跳到主要内容
访问密钥 NCBI主页 MyNCBI主页 主要内容 主导航
生物标记研究。2021; 9: 39.
2021年5月27日在线发布。 数字对象标识:10.1186/s40364-021-00295-8
预防性维修识别码:项目管理委员会8161983
PMID:34044876

RNA N6-甲基腺苷甲基化在乳腺癌中的作用

关联数据

数据可用性声明

摘要

N6-甲基腺苷(m6A)修饰是最常见的内部mRNA修饰,参与真核生物的许多生物学过程。越来越多的证据表明,m6A可能在乳腺癌的发生、转移和血管生成中发挥促进或抑制作用。本文综述了m6A修饰在乳腺癌生物学功能和预后价值方面的最新研究进展,以及潜在的相关治疗策略。

关键词:RNA甲基化,乳腺癌,临床病理特征,预后,药物靶点

集锦

  1. N6-甲基腺苷(m6A)修饰可以促进或抑制乳腺癌组织和细胞的细胞生长。
  2. m6A修饰与乳腺癌的临床病理特征和预后相关。
  3. m6A修饰与药物疗效有关,可能是乳腺癌潜在的选择性治疗靶点。

背景

根据GLOBOCAN 2018,乳腺癌是女性最常见的癌症,也是导致癌症死亡的主要原因[1]. 近年来,新型药物为乳腺癌的预防和控制提供了有效的治疗策略,包括针对PD-1/PD-L1/TMB/CTLA4的免疫检查点抑制剂、针对BRCA突变和HRD的PARP抑制剂、针对CDK4/6的CDK4/6抑制剂、针对PI3K/AKT/PTEN通路的PI3Kα抑制剂和AKT抑制剂,和靶向HER2的抗体药物结合物[2——6]. 此外,近年来,在全基因组测序、miRNA测序、单核苷酸多态性、DNA甲基化和反向蛋白质阵列分析等方面取得了很大进展,为乳腺癌的诊断和治疗提供了一些新的方法[7——10]. 然而,全球癌症统计数据仍显示,2018年全球有2088849例新病例和626679例癌症死亡[1]. 此外,世卫组织《今日癌症》预测,到2030年,约有817361名女性可能死于乳腺癌。也就是说,乳腺癌的预后仍然令人担忧。因此,仍然迫切需要有效的治疗或方案。

为了提高乳腺癌的治疗效果,有必要了解乳腺癌的发生、发展和分子生物学特征。近年来,已经进行了许多研究,但仍需要更多的研究来确定乳腺癌发生和发展的潜在机制。RNA修饰,特别是N6-甲基腺苷(m6A)修饰,为乳腺癌的治疗提供了一种更有效的方法和新的前景[11].

新的证据表明,m6A修饰与肿瘤增殖、分化、肿瘤发生、侵袭和转移相关,并在乳腺癌中作为癌基因或抗癌基因发挥作用[12——15]. 尽管m6A修饰在肿瘤生成过程中具有功能重要性,但其在乳腺癌中的关键作用仍不明确。本文简要综述了m6A修饰治疗乳腺癌的机制、潜在的治疗策略和可能的预后意义。

m6A改性的分子机制

根据MODOMICS数据库,截至2017年底,已鉴定出163种不同的RNA转录后修饰[16]. 更重要的是,超过60%的RNA修饰是甲基化修饰,而m6A是哺乳动物中高度丰富和保守的mRNA修饰。先前的实验表明,m6A修饰主要发生在RRACH序列的腺嘌呤中(m6A共有基序),平均信使核糖核酸包含约3-5个m6A修饰[17,18].

在乳腺癌中,m6A修饰调节RNA终止密码子、5′帽结构和3′非翻译末端区域(UTR),并以此方式影响RNA转录、RNA加工、RNA剪接、RNA降解和RNA翻译(图1) [19,20]. 一般来说,m6A修饰物包括三个重要成分:writers,也称为甲基转移酶;去除m6A修饰的擦除酶或去甲基化酶;和读者,他们认识到m6A修饰位点并进一步规范m6A的修饰[20,21]. 迄今为止,已知的作家有METTL3、METTL14、METTL16和WTAP。已知橡皮擦仅包括脱甲基酶,包括FTO、ALKBH5和ALKBH3。读者主要包括YTH家族、HNRNP家族、FXR家族、IGF2BP家族、eIF家族和G3BP家族的成员。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为40364_2021_295_Fig1_HTML.jpg

m6A修饰物在乳腺癌中的作用机制。m6A修饰由三个重要组成部分组成:writers,也称为甲基转移酶;清除m6A修饰的橡皮擦或脱甲基酶;以及识别m6A修饰位点并进一步规范m6A改造的读者。m6A修饰影响RNA转录、RNA加工、RNA剪接、RNA降解、RNA输出和RNA翻译

先前的研究表明,m6A修饰间接/直接调节靶基因,从而促进或抑制乳腺癌中肿瘤的生长、增殖、迁移、侵袭和转移(图。(图1,1,表1). 此外,m6A修饰模式具有治疗意义,并与耐药性相关。此外,m6A修饰与乳腺癌的临床病理特征和预后有关(表2).

表1

RNA m6A甲基化在不同乳腺癌细胞系中的多种功能

类型组件法规来源子类型相关目标关键生物功能参考。
作家梅尔特3上调监管

MCF-7型

MDA-MB-231型

MDA-MB-453型

MDA-MB-468型

MCF-10A型

发光二极管A

基础

赫兹2+

基础

基础

let-7克,Bcl-2

1.METTL3促进细胞增殖和迁移。

2.敲除METTL3减少增殖并加速细胞凋亡。

[22,23]
向下MDA-MB-231 MDA-MB-468

基础

基础

COL3A1系列METTL3过度表达抑制迁移、侵袭和粘附。[24]
加拿大皇家银行15不确定因素MCF-7、T47D灯具ABAP1号机组RBM15介导细胞生长和侵袭。[25]
WTAP公司向下

MCF-7型

MDA-MB-231型

发光二极管A

基础

KGF、Erk1、Erk2

1.WTAP介导乳腺癌细胞的增殖和运动。

2.促进细胞运动和侵袭。

[26,27]
梅特尔14上调监管

英国电信549

T47D,MCF-7型

SKBR3公司

MDA-MB-231型

MDA-MB-436型

基础

发光二极管A

她的2+

基础

基础

CXCR4、CYP1B1、Hsa-miR-146a-5p

1.LNC942通过靶向METTL14促进细胞增殖和生长。

2.METTL14影响hsa-miR-146a-5p的表达,促进迁移和侵袭,对细胞增殖影响不大。

[28——30]
向下MDA-MB-231型基础——METTL14的过度表达显著抑制细胞生长和迁移。[26]
科威特航空1429上调监管

MCF-7型

SUM1315型

MDA-MB-231型

发光二极管A

基础

基础

CDK1型KIAA1429促进增殖、集落形成、迁移、侵袭和转移。[31,32]
向下乳腺癌她的2+————[26]
CBLL1公司上调监管

MCF-7型

Hakai细胞

发光二极管A

鲁米纳尔

ERαCBLL1抑制细胞增殖和迁移。[33——35]
橡皮擦自由贸易组织上调监管

4个T1

MCF-7型

SKBR-3型

MDA-MB-231型

MDA-MB-453型

基础

发光二极管A

赫兹2+

基础

她的2+

BNIP、FTO/miR-181b-3p/ARL5B途径

1.通过抑制BNIP3促进肿瘤生长和转移。

2.促进细胞体外侵袭和迁移。

3.促进乳腺癌的发展和侵袭性。

[36——40]
ALKBH5型上调监管

MCF-7、T47D

金额-159

MDA-MB-231型

MDA-MB-435型

发光二极管A

基础

基础

HER2型+

NANOG公司

1.HIF1α和HIF2α提示ALKBH5表达。

2.ALKBH5是乳腺癌致瘤性和肺转移所必需的。

3.ALKBH5基因敲除增加增殖和迁移。

[26,30]
读者FMR1(飞行管理1级)上调监管4个T1基础E-钙粘蛋白,波形蛋白

1.FMR1促进肿瘤生长、转移和细胞侵袭。

2.CHIP上调FMR1表达。

[41——43]
FXR1型上调监管

英国电信549

MCF-7型

MDA-MB-231型

基础

灯具A

基础

ECT2、PRKCI、,

Myc公司

1.FXR1促进细胞侵袭。[44——46]
IGF2BP1型上调监管

T47D型

MDA-MB-231MDA-MB-157型

发光二极管A

基础

基础

IGF2、ACTB、MYC、CD44、CTNNB、BTRC、β-连环蛋白IGF2BP1抑制细胞增殖、肿瘤生长和肺转移瘤。[47——52]
IGF2双极管2上调

SKBR3公司

MCF-7型

MDA-MB-231MDA-MB-435MDA-MB-668

LM2-4细胞

她的2+

发光二极管A

基础

基础

基础

基础

CTGF、IGF-2、,

IGF-1、ERK、,

PI3K/Akt途径

1.IGF2BP2通过靶向CTGF mRNA促进细胞迁移和减少细胞粘附。

2.IGF2BP2刺激细胞增殖、生长和分化。

3.miR-1193也抑制IGF2BP2翻译。

4.IGFBP2通过IGF1/IGF1R途径介导内皮细胞募集。

[53——56]
IGF2BP2/IGF2BP3上调监管

MDA-MB-157型

MDA-MB-231型

MCF-7、T47D

英国电信474

基础

基础

发光二极管A

发光二极管B

microRNA-200a,CNOT1IGF2BP2/IGF2BP3通过靶向microRNA-200a协同增加细胞迁移和侵袭。[57]
IGF2BP3型上调监管

T47D,MCF-7 HCC1937

SUM-1315 MDA-MB-231MDA-MB-435

MDA-MB-468型

SKBR3公司

发光二极管A

基础

基础

基础

基础

基础

她的2+

EMT、ABCG、EGFR信号、CD44/CD44+Fbs/IGF2

1.IGF2BP3增加细胞迁移和侵袭。

2.IGF2BP3促进EMT并阻断miR-3614成熟。

[25,57——67]
HNRNPC公司上调

T47D型

MCF-7型

MDA-MB-435型

灯具A

发光二极管A

基础

IRF3/7,

ISGF3,

干扰素β

1.HNRNPC促进细胞增殖、迁移、侵袭和转移。

2.抑制HNRNPC抑制增殖和肿瘤发生。

[68——70]
HNRNPA2B1号机组上调监管

MCF-7型

MCF-10A型

MDA-MB-231型

LCC9系列

发光二极管A

基础

基础

鲁米纳尔

STAT3、,

ERK1、,

ERK2号机组

1.HNRNPA2B1促进癌症的发展、进展和基因表达。

2.HNRNPA2B1与内分泌抵抗相关。

3.敲除HNRNPA2B1抑制增殖。

[71,72]
向下

MDA-MB-231型

MCF-7细胞

基础

发光二极管A

PFN2、Wnt途径、ERK/MAPK/扭曲途径HNRNPA2B1抑制异种移植瘤的生长,但促进自发肺转移。[73]

年初至今F1

年初至今2

上调监管

MCF-7型

MDA-MB-231型

MDA-MB-468型

发光二极管A

基础

基础

——

1.YTHDF1/2调节YTHDF3的表达。

2.YTHDF1/2促进细胞增殖、迁移和侵袭。

[17,31,36,74——76]
YTHDF3年上调监管

MDA-MB-231型

HCC1954年

4 T1

基础

她的2+

基础

ST6GALNAC5、GJA1、EGFR

1.YTHDF3促进脑内皮细胞粘附、外渗、侵袭、血管生成和细胞-星形胶质细胞相互作用。

2.敲除YTHDF3显著降低大脑

小鼠转移模型。

3.miR-106b-5p下调YTHDF3的表达。

[68,77]
eIF3A型不确定因素

MCF-7型

ZR-75-1型

MDA-MB-231、MB-453MDA-MB-468

发光二极管A

发光二极管B

基础

她的2+

基础

4EBP1、M2蛋白质eIF3A促进增殖或迁移。[78——81]
G3BP1型上调监管

MCF-7型

SKBR3公司

MDA-MB-231型

MDA-MB-468型

英国电信549

发光二极管A

她的2+

基础

基础

基础

PMP22、EMT、ZEB1、TGF-b信号

1.G3BP1促进肿瘤侵袭和迁移。

2.G3BP1参与囊泡贩运。

[82——86]

表2

乳腺癌患者RNA m6A甲基化与临床特征的关系

类型组件法规来源临床病理特征及预后参考。
作家梅尔特3上调正常和发光亚型MELLT3与预后较差相关。[23]
向下TNBC公司MELLT3与更好的DMFS和OS相关联。[24,26]
WTAP公司向下乳房METTL14的Reduced具有较差的DMFS。[26]
梅特尔14上调监管正常、发光亚型

1.METTL14的减少具有较差的DMFS。

2.METTL14与T分期相关,无分子分型、微血管浸润、神经浸润和转移。

[26]
科威特航空1429向下HER2+亚型KIAA1429与固有亚类、淋巴结转移和OS恶化相关。[32]
CBLL1公司上调监管乳腺癌CBLL1与ER状态相关。[34]
ZC3H13型向下TNBC公司与操作系统无关[87]
橡皮擦自由贸易组织上调监管

HER2+,正常,

发光亚型,

浸润性导管癌。

1.FTO与晚期进展、瘤周淋巴血管浸润、淋巴结转移、TNM分期、HER2状态和ER/PR状态相关。

2.FTO与更短的DFS/OS/RFS相关。

[37,88,89]
ALKBH5型上调监管乳腺癌ALKBH5与DMFS无关。[26]
读者

年初至今F1

年初至今2

YTHDF3年

上调监管乳腺癌

1.YTHDF1将OS和RFS恶化联系在一起

2.YTHDF2相关脑转移

3.YTHDF3与较差的OS和RFS相关

[31,68,74]
FMR1(飞行管理1级)上调监管乳腺癌FMR1与高肿瘤分级(G3)和高Ki67相关,并且容易转移到肺部[42]
FXR1型上调监管TNBC公司FXR1与较差的pCR和较差的DFMS和OS相关。[46,58]
HNRNPA2B1号机组上调监管乳腺癌

1.与内分泌抵抗有关。

2.预后较差

[41]
向下乳腺癌与更好的操作系统关联。[90]
IGF2BP1型上调监管乳腺癌IGF2BP1不影响肿瘤的生长或大小。[55]
IGF2双极管2上调监管乳腺癌IGF2BP2与晚期和低生存率相关。[55,91]
IGF2BP3型上调监管TNBC公司

1.IGF2BP3与肿瘤体积大、分级高、临床分期高、坏死、CK5/6相关。

2.DFS/OS较差的IGF2BP。

3.IGF2BP3促进对阿霉素和米托蒽醌的耐药性。

[62,63]
G3BP1型上调监管乳腺癌G3BP1与Akt抑制剂MK-2206的肿瘤反应相关。[82]

缩写以下为:TNBC公司三阴性乳腺癌,RFS公司无复发生存,DFS公司无病生存,操作系统总体生存率,DMFS公司无远处转移生存

M6A修饰调节乳腺癌的生物学过程

乳腺癌中的甲基转移酶/写作者

甲基转移酶样3(METTL3)和甲基转移酶类14(METTL14)形成稳定的甲基转移酶复合物,在定位识别中起关键作用[92——94]. MELLT3在细胞核中起催化剂的作用,并迅速启动甲基转移酶复合物的形成。MELLT14促进与相关RNA位点的复杂结合并识别底物。此外,METTL14诱导METTL3上的丝氨酸磷酸化。

先前的研究表明,METTL3在乳腺组织和细胞中显著高表达[14,17,22,23,26,95]. Hong Wang等人表明,沉默METTL3可通过靶向Bcl-2降低甲基化水平、抑制增殖并诱导凋亡[23]. 乙型肝炎X相互作用蛋白(HBXIP)通过抑制肿瘤抑制因子let-7 g上调METTL3的表达,进而加速乳腺癌细胞的增殖[22]. 同样,沉默METTL3抑制细胞生长和增殖并加速细胞凋亡[22]. LINC00942(LNC942)是一种癌基因,通过靶向CXCR4和CYP1B1促进METTL14表达并诱导细胞增殖和生长[28]. 此外,METTL14影响hsa-miR-146a-5p的表达,促进迁移和侵袭,但对细胞增殖几乎没有影响[29].

与之前的研究相反,Wu等人揭示了METTL3和METTL14在乳腺组织中的表达低于正常组织[26]. 然而,有趣的是,METTL3和METTL14在正常和管腔型乳腺癌中的表达仍然较高。此外,METTL14的过度表达和/或ALKBH5的敲除显著抑制了细胞迁移能力[26]. 最近一项关于三阴性乳腺癌(TNBC)的研究也发现,METTL3在乳腺癌细胞中的表达较低。METTL3通过下调COL3A1的表达抑制TNBC细胞的转移[24]. Nate J.Fry等人证明,肿瘤细胞的增殖和迁移是通过上调METTL3和METTL14的表达或下调ALKBH5的表达来刺激的[30]. 另一项研究表明,METTL14和METTL16在MDA-MB-231、MDA-MB-468和MCF-7细胞系中的表达没有显著增强[31].

Wilms tumor 1-association protein(WTAP)通过与CCNA2的3′UTR结合调节G2/M细胞周期转换,并通过与METTL3/METTL14结合促进细胞生长和迁移[26]. 角质形成细胞生长因子增强WTAP的表达,从而增加乳腺细胞的增殖[27]. 然而,另一项研究表明,与配对正常组织相比,20个乳腺癌组织样本中WTAP的表达没有显著差异[26].

KIAA1429,也称为VIRMA,主要在大多数人类乳腺癌细胞系的细胞质中表达,并作为RNA结合蛋白调节m6A甲基化修饰。研究表明,KIAA1429在乳腺癌组织中高表达,在癌周组织中低水平表达[31,32]. 在MCF-7、MDAMB-231和SUM1315细胞系中,KIAA1429通过调节CDK1的表达促进细胞增殖、集落形成、迁移、侵袭和转移[32]. KIAA1429过表达预测乳腺癌患者总体生存率低[31]. 另一项研究表明,KIAA1429在HER2阳性乳腺癌中表达水平较低[26].

RBM15/RBM15B,RNA结合基序蛋白15/15B,通过结合尿嘧啶富集区促进RNA甲基化[25]. RBM15作为雌激素反应基因,调节MCF7和T47D细胞系的细胞生长[25]. 进一步研究发现,BARX2和雌激素受体a(ESR1)通过影响RBM15的表达,协同调节细胞生长和细胞侵袭[25]. 众所周知,RBM15影响疾病,如何调节RBM15是一个重要问题;到目前为止,对这个问题一无所知。RBM15B位于3p21肿瘤抑制区附近,在黑人和白人女性浸润性乳腺癌患者中与BRCA1-associated protein-1表达高度正相关[96].

Eun-Yeung Gong等人表明,CBLL1,也称为HAIKI或RNF188,主要在大多数人类乳腺癌细胞系的细胞质中表达[33]. CBLL1作为一种E3泛素蛋白连接酶,与ERa辅活化因子竞争,在乳腺癌的发展和进展中起到负面作用[34]. 2009年发表的一项纳入22个样本的研究发现,CBLL1的表达与浸润性导管癌和正常邻近组织无关[35]. 然而,这些乳腺癌中CBLL1 mRNA的表达高于邻近组织(样本中83.3%ER阳性)。

乳腺癌中的脱甲基酶/橡皮擦

FTO是AlkB家族的成员,是第一个确定的m6A脱甲基酶/橡皮擦,定位于染色体16q12.2,在大多数乳腺癌中高度表达[36——38,88,89]. 对于MDA-MB-231、MCF-7和4 T1乳腺细胞系,上调的FTO通过靶向BNIP3促进肿瘤增殖和转移或减少细胞凋亡。此外,文章强调,沉默FTO可以抑制体内乳腺肿瘤的生长[88]. 在HER2阳性乳腺癌中,FTO还通过FTO/miR-181b-3p/ARL5B信号通路在体外增强细胞侵袭和迁移[89]. 最近,一项研究还表明,FTO的表达可能在乳腺癌的发展和侵袭性中发挥重要作用,尤其是HER2过度表达的乳腺癌[37]. 一位研究人员表明,在HER2阳性的乳腺癌中,FTO的表达较低[26].

ALKBH5是AlkB家族的另一成员,在大多数乳腺癌中高度表达[26]. ALKBH5可能在细胞质和细胞质中起m6A读取器的作用,并促进其靶mRNA的翻译[14,95]. 最近,有报道称ALKBH5在乳腺癌发病机制中发挥肿瘤促进剂的作用[39,95]. ALKBH5在致瘤性和肺转移中起着关键作用。此外,在厌氧条件下,HIF1α和HIF2α显著增加ALKBH5 mRNA的表达[40,97]. 此外,敲低ALKBH5表达显著抑制肿瘤形成并减少乳腺肿瘤中的乳腺癌干细胞数量[40]. 此外,ALKBH5作为一种致癌基因,调节乳腺癌肿瘤干细胞的自我更新和增殖。

乳腺癌读者

YTH家族

先前的研究发现,YTH家族成员在癌症中的RNA稳定性、RNA剪接、RNA翻译和RNA加工中起着关键作用[17,31,74,77,88,98,99]. YTH家族主要包括以下成员:YTHDF1、YTHDF2、YTHDF3、YTHDC1和YTHDC2。YTHDF2是第一个与m6A修饰相关并介导mRNA加工的读取器[74,77]. 在细胞液中,YTHDF2通过与CCR4-NOT的相互作用调节mRNA的稳定性和降解。

YTHDF1和YTHDF3可以促进HeLa细胞中RNA的翻译。在细胞核中,YTHDC1通过募集某些结合位点来调节mRNA剪接、mRNA输出、RNA降解和部分RNA转录物[17,31,74,77,88,99]. 在乳腺细胞系中,YTHDF1和YTHDF2主要位于细胞质中,而YTHDC1主要位于细胞核中[31]. 此外,YTHDF1、YTHDF2和YTHDF3在乳腺癌中高表达,并促进细胞增殖、迁移和侵袭[31,75,98]. 值得注意的是,脑转移瘤中YTHDF3的表达高于亲代细胞[75]. 此外,敲除YTHDF3可显著降低小鼠模型的脑转移。脑转移乳腺癌中YTHDF3拷贝数增加高于原发性乳腺癌。有趣的是,在另一项研究中,miR-106b-5p基因转染下调了YTHDF3的表达,从而增强了雌激素诱导的乳腺癌的细胞增殖、迁移和侵袭[99]. 此外,在转染模拟物的细胞中,研究人员发现miR-106b-5p通过抑制翻译或诱导mRNA降解来调节YTHDF3的表达。

HNRNP家族

HNRNP家族成员,包括HNRNPC、HNRNPG和HNRNPA2B1,也调节RNA稳定性、RNA剪接、RNA翻译和RNA加工。HNRNPC是一种剪接因子,在乳腺癌中高度表达,并促进肿瘤细胞增殖和生长[68,76]. 此外,HNRNPC参与异常剪接并参与肿瘤转录组的形成[69]. 在MCF7和T47D,而不是MCF10A、BT549和MDA-MB-231细胞中,即使部分抑制HNRNPC功能也会导致I型干扰素应答、内源性dsRNA增加,以及通过激活ISGF3复合物上调ISG表达。HNRNPC的敲除抑制这些乳腺癌细胞的细胞增殖和肿瘤生长[68]. 另一项研究发现,HNRNPC在LvBr2中的表达明显高于MDA-MB-435细胞[68,70]. 在LvBr2细胞中,miR-146a通过下调HNRNPC抑制Akt的激活,从而抑制肿瘤的迁移和侵袭。

乳腺癌的另一剪接因子HNRNPA2B1在人类乳腺癌组织和细胞系中也显著上调[71]. 新的证据表明,HNRNPC在癌症的发展、进展、基因表达和信号转导中发挥着重要作用。敲除HNRNPA2B1抑制MCF-7和MDA-MB-231细胞系中的细胞增殖和细胞生长。此外,在HNRNPA2B1敲除的MCF-7/H1和231/H2细胞中,磷酸化STAT3和磷酸化ERK1/2表达水平显著降低。也就是说,HNRNPA2B1调节乳腺癌中STAT3和ERK1/2信号通路。值得注意的是,HNRNPA2B1在LCC9他莫昔芬耐药细胞中的表达高于亲代他莫昔酚敏感MCF-7细胞[72]. 相反,侵袭性乳腺癌中HNRNPA2B1的表达显著降低(GSE59246型)和MDAMB-231和MCF-7细胞[73]. HNRNPA2B1抑制异种移植瘤的生长,但促进自发肺转移。HNRNPA2B1敲除促进F-actin细胞骨架的形成,激活Wnt通路的下游基因,激活ERK/MAPK/Twist通路,上调PFN2表达,并抑制上皮-间质转化和转移(EMT)促进基因和信号通路[73]. HNRNPG作为ERa外显子7剪接的特异性调节因子,调节子宫内膜癌中雌激素受体α的表达[100]. 然而,对乳腺癌中HNRNPG的分子特征知之甚少。基于这些发现,HNRNPG可能在雌激素受体表达的乳腺癌中发挥潜在作用。

FXR家族

FXR家族的三个成员FMR1、FXR1和FXR2通过形成多蛋白复合物参与脆性X智力低下综合征[41,90]. 先前的研究发现,所有FXR家族蛋白都包含两个KH结构域和一个RCG盒,并与多核糖体相关,主要与60S大核糖体亚基相关[90].

FMR1在其5′非翻译区含有CGG三核苷酸重复元件,在人类乳腺癌和远处转移中高度表达,并影响4个T1细胞系的细胞间粘附、细胞形状和侵袭[41,42]. FMR1还介导E-cadherin和Vimentin的表达。同时,CHIP通过非四肽重复域与FMR1相互作用并上调FMR1的表达[43].

FXR1作为一种RNA结合蛋白,在乳腺癌的进展和细胞侵袭中起着重要作用[44,45]. 在TNBC中,FXR1作为一种新的预后生物标志物,刺激肺转移FXR1与TNBC新辅助化疗的更好pCR相关[44]. 这些treRNA功能需要FXR1、FXR2和hnRNPK,而它们的表达促进体外肿瘤侵袭和体内转移[46]. FXR1或FXR2在MCF7细胞中不介导细胞增殖。此外,hnRNPK或FXR1的敲除而不是FXR2的敲除增加了MCF7细胞小鼠模型的肿瘤生长,而RNA结合蛋白的双重敲除或三重敲除显著降低了原发性肿瘤生长。也就是说,FXR1介导的肿瘤生长不是细胞增殖。简而言之,hnRNPK和FXR2的联合作用会影响体内肿瘤转移,但其治疗机制尚需评估。

IGF2BP家族(KH结构域蛋白)

胰岛素样生长因子2 mRNA结合蛋白(IGF2BP)将靶转录物招募到细胞质蛋白-RNA复合物[47,53,54,58——60,101——103]. IGF2BP家族成员IGF2BP1、IGF2BP2和IGF2BP3调节RNA剪接、翻译、加工和稳定性,从而影响乳腺癌的细胞增殖、分化、侵袭和转移。IGF2BPs作为FGF13-AS1的盲蛋白,阻止靶向Myc mRNA降解以调节乳腺癌细胞的增殖、侵袭和转移[102].

IGF2BP1作为一种结合蛋白,通过抑制eIF5A的积累来调节细胞凋亡[104]. 以前的研究发现IGF2BP1在乳腺癌中高度表达[47——50]. IGF2BP1通过β-catenin/TCF4反应元件促进β-catelin mRNA的稳定性,进而加速乳腺肿瘤的细胞粘附和转录[47]. 小鼠异种移植模型研究表明,IGF2BP1通过与GDF15 mRNA的3′UTR结合,抑制乳腺癌细胞增殖、肿瘤生长和肿瘤转移[49,50]而其他研究表明IGF2BP1不会影响肿瘤的生长或大小[51]. 在T47D和MDA231细胞中,IGF2BP1在抑制细胞迁移和转移中起着关键作用,部分通过调节E-cadherin mRNA的表达[50]. 在T47D细胞中,IGF2BP1沉默导致UCA1水平增加,随后miR-122-5p靶mRNA表达增加,最终促使乳腺癌细胞侵袭[52].

IGF2BP2是一种致癌蛋白,位于染色体3q27上,在乳腺癌细胞和组织中高度过度表达[53,55,56]. 先前的研究表明,IGF2BP2的敲除显著降低转移性内皮细胞密度和功能性血管含量,从而抑制乳腺癌细胞的肺转移。IGF2BP2过表达通过体外靶向CTGF mRNA增加细胞迁移和减少细胞粘附,刺激细胞增殖并影响生长和分化[56]. 此外,在MDA-MB-231和MCF-7细胞中,miR-1193通过抑制IGF2BP2翻译和减少人类乳腺癌细胞的增殖和侵袭来抑制ERK和PI3K/Akt信号通路的表达和激活[54]. CCN6直接降低IGF2BP2和HMGA2的表达,进一步降低MDA-MB-231细胞的肿瘤生长[53].

新的证据表明IGF2BP3在乳腺癌中高度表达[25,57——67]. 有趣的是,IGF2BP3在间充质细胞中的表达高于上皮细胞[105]. Hye-Youn-Kim等人阐明,IGF2BP2和IGF2BP3通过负向靶向microRNA-200a和部分确定特征表型,协同刺激细胞迁移、侵袭和侵袭[61]. 在乳腺癌细胞中,IGF2BP3与E-cadherin、vimentin和Slug直接相关(P(P) < 0.05),并通过刺激EMT进一步促进入侵和迁移83通过激活Hedgehog信号通路CD44/CD44减少细胞凋亡+Fbs/IGF2[59,106]. 此外,IGF2BP3通过EGFR信号传导和ERβ、SLUG mRNA和miRNA-34a的阻遏调节细胞迁移、侵袭和干细胞特性[105]. IGF2BP3通过抑制miRNA-3614成熟来增加TRIM25的表达,从而促进细胞生长和增殖[58]. IGF2BP3作为CERS6-AS1的RNA-结合蛋白,促进CERS6 mRNA的稳定,进而促进细胞增殖并抑制细胞凋亡[60].

带有C终端读取器的eIF系列

EIF3A是人类乳腺癌的癌基因,Bachmann等人首次将其描述为eIF家族中最大的亚单位[78]. 据报道,eIF3A在乳腺癌中显著高表达[79——81]. Dong等人发现,eIF3A调节M2蛋白的合成,并且降低MCF7细胞中eIF3A的表达可显著逆转其恶性生长表型[107]. TG2型/TIS21型通过抑制4EBP1磷酸化来消耗eIF的可用性,从而抑制翻译起始[80]. 此外,eIF3A中的rs10787899和rs3824830单核苷酸多态性与乳腺癌风险增加有关(所有P(P) < 0.01) [81]. EIF3A,也被描述为雌激素反应基因,可以靶向ER介导的信号,促进ERα阳性乳腺癌细胞的细胞增殖和/或迁移[79]. 需要更多的实验来确定eIF3A表达下调是否可以改变乳腺细胞的恶性表型。

在MCF7细胞中,抑制eIF4G1促进eIF4G2的表达,而抑制eIF4 G2部分增加电离辐射介导的DNA损伤的敏感性[108]. Columba等人发现eIF4G1与DAP5的相互作用很弱[109]. 此外,ERα−乳腺癌患者的eIF4G2表达高于ERα+患者。此外,eIF4G2在增殖细胞中大量表达,eIF4 G2水平的下调降低了整体蛋白翻译速率并抑制细胞增殖[110].

其他乳腺癌读者

G3BP1在乳腺癌中显著过度表达[82——86]. G3BP1通过抑制乳腺细胞中PMP22 mRNA的表达促进细胞增殖,通过抑制E-cadherin的表达和增加TGF-β信号传导基因、Smad靶基因、波形蛋白、蜗牛、Slug、纤维连接蛋白和ZEB1的表达促进肿瘤转移和侵袭[83,84,111]. 此外,G3BP1的过度表达在MCF-7细胞中诱导EMT,从而增加细胞迁移和侵袭[86]. 此外,与上调的G3BP1相比,下调的G3BP 1限制MDA-MB-231细胞的侵袭和迁移,促进MCF-7细胞的肿瘤侵袭和迁移[83,84]. 此外,G3BP1通过抑制核p53水平抑制细胞凋亡[112]. 更有趣的是,G3BP1也参与囊泡贩运[113].

m6A修饰与临床特征的关系

乳腺癌作家

Hong Wang等人的最新研究发现,METTL3的高表达与乳腺癌的不良预后相关(P(P) = 0.002) [23]. METTL3、METTL14、WTAP和FTO过度表达的患者具有更好的无复发转移生存率[26]. METTL3过度表达与更好的无远处转移生存相关(P(P) = 0.023)和扩展操作系统(P(P) = 0.042) [24]. 此外,METTL14与T分期相关,无分子分型、微血管浸润、神经浸润和转移[26]. KIAA1429和CDK1过度表达患者的5年总生存率显著低于KIAA1428、CDK1或两者低表达患者(P(P) = 0.021) [32].

一项研究还发现,无论种族如何,存活患者的RBM15B表达水平高于未存活患者[96]. 也就是说,RBM15B可能抑制这些乳腺患者的肿瘤生长[96]. 从TCGA下载日期来看,ZC3H13与TNBC的操作系统无关(n个 = 115中,P(P) = 0.9623) [87].

乳腺癌用橡皮擦

FTO上调与晚期乳腺癌患者的总体生存期缩短显著相关[88]. 此外,FTO过表达与肿瘤大小、核分级、瘤周淋巴血管浸润、淋巴结转移和TNM分期有关。FTO过度表达意味着HER2阳性乳腺癌的DFS/OS/RFS较差[89]. 在乳腺癌中,HER2过表达亚型中FTO阳性表达的百分比(97.1%)显著高于三阴性亚型(76.2%)和管腔亚型(52.2%)(P(P) < 0.001) [37]. 此外,FTO的表达与HER2状态和ER/PR状态呈正相关。然而,FTO与乳腺癌的年龄、肿瘤大小、淋巴结状态、TNM分期、组织学分级、Ki67或BMI无关[37]. 此外,ALKBH5的表达与转移无复发生存率无关[26].

乳腺癌读者

YTHDF1和YTHDF3的过度表达与乳腺癌患者的总体生存率低相关(所有P(P)值<0.05)[31,98]. YTHDF3过度表达与较低的无复发生存率相关[31]. 在BCIP乳腺癌数据库中,HNRNPA2B1高表达的患者(n个 = 30)与HNRNPA2B1低表达患者相比,生存时间更长(n个 = 288) [73]. 相反,HNRNPA2B1高表达的乳腺癌患者生存率较差[72].

FMR1与HER2状态、ER状态、较高肿瘤分级(G3)和较高Ki67表达相关。FMR1过度表达与乳腺癌进展的概率增加相关,尤其是与肺转移相关[41]. FXR1过度表达与METABRIC乳腺癌队列中疾病特异性无病生存率较差和TCGA队列中总体生存率较差相关[45]. TNBC患者FXR1过度表达与较差的无远处转移生存率相关(n个 = 16,P(P) = 0.01,HR=9.63,95%CI=1.7-43.96),但在TNBC患者中没有[44].

小鼠异种移植模型研究表明IGF2BP1抑制乳腺癌肺转移瘤[49,50]而其他研究表明IGF2BP1不会影响肿瘤的生长或大小[51]. 在早期乳腺癌患者中,IGF2BP2的过度表达也与生存期短有关,因此IGF2BP1可能是乳腺癌筛查和诊断的有用血清生物标记物[55,91]. 在96例乳腺癌患者的一个队列中,与I期和II期患者相比,III期和IV期患者的IGF2BP2表达显著增加。在TNBC中,IGF2BP3与更大的肿瘤大小、更高级别、更高临床分期、坏死和CK5/6表达相关[63]. 在化生乳腺癌和TNBC中,IGF2BP3与患者DFS和OS降低相关[62,63]. 根据以前的发现,eIF3A可以作为浸润性导管癌的肿瘤标志物,但其表达与乳腺癌患者的年龄、肿瘤大小、分化程度、淋巴结状态或DNA指数无关[78].

m6A在lncRNA调控和乳腺癌干细胞中的作用

新的证据表明,长非编码RNA(lncRNAs)和癌症干细胞通过与m6A相互作用在人类乳腺癌(BC)中发挥关键作用。先前的研究表明,lncRNA KB-1980E6.3通过靶向c-Myc招募IGF2BP1来维持乳腺癌干细胞干细胞的分泌[114]. 在乳腺癌中,METTL3诱导的LINC00958上调通过miR-378a-3p/YY1轴影响肿瘤发生[115]. 此外,ALKBH5过表达降低了乳腺癌干细胞的百分比[40]. 在MDA-MB-231细胞中,ALKBH5的敲除显著减少了乳腺癌干细胞的数量[40].

m6A修饰对治疗耐药性的影响

此外,5′-氟尿嘧啶(5-FU),而不是阿霉素、紫杉醇和环磷酰胺,可降低乳腺癌细胞中KIAA1429的表达[32]. YTHDF1与分子亚型和淋巴结转移呈正相关[98]. 在MCF-7细胞中,HNRNPA2B1过度表达降低了对4-羟基三苯氧胺和富尔维斯特的敏感性[72]. IGF2BP2可能是MEK1/2的通路和特异性活性[101]. 在TNBC细胞中,IGF2BP3通过调节乳腺癌耐药蛋白(ABCG2)促进对阿霉素和米托蒽醌的耐药性[64]. 此外,之前的一项研究确定G3BP1与Akt抑制剂MK-2206的肿瘤反应有关[82].

讨论和未来展望

本文介绍了m6A在乳腺癌中的作用、机制和临床应用。RNA m6A修饰通过三种效应物:写入器、擦除器和读取器,在促进或抑制肿瘤生长、增殖、迁移、侵袭、特异性转移、耐药性和乳腺癌预后方面发挥着重要作用。

对于乳腺癌,不同的研究人员对m6A相关蛋白的表达水平给出了不一致的结果,包括MELLT3、MELLT14、KIAA1429和HNRNPA2B1。乳腺癌中MELLT3和MELLT14上调[23]并在TNBC中下调[24]. KIAA1429在腔A和基底部乳腺癌中上调,在Her2+乳腺癌中下调。GEO数据库中侵袭性乳腺癌中HNRNPA2B1的表达降低(GSE59246型) [73]在LCC9乳腺癌细胞和亚洲患者中增加[71,72]. 这些差异已经被以前的研究人员探索过了,有几个原因可能解释了这些不一致的结果。首先,登记的患者有不同的分子分型。其次,这些研究包括不同种族的患者。

此外,尽管m6A修饰物对乳腺癌有生物效应,但仍有一些问题需要进一步调查和澄清。首先,m6A修饰具有作为早期诊断生物标志物的潜力。在早期乳腺癌患者中,IGF2BP2可能是筛查和诊断乳腺癌的有用血清生物标记物[55,91]. 然而,由于难以获得足够的测试样本,这种标记的应用往往受到限制。因此,有必要对m6A修饰进行大规模临床试验。其次,到目前为止,大多数关于m6A修饰的研究都倾向于关注其在乳腺癌细胞系中的作用机制。因此,需要更多的转化研究来阐明m6A单独或与其他疗法结合是否可以用于治疗乳腺癌,甚至其他实体瘤。第三,eIF3A中的SNP与乳腺癌风险增加相关[81]. 还需要进一步推测突变如何介导m6A修饰的影响。此外,m6A修饰物可以被特定药物靶向,以提高对乳腺癌的耐药性。最后,m6A与基因突变频率、基因组拷贝数变异和特定分子亚型之间的相互作用尚不清楚,需要探索。

结论

最近,随着生物信息学和翻译医学方法的快速发展,以及m6A编辑工具和RNA测序的改进,RNA m6A修饰有望发展成为诊断肿瘤的标志物和治疗乳腺癌的药物靶点。人体内有三种主要的m6A修饰效应器,即书写器、橡皮擦和读取器。因此,m6A修饰也可能成为一种新的多靶点抑制剂,对乳腺癌有效。

致谢

不适用。

缩写

6安培N6-甲基腺苷
TNBC公司三阴性乳腺癌
梅特尔3甲基转移酶样3
梅特尔14甲基转移酶样14
RFS公司无复发生存期
DFS公司无病生存
操作系统总体生存率
DMFS公司无远处转移生存

作者的贡献

郑方超、冯都、赵久大和彭源构思了这项研究并起草了手稿。王雪、司一然、彭进、钱海丽和徐炳和参与了修改。所有作者阅读并批准了最终手稿。

基金

这项工作得到了国家重点研发计划(2018YFC0115204)、中国医学科学院非营利中央研究院基金临床与转化医学研究基金(12019XK320071)、CSCO肿瘤试点研究基金(Y-2019AZMS-0377)和首都健康发展研究项目(2018-2-4023)的支持。

数据和材料的可用性

不适用。

声明

道德批准和参与同意

不适用。

出版同意书

所有作者都同意发表这篇文章。

竞争性利益

提交人声明他们没有利益冲突。

脚注

出版商笔记

Springer Nature在公布的地图和机构关联中的管辖权主张方面保持中立。

郑方超、杜锋和赵久达对这项工作做出了同样的贡献。

工具书类

1Bray F、Ferlay J、Soerjomataram I、Siegel RL、Torre LA、Jemal A.2018年全球癌症统计:GLOBOCAN对185个国家36种癌症的全球发病率和死亡率的估计。CA癌症临床杂志。2018;68(6):394–424. doi:10.3322/caac.21492。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
2Ochi T、Bianchini G、Ando M、Nozaki F、Kobayashi D、Criscitiello C、Curigliano G、Iwamoto T、Niikura N、Takei H、Yoshida A、Takeii J、Suzuki K、Yamauchi H、Hayashi N。三阴性和HER2阳性乳腺癌新辅助治疗前后基质瘤滤过淋巴细胞的预测和预后价值。《欧洲癌症杂志》。2019;118:41–48. doi:10.1016/j.ejca.2019.05.014。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
三。Tamura K、Tsurutani J、Takahashi S、Iwata H、Krop IE、Redfern C、Sagara Y、Doi T、Park H、Murthy RK、Redman RA、Jikoh T、Lee C、Sugihara M、Shahidi J、Yver A、Modi S.Trastuzumab deruxtecan(DS-8201a),用于治疗先前使用曲妥珠单抗-肌苷治疗的晚期HER2阳性乳腺癌患者:一项剂量扩展的第一阶段研究。柳叶刀Oncol。2019;20(6):816–826. doi:10.1016/s1470-2045(19)30097-x。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
4Andre F、Ciruelos E、Rubovszky G、Campone M、Loibl S、Rugo HS等。PIK3CA突变、激素受体阳性的晚期乳腺癌的适用性。N英格兰医学杂志。2019;380(20):1929–1940. doi:10.1056/NEJMoa1813904。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
5Bardia A、Mayer IA、Vahdat LT、Tolaney SM、Isakoff SJ、Diamond JR、O'Shaughnessy J、Morose RL、Santin AD、Abramson VG、Shah NC、Rugo HS、Goldenberg DM、Sweidan AM、Iannone R、Washkowitz S、Sharkey RM、Wegener WA、Kalinsky K.Sacituzumab govitacan-hziy治疗难治性转移性三阴性乳腺癌。N英格兰医学杂志。2019;380(8):741–751. doi:10.1056/NEJMoa1814213。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
6Litton JK、Rugo HS、Ettl J、Hurvitz SA、Goncalves A、Lee KH等。晚期乳腺癌患者和生殖系BRCA突变患者的Talazoparib。N英格兰医学杂志。2018;379(8):753–763. doi:10.1056/NEJMoa1802905。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
7Shahi RB、De Brakeler S、Caljon B、Pauwels I、Bonduelle M、Joris S等。通过对BRCA1和BRCA2阴性乳腺癌家族的索引患者进行全基因组测序,识别候选癌症易感变体。BMC癌症。2019;19(1):313. doi:10.1186/s12885-019-5494-7。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
8Chung W、Eum HH、Lee HO、Lee KM、Lee-HB、Kim KT、Ryu HS、Kim S、Lee JE、Park YH、Kan Z、Han W、Park WY。单细胞RNA-seq可对原发性乳腺癌进行全面的肿瘤和免疫细胞分析。国家公社。2017;8(1):15081. doi:10.1038/ncomms15081。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
9Ennour-Idrissi K,Dragic D,Durocher F,Diorio C.表观基因组DNA甲基化与乳腺癌风险:一项系统综述。BMC癌症。2020;20(1):1048. doi:10.1186/s12885-020-07543-4。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
10O'Brien NA、McDermott MSJ、Conklin D、Luo T、Ayala R、Salgar S等。在激素受体阳性乳腺癌临床前模型中,靶向激活的PI3K/mTOR信号克服了对基于CDK4/6的治疗的获得性耐药性。乳腺癌研究。2020;22(1) :89。doi:10.1186/s13058-020-01320-8。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
11Shulman Z,Stern-Ginossar N.RNA修饰N(6)-甲基腺苷作为免疫系统的新型调节器。国家免疫组织。2020;21(5):501–512. doi:10.1038/s41590-020-0650-4。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
12何磊,李浩,吴安,彭毅,舒庚,尹庚。N6-甲基腺苷的功能及其在癌症中的作用。Mol癌症。2019;18(1):176. doi:10.1186/s12943-019-1109-9。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
13Pan Y,Ma P,Liu Y,Li W,Shu Y。m(6)a RNA甲基化在癌症中的多种功能。血液肿瘤学杂志。2018;11(1):48. doi:10.1186/s13045-018-0590-8。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
14邓X,苏R,翁H,黄H,李Z,陈J.RNA N(6)-甲基腺苷修饰在癌症中的研究现状与展望。细胞研究。2018;28(5):507–517. doi:10.1038/s41422-018-0034-6。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
15Huang H,Weng H,Chen J.m(6)编码和非编码RNA的修改:在癌症中的作用和治疗意义。癌细胞。2020;37(3):270–288. doi:10.1016/j.cell.2020.02.004。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
16Boccaletto P、Machnicka MA、Purta E、Piatkowski P、Baginski B、Wirecki TK等。MODOMICS:RNA修饰途径数据库。2017年更新。核酸研究。2018;46(D1):D303–D3D7。doi:10.1093/nar/gkx1030。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
17Zhang C,Chen Y,Sun B,Wang L,Yang Y,Ma D,Lv J,Heng J,Ding Y,Xue Y,Lu X,Xiao W,Yang YG,Liu F.m(6)A调节造血干细胞和祖细胞规格。自然。2017;549(7671):273–276. doi:10.1038/nature23883。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
18Dominissini D、Moshitch-Moshkovitz S、Schwartz S、Salmon-Divon M、Ungar L、Osenberg S、Cesarkas K、Jacob-Hirsch J、Amariglio N、Kupiec M、Sorek R、Rechavi G。m6A-seq揭示的人和鼠m6A RNA甲基体拓扑结构。自然。2012;485(7397):201–206. doi:10.1038/nature11112。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
19Krol A、Branlant C、Lazar E、Gallinaro H、Jacob M。鸡、大鼠和人核U4 RNA的一级和二级结构。与U1和U5 RNA同源。核酸研究。1981;25(9):2699–2716. doi:10.1093/nar/9.12.2699。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
20Meyer KD,Saletore Y,Zumbo P,Elemento O,Mason CE,Jaffrey SR.mRNA甲基化的综合分析显示3′UTR和近终止密码子富集。单元格。2012;149(7):1635–1646. doi:10.1016/j.cell.2012.05.003。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
21沈H,兰Y,赵Y,石Y,金J,谢W。N6-甲基腺苷RNA甲基化在人类癌症中的新作用。生物标记研究。2020;8(1):24. doi:10.1186/s40364-020-00203-6。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
22Cai X,Wang X,Cao C,Gao Y,Zhang S,Yang Z,Liu Y,Zang X,ZhangW,Ye L.HBXIP-升高的甲基转移酶METTL3通过抑制肿瘤抑制因子let-7g促进乳腺癌的进展。癌症快报。2018;415:11–19. doi:10.1016/j.canlet.2017.11.018。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
23王浩,徐斌,石J.N6-甲基腺苷METTL3通过靶向Bcl-2促进乳腺癌进展。基因。2020;722:144076.doi:10.1016/j.gene.2019.144076。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
24Shi Y,Zheng C,Jin Y,Bao B,Wang D,Hou K,Feng J,Tang S,Qu X,Liu Y,Che X,Teng Y.METTL3表达减少通过m6A甲基化介导COL3A1上调促进三阴性乳腺癌转移。前肿瘤。2020;10:1126.doi:10.3389/fonc.2020.01126。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
25Stevens TA、Meech R.BARX2和雌激素受体α(ESR1)协同调节选择性剪接ESR1亚型的产生,并控制乳腺癌细胞的生长和侵袭。致癌物。2006;25(39):5426–5435。doi:10.1038/sj.onc.1209529。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
26吴磊,吴丹,宁杰,刘伟,张丹。N6-甲基腺苷调节剂的变化促进乳腺癌的进展。BMC癌症。2019;19(1):326. doi:10.1186/s12885-019-5538-z。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
27Zang X-P、Pento JT、Tari AM。Wilms的肿瘤1蛋白和黏着斑激酶介导乳腺癌细胞中的角质形成细胞生长因子信号传导。抗癌研究。2008;28:133–137.[公共医学][谷歌学者]
28Sun T,Wu Z,Wang X,Wang Y,Hu X,Qin W,Lu S,Xu D,Wu Y,Chen Q,Ding X,Guo H,Li Y,Wang Y,Fu B,Yao W,Wei M,Wu H.LNC942在乳腺癌细胞增殖和进展中促进METTL14-介导的M(6)A甲基化。致癌物。2020;39(31):5358–5372. doi:10.1038/s41388-020-1338-9。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
29Yi D,Wang R,Shi X,Xu L,Yilihamu Y,Sang J.METTL14通过调节N6甲基腺苷和hsamiR146a5p的表达促进乳腺癌细胞的迁移和侵袭。Oncol代表。2020;43(5):1375–1386. doi:10.3892/或.2020.7515。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
30NJF L、Holley BA、Law ORI、Carraway KR、Holley CL、Mansfield KD。N6-甲基腺苷有助于乳腺癌遗传定义模型中的细胞表型。Oncotarget公司。2018;9(58):31231–31243. doi:10.18632/目标25782。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
31Liu L,Liu X,Dong Z,Li J,Yu Y,Chen X,Ren F,Cui G,Sun R.N6-甲基腺苷相关的基因组靶点在乳腺癌组织中发生改变,并与低生存率相关。癌症杂志。2019;10(22):5447–5459. doi:10.7150/jca.35053。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
32钱J-Y,高J,孙X,曹M-D,石磊,夏T-S,周WB,王S,丁Q,魏JF。KIAA1429通过以N6-甲基腺苷非依赖性方式调节CDK1,在乳腺癌中发挥致癌因子的作用。致癌物。2019;38(33):6123–6141. doi:10.1038/s41388-019-0861-z。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
33Aparicio LA,Valladares M,Blanco M,Alonso G,Figueroa A.哈凯对癌症的生物影响:一项10年回顾。癌症转移评论。2012;31(1–2):375–386. doi:10.1007/s10555-012-9348-x。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
34Gong EY、Park E、Lee K.Hakai是乳腺癌细胞中雌激素受体α的协同调节因子。癌症科学。2010;101(9):2019–2025. doi:10.1111/j.1349-7006.2010.01636.x。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
35Makdissi FBA、Machado LVST、Oliveira AGC、Oliweira TT、Benvenuti MLH、Katayama MM等。浸润性导管癌原发肿瘤和瘤周组织分离的上皮细胞中E-cadherin、snail和Hakai的表达。Braz医学生物研究杂志。2009;42(12):1128–1137. doi:10.1590/S0100-879X200900120002。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
36Chen J,Du B.从肥胖到癌症的新定位:FTO,一种m(6)A RNA脱甲基酶,调节肿瘤进展。癌症研究临床肿瘤学杂志。2019;145(1) :19–29。doi:10.1007/s00432-018-2796-0。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
37谭A,当Y,陈刚,莫忠。乳腺癌中脂肪量和肥胖相关基因(FTO)的过度表达及其临床意义。国际临床实验病理学杂志。2015;8(10) :13405–10。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
38不列颠哥伦比亚省梅尔尼克。牛奶:FTO介导转录的表观遗传放大器?对西方疾病的影响。《运输医学杂志》。2015;13(1):385. doi:10.1186/s12967-015-0746-z。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
39沈C,盛Y,朱AC,罗宾逊S,蒋X,董L,陈H,苏R,尹Z,李W,邓X,陈Y,胡YC,翁H,黄H,王子E,柯勒CR,孙M,张B,陈CW,马库奇G,何C,钱Z,陈J。RNA脱甲基酶ALKBH5选择性促进急性髓系白血病的肿瘤发生和肿瘤干细胞自我更新。细胞干细胞。2020;27(1):64–80. doi:10.1016/j.stem.2020.04.009。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
40Zhang C,Samanta D,Lu H,Bullen JW,Zhang H,Chen I,He X,Semenza GL。缺氧通过HIF依赖性和ALKBH5介导的NANOG mRNA m(6)A去甲基化诱导乳腺癌干细胞表型。美国国家科学院院刊。2016;113(14) :E2047–E2056。doi:10.1073/pnas.1602883113。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
41Luca R、Averna M、Zalfa F、Vecchi M、Bianchi F、La Fata G等。脆性X蛋白结合参与癌症进展的mRNA并调节转移形成。EMBO分子医学。2013;5(10):1523–1536. doi:10.1002/emmm.201302847。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
42Adamsheck HC、Petty EM、Hong J、Baker MW、Brilliant MH、Mailick MR。男性低FMR1 CGG重复长度与BRCA相关癌症家族史相关吗?对病历的探索性分析。《基因杂志》。2017;26(6):1401–1410. doi:10.1007/s10897-017-0116-5。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
43Choi YN,Jeong DH,Lee JS,Yoo SJ。Hsc70相互作用蛋白的C末端对脆性X智力低下1蛋白的调节取决于其磷酸化状态。生物化学生物物理研究公社。2014;453(1):192–197. doi:10.1016/j.bbrc.2014.09.099。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
44Qian J,Chen H,Ji X,Eisenberg R,Chakravarthy AB,Mayer IA,Massion PP。与三阴性乳腺癌器官特异性转移和新辅助化疗反应相关的3q基因特征。科学代表。2017;7(1):45828. doi:10.1038/srep45828。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
45Qian J、Hassanein M、Hoeksema MD、Harris BK、Zou Y、Chen H、Lu P、Eisenberg R、Wang J、Espinosa A、Ji X、Harris-FT、Rahman SMJ、Massion PP。RNA结合蛋白FXR1是3q26-29扩增子的新驱动因子,预测人类癌症预后不良。美国国家科学院院刊。2015;112(11):3469–3474. doi:10.1073/pnas.1421975112。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
46Gumiredy K,Li A,Yan J,Setoyama T,Johannes GJ,Orom UA,et al.在翻译步骤中调节转移的长非编码RNA-相关RNP复合物的鉴定。EMBO J。2013;32(20):2672–2684. doi:10.1038/emboj.2013.188。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
47Gu W,Wells AL,Pan F,Singer RH。乳腺癌细胞中邮政编码结合蛋白1和β-catenin mRNA之间的反馈调节。分子细胞生物学。2008;28(16) :4963–4974。doi:10.1128/MCB.00266-08。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
48Tang L,Chen Y,Tang X,Wei D,Xu X,Yan F.Long非编码RNA DCST1-AS1通过与miR-873-5p和MYC形成正调控环,促进三阴性乳腺癌的细胞增殖和转移。癌症杂志。2020;11(2):311–323. doi:10.7150/jca.33982。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
49Wang G,Huang Z,Liu X,Huang W,Chen S,Zhou Y,Li D,Singer RH,Gu W.IMP1通过调节靶mRNA抑制乳腺癌生长和转移。Oncotarget公司。2016;7(13):15690–15702. doi:10.18632/目标7464。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
50Gu W,Katz Z,Wu B,Park HY,Li D,Lin S,Wells AL,Singer RH.通过IMP1/ZBP1调节乳腺癌细胞中细胞粘附和运动相关mRNA的局部表达。细胞科学杂志。2012;125(第1部分):81–91。doi:10.1242/jcs.086132。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
51Nwokafor-CU,Sellers RS,Singer RH.IMP1,一种mRNA结合蛋白,可降低小鼠模型中乳腺癌的转移潜能。Oncotarget公司。2016;7(45):72662–72671. doi:10.18632/目标12083。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
52Zhou Y,Meng X,Chen S,Li W,Li D,Singer R,Gu W.IMP1通过促进UCA1衰变和降低UCA1对miR-122-5p的海绵效应来调节UCA1介导的细胞侵袭。乳腺癌研究。2018;20(1):32. doi:10.1186/s13058-018-0959-1。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
53McMullen ER、Gonzalez ME、Skala SL、Tran M、Thomas D、Djomehri SI等。CCN6调节乳腺化生癌中的IGF2BP2和HMGA2信号。乳腺癌研究治疗。2018;172(3):577–586. doi:10.1007/s10549-018-4960-2。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
54Li X,Li Y,Lu H.miR-1193通过直接靶向IGF2BP2抑制人类乳腺癌细胞的增殖和侵袭。Oncol研究。2017;25(4):579–585. doi:10.3727/97818823455816X14760504645779。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
55刘伟,李毅,王斌,戴立,钱伟,张JY。乳腺癌患者对IGF2 mRNA结合蛋白2(IMP2/p62)的自身免疫反应。扫描免疫学杂志。2015;81(6):502–507. doi:10.1111/sji.12285。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
56Li Y,Francia G,Zhang J-Y.p62/IMP2在乳腺癌中刺激细胞迁移并减少细胞粘附。Oncotarget公司。2015;6(32):32656–32668。doi:10.18632/目标5328。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
57Samanta S、Sun H、Goel HL、Pursell B、Chang C、Khan A、Greiner DL、Cao S、Lim E、Shultz LD、Mercurio AM。IMP3通过调节SLUG促进三阴性乳腺癌的干样特性。致癌物。2016;35(9):1111–1121. doi:10.1038/onc.2015.164。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
58Wang Z,Tong D,Han C,Zhao Z,Wang X,Jiang T,Li Q,Liu S,Chen L,Chen Y,Li A,Huang C。IGF2BP3阻断miR-3614成熟增加TRIM25表达并促进乳腺癌细胞增殖。EBioMedicine公司。2019;41:357–369. doi:10.1016/j.ebiom.2018.12.061。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
59Liu Y,Yu C,Wu Y,Sun X,Su Q,You C,Xin H.CD44(+)成纤维细胞通过IGF2BP3-CD44-IGF2信号增加乳腺癌细胞的存活和耐药性。细胞分子医学杂志。2017;21(9):1979–1988. doi:10.1111/jcmm.13118。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
60Bao G,Huang J,Pan W,Li X,Zhou T.长非编码RNA CERS6-AS1通过与IGF2BP3结合来增强CERS6 mRNA的稳定性,从而在乳腺癌中发挥恶性启动子的作用。癌症医学。2020;9(1):278–289. doi:10.1002/cam4.2675。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
61Kim HY、Ha Thi HT、Hong S.IMP2和IMP3通过破坏孕酮受体的稳定而协同促进三阴性乳腺癌的转移。癌症快报。2018;415:30–39. doi:10.1016/j.canlet.2017.11.039。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
62Ohashi R、Sangen M、Namimatsu S、Takei H、Naito Z。IMP3导致化生性乳腺癌患者预后不良:一项临床病理学研究。《Ann Diagn Pathol》。2017;31:30–35. doi:10.1016/j.anndiagpath.2017.05.015。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
63Walter O,Prasad M,Lu S,Quinlan RM,Edmiston KL,Khan A.IMP3是与更具侵袭性表型相关的三阴性浸润性乳腺癌的新生物标记物。Hum Pathol(Hum病态)。2009;40(11):1528–1533. doi:10.1016/j.humpath.2009.05.005。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
64Samanta S、Pursell B、Mercurio AM。IMP3蛋白通过调节乳腺癌耐药蛋白(ABCG2)的表达促进乳腺癌细胞的化疗耐药。生物化学杂志。2013;288(18):12569–12573. doi:10.1074/jbc。C112.442319。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
65Ohashi R、Sangen M、Namimatsu S、Yanagihara K、Yamashita K、Sakatani T、Takei H、Naito Z。IMP3表达作为三阴性乳腺癌化疗敏感性决定因素的预后价值。病理学研究实践。2017;213(9):1160–1165. doi:10.1016/j.prp.2017.07.002。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
66Sjekloca N、Tomic S、Mrklic I、Vukmirovic F、Vuckovic L、Lovasic IB等。IMP3免疫组织化学表达在三阴性乳腺癌中的预后价值。医学(巴尔的摩)2020;99(7) :e19091。doi:10.1097/MD.000000000019091。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
67Samanta S、Sharma VM、Khan A、Mercurio AM。EGFR信号对IMP3的调节和ERbeta的抑制:对三阴性乳腺癌的影响。致癌物。2012;31(44):4689–4697. doi:10.1038/onc.2011.620。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
68张杰、林毅、孙晓杰、王碧、王志浩、罗建夫、王丽萍、张S、曹J、陶志浩,吴杰、邵志明、杨维特、胡旭旭。CBCSG006试验的生物标记物评估:顺铂联合吉西他滨与紫杉醇联合吉西他滨作为一线治疗转移性三阴性乳腺癌患者的随机III期试验。安·昂科尔(Ann Oncol)。2018;29(8) :1741–1747。doi:10.1093/annonc/mdy209/5037891。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
69Wen J,Toomer KH,Chen Z,Cai X.人类乳腺癌替代转录物的全基因组分析。乳腺癌研究治疗。2015;151(2):295–307. doi:10.1007/s10549-015-3395-2。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
70Hwang SJ、Seol HJ、Park YM、Kim KH、Gorospe M、Nam DH、Kim HH。MicroRNA-146a抑制脑转移中的转移活性。分子细胞。2012;34(3):329–334. doi:10.1007/s10059-012-0171-6。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
71Hu Y,Sun Z,Deng J,Hu B,Yan W,Wei H,Jiang J.剪接因子hnRNPA2B1通过STAT3和ERK1/2信号通路促进乳腺癌细胞的致瘤潜能。肿瘤生物学。2017;39(3):1010428317694318. doi:10.1177/1010428317694318。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
72Klinge CM,Piell KM,Tooley CS,Rouchka EC。HNRNPA2/B1在内分泌物耐药的LCC9乳腺癌细胞中上调,并在MCF-7细胞中过度表达时改变miRNA转录组。科学代表。2019;9(1):9430. doi:10.1038/s41598-019-45636-8。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
73Liu Y,Li H,Liu F,Gao LB,Han R,Chen C,Ding X,Li S,Lu K,Yang L,Tian HM,Chen BB,Li X,Xu DH,Deng XL,Shi SL。异质核核糖核蛋白A2/B1通过维持多基因和通路的平衡,是人类乳腺癌转移的负调控因子。EBioMedicine公司。2020;51:102583.doi:10.1016/j.ebiom.2019.11.044。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
74Wang X,Zhao BS,Roundtree IA,Lu Z,Han D,Ma H,Weng X,Chen K,Shi H,He C.N(6)-甲基腺苷调节信使RNA翻译效率。单元格。2015;161(6):1388–1399. doi:10.1016/j.cell.2015.05.014。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
75Chang G,Shi L,Ye Y,Shi H,Zeng L,Tiwarve S,Huse JT,Huo L,Ma L,May Y,Zhang S,Zhu J,Xie V,Li P,Han L,He C,Huang S.YTHDF3诱导富含m(6)A的基因转录物的翻译促进乳腺癌脑转移。癌细胞。2020;38(6) :857–871.e7。doi:10.1016/j.cell.2020.10.004。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
76Sarbanes SL,Le Pen J,Rice CM。朋友和敌人,HNRNPC在乳腺癌细胞中承担免疫刺激RNA。2018年EMBO期刊;37(23). 10.15252/embj.2018100923。[PMC免费文章][公共医学]
77Xu C,Liu K,Ahmed H,Loppnau P,Schapira M,Min J.人类YT521-B同源结构域蛋白质家族对N6-甲基腺苷RNA进行识别的结构基础。生物化学杂志。2015;290(41):24902–24913. doi:10.1074/jbc。M115.680389。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
78Bachmann F,Bänziger R,Burger MM。一种在人类乳腺癌中过度表达的新蛋白的克隆。癌症研究。1997;57:988–994.[公共医学][谷歌学者]
79Yamaga R、Ikeda K、Horie-Inoue K、Ouchi Y、Suzuki Y、Inoue S。MCF-7乳腺癌细胞的RNA测序确定了新的雌激素反应基因,其转录起始位点附近具有功能性雌激素受体结合位点。霍姆癌症。2013;4(4):222–232. doi:10.1007/s12672-013-0140-3。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
80Devanand P、Sundaramorthy S、Ryu MS、Jayabalan AK、Ohn T、Lim IK。三阴性乳腺癌细胞中抗增殖基因B细胞易位基因2对Twist1表达的翻译下调。细胞死亡疾病。2019;10(6):410. doi:10.1038/s41419-019-1640-z。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
81Olson JE、Wang X、Goode EL、Pankratz VS、Fredericksen ZS、Vierkant RA、Pharoah PDP、Cerhan JR、Couch FJ。正常有丝分裂所需基因的变异和乳腺癌风险。乳腺癌研究治疗。2010;119(2):423–430. doi:10.1007/s10549-009-0386-1。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
82Chien AJ、Cockerill A、Fancourt C、Schmidt E、Moasser MM、Rugo HS、Melisko ME、Ko AH、Kelley RK、Korn WM、Esserman LJ、van t Veer L、Yau C、Wolf DM、Munster PN。Akt抑制剂MK-2206联合每周紫杉醇和曲妥珠单抗治疗晚期HER2扩增实体肿瘤恶性肿瘤患者的1b期研究。乳腺癌研究治疗。2016;155(3) :521–530。doi:10.1007/s10549-016-3701-7。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
83张驰、王建新、蔡美林、邵锐、刘浩、赵武林。G3BP1在肿瘤促进中的作用和机制。J药物靶点。2019;27(3):300–305. doi:10.1080/1061186X.2018.1523415。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
84Tong D、Heinze G、Pils D、Wolf A、Singer CF、Concin N、Hofstetter G、Schiebel I、Rudas M、Zeillinger R。PMP22的基因表达是乳腺癌患者无病生存和总体生存的独立预后因素。BMC癌症。2010;10(1):682. doi:10.1186/1471-2407-10-682。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
85Barnes CJ、Li F、Mandal M、Yang Z、Sahin AA、Kumar R.Heregulin诱导人类乳腺肿瘤中ras信号成分G3BP的表达、ATP酶活性和核定位。癌症研究。2002;62:1251–1255。[公共医学][谷歌学者]
86Wu Y,Zhu J,Huang X,Du Z.人Caprin-1二聚结构域的晶体结构:对由Caprin-1、FMRP和G3BP1组成的进化保守核糖核蛋白复合物组装的见解。晶体学报D结构生物学。2016;72(第6部分):718–727。doi:10.1107/S2059798316004903。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
87Funakoshi Y,Wang Y,Semba T,Masuda H,Hout D,Ueno NT,Wang X.非间充质干样亚型三阴性炎症性和非炎症性乳腺癌分子谱的比较。公共科学图书馆一号。2019;14(9) :e0222336。doi:10.1371/journal.pone.0222336。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
88牛Y,林Z,万A,陈H,梁H,孙L,王Y,李X,熊XF,魏B,吴X,万G。RNA N6-甲基腺苷脱甲基酶FTO通过抑制BNIP3促进乳腺癌进展。Mol癌症。2019;18(1):46. doi:10.1186/s12943-019-1004-4。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
89Xu Y,Ye S,Zhang N,Zheng S,Liu H,Zhou K,Wang L,Cao Y,Sun P,Wang T。FTO/miR-181b-3p/ARL5B信号通路调节乳腺癌细胞迁移和侵袭。癌症社区(伦敦)2020;40(10):484–500. doi:10.1002/cac2.12075。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
90Zhang Y、O'Connor JP、Siomi MC、Srinivasan S、Dutra A、Nussbaum RL等。脆性X智力低下综合征蛋白与新同源物FXR1和FXR2相互作用。EMBO J。1995;14(21):5358–5366. doi:10.1002/j.1460-2075.1995.tb00220.x。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
91Barghash A,Helms V,Kessler SM。IGF2 mRNA-binding protein 2(IMP2/p62)的过度表达是基底样乳腺癌的一个特征,与短生存期相关。扫描免疫学杂志。2015;82(2):142–143. doi:10.1111/ji.12307。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
92Xiang Y、Laurent B、Hsu CH、Nachtergaele S、Lu Z、Sheng W、Xu C、Chen H、Ouyang J、Wang S、Ling D、Hsu-PH、Zou L、Jambhekar A、He C、Shi Y.RNA m(6)A甲基化调节紫外线诱导的DNA损伤反应。自然。2017;543(7646):573–576. doi:10.1038/nature21671。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
93Wang P,Doxtader Katelyn A,Nam Y.Mettl3和Mettl14甲基转移酶协同作用的结构基础。分子细胞。2016;63(2):306–317. doi:10.1016/j.molcel.2016.05.041。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
94Ś领导źP,Jinek M.对m6A写作者复合物分子机制的结构见解。电子生活。2016;5.10.7554/寿命18434。[PMC免费文章][公共医学]
95邓X,苏瑞,冯X,魏M,陈J.N(6)-甲基腺苷修饰在癌症中的作用。当前操作基因开发。2018;48:1–7.数字对象标识代码:10.1016/j.gde.2017.10.005。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
96Shahriyari L、Abdel-Rahman M、Cebulla C.BAP1的表达对乳腺和葡萄膜黑色素瘤有预后作用,但对结肠癌无预后作用,并且与RBM15B和USP19高度正相关。公共科学图书馆一号。2019;14(2) :e0211507。doi:10.1371/journal.pone.0211507。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
97Zhang C,Zhi WI,Lu H,Samanta D,Chen I,Gabrielson E,等。低氧诱导因子通过ZNF217-和ALKBH5-介导的RNA甲基化调节调节乳腺癌细胞中的多能效因子表达。Oncotarget公司。2016;7(40):64527–64542. doi:10.18632/目标11743。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
98Anita R、Paramasivam A、Priyadharsini JV、Chitra S。m6A读取器YTHDF1和YTHDF3畸变与乳腺癌转移相关,并预测乳腺癌患者预后不良。美国癌症研究杂志。2020;10(8):2546–2554. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
99刘明,周S,王杰,张Q,杨S,冯J,徐B,钟S。乳腺癌患者生存相关基因的鉴定。乳腺癌。2019;26(3):317–325. doi:10.1007/s12282-018-0926-9。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
100Hirschfeld M、Ouyang YQ、Jaeger M、Erbes T、Orlowska-Volk M、Zur Hausen A等。HNRNP G和HTRA2-BETA1调节雌激素受体α表达,对子宫内膜癌有潜在影响。BMC癌症。2015;15(1):86. doi:10.1186/s12885-015-1088-1。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
101Liu G,Zhu T,Cui Y,Liu J,Liu J.,Zhao Q,Zhang K,Zhau R.中国汉族女性IGF2BP2基因多态性与乳腺癌风险的相关性。生物药物治疗。2015;69:297–300. doi:10.1016/j.biopha.2014.12.017。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
102Ma F,Liu X,Zhou S,Li W,Liu C,Chadwick M,Qian C.Long非编码RNA FGF13-AS1通过FGF13-ASP1/IGF2BPs/Myc反馈回路抑制乳腺癌细胞的糖酵解和干细胞特性。癌症快报。2019;450:63–75. doi:10.1016/j.canlet.2019.02.008。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
103Fakhraldeen SA、Clark RJ、Roopra A、Chin EN、Huang W、Castorino J、Wisinski KB、Kim TW、Spiegelman VS、Alexander CM。RNA结合蛋白的两种亚型,即编码区决定因子结合蛋白(CRD-BP/IGF2BP1),在乳腺上皮中表达,支持乳腺癌细胞的克隆生长。生物化学杂志。2015;290(21):13386–13400。doi:10.1074/jbc。M115.655175。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
104Miyake T、Pradeep S、Wu SY、Rupaimoole R、Zand B、Wen Y、Gharpure KM、Nagaraja AS、Hu W、Cho MS、Dalton HJ、Previs RA、Taylor ML、Hisamatsu T、Kang Y、Liu T、Shacham S、McCauley D、Hawke DH、Wiktorowicz JE、Coleman RL、Sood AK。XPO1/CRM1抑制通过eIF5A的线粒体积累引起抗肿瘤作用。临床癌症研究。2015;21(14):3286–3297. doi:10.1158/1078-0432.CCR-14-1953。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
105黄Q-D,郑S-R,蔡Y-J,陈DL,沈Y-Y,林C-Q,等。IMP3通过miRNA-34a调节促进TNBC干细胞特性。欧洲药理学评论。2019;22:2688–2696。[公共医学][谷歌学者]
106Su P,Hu J,Zhang H,Li W,Jia M,ZhangX,Wu X,Cheng H,Xiang L,Zhou G。IMP3的表达与乳腺癌上皮间质转化相关。国际临床实验病理学杂志。2014;7(6) :3008–3017。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
107Dong Z、Liu LH、Han B、Pincheira R、Zhang JT。eIF3 p170在控制核糖核苷酸还原酶M2合成和细胞生长中的作用。致癌物。2004年;23(21):3790–3801. doi:10.1038/sj.onc.1207465。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
108Badura M、Braunstein S、Zavadil J、Schneider RJ。乳腺癌细胞DNA损伤和eIF4G1重组翻译生存和DNA修复mRNA。美国国家科学院院刊。2012;109(46):18767–18772. doi:10.1073/pnas.1203853109。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
109de la Parra C、Ernlund A、Alard A、Ruggles K、Ueberheide B、Schneider RJ。一种广泛存在的cap-dependent mRNA翻译起始的替代形式。国家公社。2018;9(1):3068. doi:10.1038/s41467-018-05539-0。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
110Rezaul K、Thumar JK、Lundgren DH、Eng JK、Claffey KP、Wilson L、Han DK。使用无标签定量蛋白质组学在雌激素受体阳性和阴性乳腺癌组织中的差异蛋白表达谱。基因癌症。2010;1(3):251–271. doi:10.1177/1947601910365896。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
111Winslow S,Leandersson K,Larsson C.G3BP1对PMP22 mRNA的调节影响乳腺癌细胞的细胞增殖。Mol癌症。2013;12:1-10.doi:10.1186/1476-4598-12-156。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
112Mao C,Wang X,Liu Y,Wang M,Yan B,Jiang Y,et al.一种G3BP1-相互作用的lncRNA通过p53的核隔离促进癌症中的铁下垂和凋亡。2018年癌症研究:2017年4月34日。10.1158/0008-5472.Can-17-3454。[PMC免费文章][公共医学]
113Alshaker H,Wang Q,Brewer D,Pchejetski D。鞘氨醇激酶在转移性前列腺癌和乳腺癌细胞中的转录全效应:对治疗靶向性的影响。前沿药理学。2019;10:303.doi:10.3389/fphar.2019.00303。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
114Zhu P,He F,Hou Y,Tu G,Li Q,Jin T,Zeng H,Qin Y,Wan X,Qiao Y,Qiu Y,Teng Y,Liu M.一种新型缺氧长非编码RNA KB-1980E6.3通过与IGF2BP1相互作用来维持乳腺癌干细胞干细胞干度,以促进c-Myc mRNA的稳定性。致癌物。2021;40(9):1609–1627. doi:10.1038/s41388-020-01638-9。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
115荣D,董强,瞿H,邓X,高F,李Q,等.m(6)A诱导的LINC00958通过miR-378a-3p/YY1轴促进乳腺癌肿瘤发生。细胞死亡发现。2021;7(1):27. doi:10.1038/s41420-020-003282-z。 [PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]

文章来自生物标志物研究由以下人员提供BMC公司