠肿瘤含有LacZ阳性成纤维细胞[74]表明内皮细胞转分化可促进微环境中的CAF含量。上皮-间质转化(EMT)长期以来一直被认为是进展为侵袭性肿瘤的必要步骤。有趣的是,有证据表明接受EMT的肿瘤细胞可能转分化为肌成纤维细胞。在肺纤维化小鼠模型中,通过β-半乳糖苷酶标记来追踪肺上皮细胞的命运,表明损伤肺内积聚的波形蛋白阳性细胞来源于上皮[75]. 来自化生人乳腺癌的间质样细胞系保留了与上皮性肿瘤起源的遗传联系,但与肌成纤维细胞表型相似体内并促进裸鼠MCF7乳腺癌细胞瘤的生长,类似于CAF促进的生长[76].

4.临床前景和治疗靶向

4.1基质作为预后因素

乳腺癌研究的一个活跃领域涉及确定预后和预测因素,这些因素将有助于指导早期乳腺癌和确诊乳腺癌的最佳疗程治疗。围绕癌前乳腺组织、DCIS病变和既定肿瘤的基质提供了丰富的潜在生物标记物和预后信息。

乳房X线密度(MD)是指乳房内低密度脂肪组织与高密度腺体和成纤维基质组织的相对丰度。自从这个概念在20世纪70年代首次被描述以来,MD是乳腺癌发展的一个重要危险因素,这一点已经很清楚了;60%或以上的乳腺受累于钼靶致密组织,患乳腺癌的相对风险增加3-5倍[77,78]. 为了寻找可能与MD相关的遗传多态性和其他生物标志物,已经进行了大量研究,并且有证据表明IGF-1和激素信号级联在促进MD中的作用[79,80]. 乳腺组织中循环IGF-1水平和IGF-1表达与绝经前妇女MD增加呈正相关[81,82]. 总的来说,绝经后乳房密度降低,但研究表明绝经后激素替代疗法(雌激素和孕酮)与MD的显著增加有关,这可能是这种干预措施增加乳腺癌风险的部分原因[83,84]. 相反,ER抑制剂他莫昔芬治疗可降低MD[85,86]. 乳腺致密组织也与组织中胶原蛋白-1沉积增加有关[82,87]. 最近描述的一个小鼠模型直接表明,乳腺中较高的胶原蛋白水平会增加肿瘤的形成和侵袭行为[88]这表明致密组织区域可能促进肿瘤生长。

表达谱分析在阐明人类乳腺肿瘤的异质性方面做了很多工作,也被用于识别对乳腺癌有预测价值的基质特征。一种“伤口愈合”基因特征,最初来源于培养成纤维细胞对血清反应的微阵列分析[89]已经证明有能力预测乳腺癌患者的生存率[90]. 最近,通过使用激光捕获显微切割分离肿瘤相关基质,产生了一个26基因基质衍生的预后预测因子,该预测因子可预测无复发生存率[57]. 与低存活率相关的基因参与肿瘤内的缺氧和血管生成反应以及肿瘤相关的巨噬细胞免疫反应。相反,表明肿瘤抑制免疫反应的基因与患者的良好预后相关[57]. 另一项最近对肿瘤基质的微阵列研究显示,反应性基质基因特征(提示肿瘤内基质含量大)与新辅助化疗耐药相关[91]. 这些研究表明,通过筛查与乳腺癌相关的基质,可以对潜在的肿瘤病程及其对治疗的反应了解很多。

4.2靶向肿瘤相关基质作为临床策略

肿瘤微环境已经成为一个有吸引力的临床药物靶点,因为人们已经认识到,不仅肿瘤上皮细胞存在功能障碍,而且肿瘤相关基质细胞也存在功能障碍[92]. 越来越清楚的是,肿瘤基质内的细胞正在与肿瘤微环境的其他组成部分以及肿瘤上皮细胞进行通信,因此,可以破坏肿瘤“生态系统”的药物靶点备受追捧。药物开发最活跃的途径是靶向促肿瘤炎症过程和肿瘤相关血管生成[92,93]. 其中临床上最先进的是靶向肿瘤内皮细胞的VEGF抑制剂,如抗VEGF单克隆抗体贝伐单抗和酪氨酸激酶抑制剂,如索拉非尼和舒尼替尼,在转移性乳腺癌和结肠癌联合化疗中具有临床疗效[93]. 已经广泛用于乳腺癌临床的药物,如三苯氧胺和来曲唑,虽然旨在抑制乳腺癌上皮细胞中的雌激素活性,但也具有作用于肿瘤相关基质的双重益处。三苯氧胺可以作用于肿瘤相关的ECM,从而降低乳腺癌细胞的侵袭性在体外体内[94]. 芳香化酶抑制剂来曲唑也可以被认为是一种以造口为靶点的药物,因为绝经后女性脂肪组织中的芳香化素酶作用产生了许多局部雌激素活性。此外,来曲唑可以阻断雌激素对ER阴性乳腺肿瘤小鼠异种移植瘤模型中肿瘤相关基质的促瘤作用[95].

最近已开展努力,以确定和开发与CAF和肿瘤基质旁分泌信号网络特异性相关的潜在药物靶点。由于FAP的过度表达,有几种方法被用于直接靶向CAF,FAP在上皮性肿瘤的基质细胞上广泛表达。抗FAP抗体已被改造为将药物输送到肿瘤部位,FAP的丝氨酸蛋白酶活性已被用于激活肿瘤附近的前毒素,疫苗已被开发为对FAP抗原产生免疫反应[9698]. 在小鼠宫颈癌和结肠癌模型中,用酪氨酸激酶抑制剂伊马替尼破坏肿瘤细胞衍生PDGF配体和基质PDGF受体之间的旁分泌信号环,可以有效地减少肿瘤生长和肿瘤血管形成[99,100]. 肿瘤细胞表达的hedgehog配体和肿瘤相关基质中的信号效应物Gli-1也存在类似的肿瘤基质信号串扰[101,102]. 在胰腺癌小鼠模型中通过抑制hedgehog信号耗尽肿瘤相关基质,使吉西他滨增加肿瘤灌注并降低肿瘤生长[103]. 这些研究(以及其他研究)展示了肿瘤基质靶向的新方法,以促进肿瘤的有效治疗。

5.结论

乳腺恶性肿瘤由异质性细胞类型组成,包括被细胞外基质包围的异常调节上皮细胞、癌症相关成纤维细胞、炎症细胞和血管。目前的治疗主要针对癌细胞,然而,许多女性在治疗后会出现复发性疾病和/或远处转移。鉴于基质在癌症进展中的支持和指导作用,针对基质和上皮的治疗方法可能对预防局部复发和转移具有更大的临床疗效。在正常发育和肿瘤发生过程中,研究乳腺上皮细胞及其相关基质之间的信号传导相互作用,可能为未来的治疗提供更多的化疗靶点。

致谢

我们向那些由于空间限制而无法引用其研究的人道歉。这项工作得到了美国癌症学会-新英格兰分部-海滨博士后奖学金(P.K)、国家研究资源中心(NCRR)K01-RR021858(L.A.)、乳腺癌研究基金会(J.R.和C.K.)和国防部乳腺癌研究计划(BC073866)的资助和NIH/NCI R01CA125554。C.K.是Raymond and Beverly Sackler基金会学者。

脚注

出版商免责声明:这是一份未经编辑的手稿的PDF文件,已被接受出版。作为对客户的服务,我们正在提供这份早期版本的手稿。手稿在以最终可引用的形式出版之前,将经过编辑、排版和校对结果证明。请注意,在制作过程中可能会发现可能影响内容的错误,适用于该期刊的所有法律免责声明均适用。

1使用的缩写:E,胚胎期;ECM、细胞外基质;成纤维细胞生长因子;甲状旁腺激素相关肽;TEB,末端芽;雌激素受体;表皮生长因子受体;生长激素;胰岛素样生长因子;转化生长因子β;小鼠乳腺肿瘤病毒;αSMA,α平滑肌肌动蛋白;成纤维细胞活化蛋白;HIM,人机交互;RMFs,减少乳腺成纤维细胞;肝细胞生长因子;导管癌就地; 癌相关成纤维细胞;血管内皮生长因子;血小板衍生生长因子;间充质干细胞;上皮-间充质转化;MD,乳房X光密度。

工具书类

1DeOme KB、Faulkin LJ,Jr、Bern HA、Blair PB。从增生性肺泡结节移植到雌性C3H小鼠无腺体乳腺脂肪垫的乳腺肿瘤的发展。癌症研究。1959;19:515–520.[公共医学][谷歌学者]
2.Daniel CW,DeOme KB。单层培养后小鼠乳腺的体内生长。科学。1965;149:634–636.[公共医学][谷歌学者]
三。Booth BW、Mack DL、Androutsellis-Theotokis A、McKay RD、Boulanger CA、Smith GH。乳腺微环境改变神经干细胞的分化储备。美国国家科学院院刊。2008;105:14891–14896. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
4Boulanger CA,Mack DL,Booth BW,Smith GH。与乳腺微环境的相互作用重定向体内生精细胞的命运。美国国家科学院院刊。2007;104:3871–3876. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
5Barcellos-Hoff MH,Ravani SA。照射后的乳腺基质促进未照射上皮细胞的致瘤潜能表达。癌症研究。2000;60:1254–1260.[公共医学][谷歌学者]
6Skobe M,Fusenig NE。通过基质细胞激活永生人类角质形成细胞的致瘤转化。美国国家科学院院刊。1998;95:1050–1055. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
7Ronnov-Jessen L、Petersen OW、Bissell MJ。正常乳腺向恶性乳腺转化过程中的细胞变化:基质反应的重要性。生理学评论。1996;76:69–125.[公共医学][谷歌学者]
8Bissell MJ,Radisky D.将肿瘤放在背景中。Nat Rev癌症。2001;1:46–54. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
9Hens JR、Wysolmerski JJ。乳腺发育的关键阶段:胚胎乳腺形成的分子机制。乳腺癌研究。2005;7:220–224. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
10Robinson GW,Karpf AB,Kratochwil K.通过组织相互作用调节乳腺发育。乳腺生物肿瘤杂志。1999;4:9–19.[公共医学][谷歌学者]
11樱花T。乳腺分化中基质-间充质关系的新方面。Int Rev细胞。1991;125:165–202.[公共医学][谷歌学者]
12Propper A,Gomot L.兔乳腺间质对雏鸡表皮分化的控制。体验。1973;29:1543–1544.[公共医学][谷歌学者]
13Cunha GR、Young P、Christov K、Guzman R、Nandi S、Talamantes F等。胚胎乳腺间质在表皮细胞中诱导的乳腺表型表达。Acta Anat(巴塞尔)1995;152:195–204.[公共医学][谷歌学者]
14Sakakura T、Nishizuka Y、Dawe CJ。小鼠乳腺的间充质依赖性形态发生和上皮特异性细胞分化。科学。1976;194:1439–1441.[公共医学][谷歌学者]
15Sakakura T,Sakagami Y,Nishizuka Y。参与小鼠乳腺胚胎发生的间充质组织的双重起源。开发生物。1982;91:202–207.[公共医学][谷歌学者]
16Kimata K,Sakakura T,Inaguma Y,Kato M,Nishizuka Y。发育中小鼠乳腺中两种不同间充质的参与:脂肪垫前体细胞合成基底膜成分。胚胎实验形态学杂志。1985;89:243–257.[公共医学][谷歌学者]
17Howard BA,Gusterson BA。人类乳房发育。乳腺生物肿瘤杂志。2000;5:119–137.[公共医学][谷歌学者]
18Schwertfeger KL。成纤维细胞生长因子在发育和癌症中的作用:来自乳腺和前列腺的见解。当前药物目标。2009;10:632–644.[公共医学][谷歌学者]
19Hatsell S,Frost AR。刺猬信号在乳腺发育和乳腺癌中的作用。乳腺生物肿瘤杂志。2007;12:163–173.[公共医学][谷歌学者]
20Robinson GW.胚胎乳腺发育中信号通路的合作。Nat Rev基因。2007;8:963–972.[公共医学][谷歌学者]
21.Mailleux AA、Spencer-Dene B、Dillon C、Ndiaye D、Savona-Baron C、Itoh N等。FGF10/FGFR2b信号在小鼠胚胎乳腺发育过程中的作用。发展。2002;129:53–60.[公共医学][谷歌学者]
22Eblaghie MC、Song SJ、Kim JY、Akita K、Tickle C、Jung HS。小鼠胚胎乳腺发育中FGF和Wnt信号与Tbx3基因表达的相互作用。J Anat杂志。2004;205:1–13. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
23Walterhouse DO,Lamm ML,Villavicencio E,Iannaccone PM。hedgehog-patched-Gli信号转导在生殖中的新兴作用。生物再现。2003;69:8–14.[公共医学][谷歌学者]
24威廉姆斯·JM、丹尼尔·CW。乳管伸长:分支形态发生过程中肌上皮和基底膜的分化。开发生物。1983;97:274–290.[公共医学][谷歌学者]
25Bocchinfuso WP,堪萨斯州科拉赫。雌激素受体敲除小鼠的乳腺发育和肿瘤发生。乳腺生物肿瘤杂志。1997;2:323–334.[公共医学][谷歌学者]
26Mallepell S、Krust A、Chambon P、Brisken C.通过上皮雌激素受体α的旁分泌信号是乳腺增殖和形态发生所必需的。美国国家科学院院刊。2006;103:2196–2201. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
27Mueller SO、Clark JA、Myers PH、Korach KS。成年小鼠的乳腺发育需要上皮和基质雌激素受体α。内分泌学。2002;143:2357–2365.[公共医学][谷歌学者]
28Saji S、Jensen EV、Nilsson S、Rylander T、Warner M、Gustafsson JA。啮齿动物乳腺中的雌激素受体α和β。美国国家科学院院刊。2000;97:337–342. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
29Zeps N、Bentel JM、Papadimitriou JM和D'Antuono MF、Dawkins HJ。雌激素受体阴性上皮细胞在小鼠乳腺发育和生长中的作用。区别。1998;62:221–226.[公共医学][谷歌学者]
30Daniel CW,Silberstein GB,Strickland P.通过缓释植入物和类固醇放射自显影术分析17β-雌二醇对小鼠乳腺管的直接作用。癌症研究。1987;47:6052–6057.[公共医学][谷歌学者]
31Krege JH、Hodgin JB、Couse JF、Enmark E、Warner M、Mahler JF等。缺乏雌激素受体β的小鼠的生殖表型。美国国家科学院院刊。1998;95:15677–15682. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
32Sebastian J、Richards RG、Walker MP、Wiesen JF、Werb Z、Derynk R等。乳腺形态发生过程中表皮生长因子受体和erbB-2的激活和功能。细胞生长差异。1998;9:777–785.[公共医学][谷歌学者]
33Wiesen JF,Young P,Werb Z,Cunha GR.通过基质表皮生长因子受体发出信号对乳腺导管的发育是必要的。发展。1999;126:335–344.[公共医学][谷歌学者]
34Coleman S、Silberstein GB、Daniel CW。小鼠乳腺导管形态发生:支持表皮生长因子作用的证据。开发生物。1988;127:304–315.[公共医学][谷歌学者]
35Kenney NJ、Bowman A、Korach KS、Barrett JC、Salomon DS。外源性表皮样生长因子对雌激素受体α基因敲除(ERKO)小鼠乳腺发育和分化的影响。乳腺癌研究治疗。2003;79:161–173.[公共医学][谷歌学者]
36Luetteke NC、Qiu TH、Fenton SE、Troyer KL、Riedel RF、Chang A等。EGF和两性调节蛋白基因的靶向失活揭示了EGF受体配体在小鼠乳腺发育中的独特作用。发展。1999;126:2739–2750.[公共医学][谷歌学者]
37Gallego MI、Binart N、Robinson GW、Okagaki R、Coschigano KT、Perry J等。催乳素、生长激素和表皮生长因子激活乳腺组织不同部位的Stat5,并发挥不同和重叠的发育作用。开发生物。2001;229:163–175.[公共医学][谷歌学者]
38Richards RG、Klotz DM、Walker MP、DiAugustine RP。胰岛素样生长因子-I(IGF-I)缺乏小鼠的乳腺分支形态发生减少,但IGF-I肝特异性缺失小鼠的乳腺分枝形态发生减少。内分泌学。2004;145:3106–3110.[公共医学][谷歌学者]
39Kleinberg DL,Feldman M,Ruan W.IGF-I:终末芽形成和导管形态发生的一个重要因素。乳腺生物肿瘤杂志。2000;5:7–17.[公共医学][谷歌学者]
40Bierie B,Moses HL。肿瘤微环境:TGFbeta:癌症的分子Jekyll和Hyde。Nat Rev癌症。2006;6:506–520.[公共医学][谷歌学者]
41Barcellos-Hoff MH,Akhurst RJ。乳腺癌中转化生长因子-β:太多,太晚。乳腺癌研究。2009;11:202. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
42Ewan KB、Shyamala G、Ravani SA、Tang Y、Akhurst R、Wakefield L等。乳腺中潜在转化生长因子-β活化:卵巢激素的调节影响导管和肺泡增殖。《美国病理学杂志》。2002;160:2081–2093. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
43Joseph H,Gorska AE,Sohn P,Moses HL,Serra R.小鼠乳腺基质中缺乏激酶的转化生长因子-βⅡ型受体的过度表达导致上皮分支增加。分子生物学细胞。1999;10:1221–1234. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
44Pierce DF,Jr,Johnson MD,Matsui Y,Robinson SD,Gold LI,Purchio AF等。在表达活性TGF-β1的转基因小鼠中抑制乳腺导管发育,但不抑制肺泡发育。基因发育。1993;7:2308–2317.[公共医学][谷歌学者]
45Daniel CW、Silberstein GB、Van Horn K、Strickland P、Robinson S.TGF-β1诱导的小鼠乳腺导管生长抑制:发育特异性和特征。开发生物。1989;135:20–30.[公共医学][谷歌学者]
46Valverius EM、Ciardiello F、Heldin NE、Blondel B、Merlo G、Smith G等。基质对过表达c-myc和SV40T的人乳腺上皮细胞转化的影响。细胞生理学杂志。1990;145:207–216.[公共医学][谷歌学者]
47Knabbe C、Lippman ME、Wakefield LM、Flanders KC、Kasid A、Derynck R等。转化生长因子-beta是人类乳腺癌细胞中一种激素调节的负性生长因子的证据。单元格。1987;48:417–428.[公共医学][谷歌学者]
48Moses HL,Coffey RJ,Jr,Leof EB,Lyons RM,Keski-Oja J.转化生长因子β对细胞增殖的调节。细胞生理学杂志。1987增刊5:1-7。[公共医学][谷歌学者]
49.Ashcroft GS、Dodsworth J、van Boxtel E、Tarnuzzer RW、Horan MA、Schultz GS等。雌激素促进皮肤伤口愈合,与TGF-β1水平增加相关。自然医学。1997;:1209–1215.[公共医学][谷歌学者]
50Stevenson S、Nelson LD、Sharpe DT、Thornton MJ。17-β-雌二醇调节培养的人皮肤成纤维细胞分泌TGF-β。生物材料科学学院主编。2008;19:1097–1109.[公共医学][谷歌学者]
51Cukierman E.乳腺癌进展中成纤维细胞间质纤维化的可视化定量分析。乳腺生物肿瘤杂志。2004;9:311–324.[公共医学][谷歌学者]
52Orimo A、Gupta PB、Sgroi DC、renzana-Seisdedos F、Delaunay T、Naeem R等。浸润性乳腺癌中存在的基质成纤维细胞通过SDF-1/CXCL12分泌增加促进肿瘤生长和血管生成。单元格。2005;121:335–348.[公共医学][谷歌学者]
53Degen M、Brellier F、Kain R、Ruiz C、Terracciano L、Orend G等。Tenascin-W是低度人类乳腺癌中活化肿瘤基质的新标记物,并影响细胞行为。癌症研究。2007;67:9169–9179.[公共医学][谷歌学者]
54Ronnov-Jessen L、Petersen OW、Koteliansky VE、Bissell MJ。乳腺癌中肌成纤维细胞的起源。在培养中对肿瘤环境的重新描述揭示了多样性,并牵涉到转化的成纤维细胞和招募的平滑肌细胞。临床投资杂志。1995;95:859–873. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
55Allinen M、Beroukhim R、Cai L、Brennan C、Lahti-Dominic J、Huang H等。乳腺癌肿瘤微环境的分子特征。癌细胞。2004;6:17–32.[公共医学][谷歌学者]
56Casey T、Bond J、Tighe S、Hunter T、Lintault L、Patel O等。分子特征表明基质细胞在浸润性乳腺癌的发展中起着重要作用。乳腺癌研究治疗。2009;114:47–62.[公共医学][谷歌学者]
57Finak G、Bertos N、Pepin F、Sadekova S、Souleimanova M、Zhao H等。基质基因表达预测乳腺癌的临床结局。自然医学。2008;14:518–527.[公共医学][谷歌学者]
58Ma XJ、Dahiya S、Richardson E、Erlander M、Sgroi DC。乳腺癌进展过程中肿瘤微环境的基因表达谱。乳腺癌研究。2009;11:R7。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
59North TE、Goessling W、Walkley CR、Lengerke C、Kopani KR、Lord AM等。前列腺素E2调节脊椎动物造血干细胞稳态。自然。2007;447:1007–1011. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
60Campbell I,Polyak K,Haviv I。癌相关成纤维细胞的克隆突变:反对基因协同进化的案例。癌症研究。2009;69:6765–6768.[公共医学][谷歌学者]
61Eng C,Leone G,Orloff MS,Ostrowski MC。肿瘤间质的基因组改变。癌症研究。2009;69:6759–6764.[公共医学][谷歌学者]
62胡敏,姚杰,蔡力,柯巴赫曼,范登BF,Velculescu V,等。乳腺癌基质细胞的显著表观遗传变化。自然遗传学。2005;37:899–905.[公共医学][谷歌学者]
63Kuperwasser C、Chavarria T、Wu M、Magrane G、Gray JW、Carey L等。小鼠正常和恶性乳腺组织的重建。美国国家科学院院刊。2004;101:4966–4971. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
64Proia DA,Kuperwasser C.在小鼠模型中重建人类乳腺组织。国家协议。2006;1:206–214.[公共医学][谷歌学者]
65Wu M,Jung L,Cooper AB,Fleet C,Chen L,Breault L,et al.人体乳腺癌组织转基因小鼠模型中人类乳腺肿瘤发生的基因需求分析。美国国家科学院院刊。2009;106:7022–7027. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
66德沃夏克HF。肿瘤:无法愈合的伤口。肿瘤基质生成和伤口愈合之间的相似性。N英格兰医学杂志。1986;315:1650–1659.[公共医学][谷歌学者]
67Olumi AF、Grossfeld GD、Hayward SW、Carroll PR、Tlsty TD、Cunha GR。癌相关成纤维细胞直接导致启动的人类前列腺上皮的肿瘤进展。癌症研究。1999;59:5002–5011. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
68Forsberg K,Valyi-Nagy I,Heldin CH,Herlyn M,Westermark B。肿瘤发生中血小板衍生生长因子(PDGF):异种移植人类黑色素瘤中血管结缔组织基质的形成,产生PDGF-BB。美国国家科学院院刊。1993;90:393–397. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
69Bellini A,Mattoli S.纤维细胞(骨髓衍生间充质祖细胞)在反应性和修复性纤维症中的作用。实验室投资。2007;87:858–870.[公共医学][谷歌学者]
70Barth PJ、Ebrahimsade S、Ramaswamy A、Moll R.CD34+纤维细胞在浸润性导管癌、导管原位癌和良性乳腺病变中的表达。维丘建筑。2002;440:298–303.[公共医学][谷歌学者]
71Mori L、Bellini A、Stacey MA、Schmidt M、Mattoli S.纤维细胞对受伤皮肤中的肌成纤维细胞群有贡献,并且来源于骨髓。实验细胞研究。2005;304:81–90.[公共医学][谷歌学者]
72Spaeth EL、Dembinski JL、Sasser AK、Watson K、Klopp A、Hall B等。间充质干细胞向肿瘤相关成纤维细胞的转化有助于纤维血管网络扩张和肿瘤进展。公共科学图书馆一号。2009;4:e4992。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
73Mishra PJ、Mishra PJ、Humeniuk R、Medina DJ、Alexe G、Mesirov JP等。人类间充质干细胞的癌相关成纤维细胞样分化。癌症研究。2008;68:4331–4339. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
74.Zeisberg EM,Potenta S,Xie L,Zeisberg-M,Kalluri R.发现内皮细胞向间充质细胞转化是癌相关成纤维细胞的来源。癌症研究。2007;67:10123–10128.[公共医学][谷歌学者]
75Kim KK、Kugler MC、Wolters PJ、Robinard L、Galvez MG、Brumwell AN等。肺泡上皮细胞-间充质转化在肺纤维化过程中在体内发展,并受细胞外基质的调节。美国国家科学院院刊。2006;103:13180–13185. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
76Petersen OW、Nielsen HL、Gudjonsson T、Villadsen R、Rank F、Niebuhr E等。人类乳腺癌的上皮-间质转化可以提供非恶性基质。《美国病理学杂志》。2003;162:391–402. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
77Wolfe JN公司。乳腺模式是患乳腺癌风险的指标。Am J伦琴诺。1976;126:1130–1137.[公共医学][谷歌学者]
78Boyd NF,Guo H,Martin LJ,Sun L,Stone J,Fishell E,等。乳房X光密度与乳腺癌风险和检测。N英格兰医学杂志。2007;356:227–236.[公共医学][谷歌学者]
79Kelemen LE,Sellers TA,Vachon CM。乳房X光密度基因是否能告知癌症病因?Nat Rev癌症。2008;8:812–823. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
80Martin LJ,Boyd NF.乳房X光密度。乳腺密度与乳腺癌风险的潜在机制:基于流行病学证据的假设。乳腺癌研究。2008;10:201. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
81Byrne C、Colditz GA、Willett WC、Speizer FE、Pollak M、Hankinson SE。血浆胰岛素样生长因子(IGF)I、IGF-结合蛋白3和乳房X线密度。癌症研究。2000;60:3744–3748.[公共医学][谷歌学者]
82Guo YP、Martin LJ、Hanna W、Banerjee D、Miller N、Fishell E等。与乳房X线密度相关的生长因子和基质蛋白。癌症流行生物标志物预防。2001;10:243–248.[公共医学][谷歌学者]
83.Rutter CM、Mandelson MT、Laya MB、Seger DJ、Taplin S.与激素替代治疗开始、停止和持续使用相关的乳房密度变化。JAMA公司。2001;285:171–176.[公共医学][谷歌学者]
84Chlebowski RT、Hendrix SL、Langer RD、Stefanick ML、Gass M、Lane D等。雌激素和孕激素对绝经后健康女性乳腺癌和乳房X线摄影的影响:女性健康倡议随机试验。JAMA公司。2003;289:3243–3253.[公共医学][谷歌学者]
85Cuzick J、Warwick J、Pinney E、Warren RM、Duffy SW。三苯氧胺和乳腺密度对乳腺癌风险增加的女性的影响。美国国家癌症研究所杂志。2004;96:621–628.[公共医学][谷歌学者]
86Decensi A、Gandini S、Serrano D、Cazzaniga M、Pizzamiglio M、Maffini F等。激素替代疗法使用者低剂量他莫昔芬的随机剂量范围试验。临床肿瘤学杂志。2007;25:4201–4209.[公共医学][谷歌学者]
87Li T、Sun L、Miller N、Nickle T、Woo J、Hulse-Smith L等。测量的乳腺组织特征与乳房X线密度和其他乳腺癌风险因素的相关性。癌症流行生物标志物预防。2005;14:343–349.[公共医学][谷歌学者]
88Provenzano PP、Inman DR、Eliceiri KW、Knittel JG、Yan L、Rueden CT等。胶原蛋白密度促进乳腺肿瘤的发生和发展。BMC医学。2008;6:11. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
89.Iyer VR、Eisen MB、Ross DT、Schuler G、Moore T、Lee JC等。人类成纤维细胞对血清反应的转录程序。科学。1999;283:83–87.[公共医学][谷歌学者]
90Chang HY、Nuyten DS、Sneddon JB、Hastie T、Tibshirani R、Sorlie T等。创伤反应基因表达特征预测乳腺癌生存率的稳健性、可扩展性和整合性。美国国家科学院院刊。2005;102:3738–3743. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
91.Farmer P、Bonnefoi H、Anderle P、Cameron D、Wirapati P、Becette V等。基质相关基因特征预测乳腺癌对新辅助化疗的耐药性。自然医学。2009;15:68–74.[公共医学][谷歌学者]
92Mueller MM,Fusenig NE。朋友还是敌人——癌症中肿瘤基质的双极效应。Nat Rev癌症。2004;4:839–849.[公共医学][谷歌学者]
93Ellis LM,Hicklin DJ。VEGF靶向治疗:抗肿瘤活性的机制。Nat Rev癌症。2008;8:579–591.[公共医学][谷歌学者]
94Hattar R、Maller O、McDaniel S、Hansen KC、Hedman KJ、Lyons TR等。他莫昔芬诱导乳腺基质的多效性变化,导致细胞外基质抑制转化表型。乳腺癌研究。2009;11:R5。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
95.Gupta PB、Proia D、Cingoz O、Weremowicz J、Naber SP、Weinberg RA等。雌激素的系统间质效应促进雌激素受体阴性肿瘤的生长。癌症研究。2007;67:2062–2071.[公共医学][谷歌学者]
96Lebeau AM,Brennen WN,Aggarwal S,Denmeade SR.用成纤维细胞活化蛋白激活的原球蛋白靶向癌基质。摩尔癌症治疗。2009新闻界。[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
97Ostermann E、Garin-Chesa P、Heider KH、Kalat M、Lamche H、Puri C等。肿瘤模型中靶向肿瘤成纤维细胞丝氨酸蛋白酶的有效免疫偶联治疗。临床癌症研究。2008;14:4584–4592.[公共医学][谷歌学者]
98Loefler M、Kruger JA、Niethammer AG、Reisfeld RA。靶向肿瘤相关成纤维细胞通过增加肿瘤内药物摄取来改善癌症化疗。临床投资杂志。2006;116:1955–1962. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
99Pietras K,Pahler J,Bergers G,Hanahan D.药理学靶向研究揭示的旁分泌PDGF信号在促血管生成肿瘤基质中的作用。公共科学图书馆-医学。2008;5:e19。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
100Kitadai Y、Sasaki T、Kuwai T、Nakamura T、Bucana CD、Fidler IJ。通过反应性基质靶向血小板衍生生长因子受体的表达抑制人结肠癌的生长和转移。《美国病理学杂志》。2006;169:2054–2065. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
101Yauch RL、Gould SE、Scales SJ、Tang T、Tian H、Ahn CP等。癌症中刺猬信号的旁分泌需求。自然。2008;455:406–410.[公共医学][谷歌学者]
102Fan L、Pepicelli CV、Dibble CC、Catbagan W、Zarycki JL、Laciak R等。Hedgehog信号传导促进前列腺异种移植物肿瘤生长。内分泌学。2004;145:3961–3970.[公共医学][谷歌学者]
103Olive KP、Jacobetz MA、Davidson CJ、Gopinathan A、McIntyre D、Honess D等。抑制Hedgehog信号传导增强胰腺癌小鼠模型中化疗的递送。科学。2009;324:1457–1461. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]