乳腺癌中的甲基转移酶/写作者
甲基转移酶样3(METTL3)和甲基转移酶类14(METTL14)形成稳定的甲基转移酶复合物,在定位识别中起关键作用[92——94]. MELLT3在细胞核中起催化剂的作用,并迅速启动甲基转移酶复合物的形成。MELLT14促进与相关RNA位点的复杂结合并识别底物。此外,METTL14诱导METTL3上的丝氨酸磷酸化。
先前的研究表明,METTL3在乳腺组织和细胞中显著高表达[14,17,22,23,26,95]. Hong Wang等人表明,沉默METTL3可通过靶向Bcl-2降低甲基化水平、抑制增殖并诱导凋亡[23]. 乙型肝炎X相互作用蛋白(HBXIP)通过抑制肿瘤抑制因子let-7 g上调METTL3的表达,进而加速乳腺癌细胞的增殖[22]. 同样,沉默METTL3抑制细胞生长和增殖并加速细胞凋亡[22]. LINC00942(LNC942)是一种癌基因,通过靶向CXCR4和CYP1B1促进METTL14表达并诱导细胞增殖和生长[28]. 此外,METTL14影响hsa-miR-146a-5p的表达,促进迁移和侵袭,但对细胞增殖几乎没有影响[29].
与之前的研究相反,Wu等人揭示了METTL3和METTL14在乳腺组织中的表达低于正常组织[26]. 然而,有趣的是,METTL3和METTL14在正常和管腔型乳腺癌中的表达仍然较高。此外,METTL14的过度表达和/或ALKBH5的敲除显著抑制了细胞迁移能力[26]. 最近一项关于三阴性乳腺癌(TNBC)的研究也发现,METTL3在乳腺癌细胞中的表达较低。METTL3通过下调COL3A1的表达抑制TNBC细胞的转移[24]. Nate J.Fry等人证明,肿瘤细胞的增殖和迁移是通过上调METTL3和METTL14的表达或下调ALKBH5的表达来刺激的[30]. 另一项研究表明,METTL14和METTL16在MDA-MB-231、MDA-MB-468和MCF-7细胞系中的表达没有显著增强[31].
Wilms tumor 1-association protein(WTAP)通过与CCNA2的3′UTR结合调节G2/M细胞周期转换,并通过与METTL3/METTL14结合促进细胞生长和迁移[26]. 角质形成细胞生长因子增强WTAP的表达,从而增加乳腺细胞的增殖[27]. 然而,另一项研究表明,与配对正常组织相比,20个乳腺癌组织样本中WTAP的表达没有显著差异[26].
KIAA1429,也称为VIRMA,主要在大多数人类乳腺癌细胞系的细胞质中表达,并作为RNA结合蛋白调节m6A甲基化修饰。研究表明,KIAA1429在乳腺癌组织中高表达,在癌周组织中低水平表达[31,32]. 在MCF-7、MDAMB-231和SUM1315细胞系中,KIAA1429通过调节CDK1的表达促进细胞增殖、集落形成、迁移、侵袭和转移[32]. KIAA1429过表达预测乳腺癌患者总体生存率低[31]. 另一项研究表明,KIAA1429在HER2阳性乳腺癌中表达水平较低[26].
RBM15/RBM15B,RNA结合基序蛋白15/15B,通过结合尿嘧啶富集区促进RNA甲基化[25]. RBM15作为雌激素反应基因,调节MCF7和T47D细胞系的细胞生长[25]. 进一步研究发现,BARX2和雌激素受体a(ESR1)通过影响RBM15的表达,协同调节细胞生长和细胞侵袭[25]. 众所周知,RBM15影响疾病,如何调节RBM15是一个重要问题;到目前为止,对这个问题一无所知。RBM15B位于3p21肿瘤抑制区附近,在黑人和白人女性浸润性乳腺癌患者中与BRCA1-associated protein-1表达高度正相关[96].
Eun-Yeung Gong等人表明,CBLL1,也称为HAIKI或RNF188,主要在大多数人类乳腺癌细胞系的细胞质中表达[33]. CBLL1作为一种E3泛素蛋白连接酶,与ERa辅活化因子竞争,在乳腺癌的发展和进展中起到负面作用[34]. 2009年发表的一项纳入22个样本的研究发现,CBLL1的表达与浸润性导管癌和正常邻近组织无关[35]. 然而,这些乳腺癌中CBLL1 mRNA的表达高于邻近组织(样本中83.3%ER阳性)。
乳腺癌中的脱甲基酶/橡皮擦
FTO是AlkB家族的成员,是第一个确定的m6A脱甲基酶/橡皮擦,定位于染色体16q12.2,在大多数乳腺癌中高度表达[36——38,88,89]. 对于MDA-MB-231、MCF-7和4 T1乳腺细胞系,上调的FTO通过靶向BNIP3促进肿瘤增殖和转移或减少细胞凋亡。此外,文章强调,沉默FTO可以抑制体内乳腺肿瘤的生长[88]. 在HER2阳性乳腺癌中,FTO还通过FTO/miR-181b-3p/ARL5B信号通路在体外增强细胞侵袭和迁移[89]. 最近,一项研究还表明,FTO的表达可能在乳腺癌的发展和侵袭性中发挥重要作用,尤其是HER2过度表达的乳腺癌[37]. 一位研究人员表明,在HER2阳性的乳腺癌中,FTO的表达较低[26].
ALKBH5是AlkB家族的另一成员,在大多数乳腺癌中高度表达[26]. ALKBH5可能在细胞质和细胞质中起m6A读取器的作用,并促进其靶mRNA的翻译[14,95]. 最近,有报道称ALKBH5在乳腺癌发病机制中发挥肿瘤促进剂的作用[39,95]. ALKBH5在致瘤性和肺转移中起着关键作用。此外,在厌氧条件下,HIF1α和HIF2α显著增加ALKBH5 mRNA的表达[40,97]. 此外,敲低ALKBH5表达显著抑制肿瘤形成并减少乳腺肿瘤中的乳腺癌干细胞数量[40]. 此外,ALKBH5作为一种致癌基因,调节乳腺癌肿瘤干细胞的自我更新和增殖。
乳腺癌读者
YTH家族
先前的研究发现,YTH家族成员在癌症中的RNA稳定性、RNA剪接、RNA翻译和RNA加工中起着关键作用[17,31,74,77,88,98,99]. YTH家族主要包括以下成员:YTHDF1、YTHDF2、YTHDF3、YTHDC1和YTHDC2。YTHDF2是第一个与m6A修饰相关并介导mRNA加工的读取器[74,77]. 在细胞液中,YTHDF2通过与CCR4-NOT的相互作用调节mRNA的稳定性和降解。
YTHDF1和YTHDF3可以促进HeLa细胞中RNA的翻译。在细胞核中,YTHDC1通过募集某些结合位点来调节mRNA剪接、mRNA输出、RNA降解和部分RNA转录物[17,31,74,77,88,99]. 在乳腺细胞系中,YTHDF1和YTHDF2主要位于细胞质中,而YTHDC1主要位于细胞核中[31]. 此外,YTHDF1、YTHDF2和YTHDF3在乳腺癌中高表达,并促进细胞增殖、迁移和侵袭[31,75,98]. 值得注意的是,脑转移瘤中YTHDF3的表达高于亲代细胞[75]. 此外,敲除YTHDF3可显著降低小鼠模型的脑转移。脑转移乳腺癌中YTHDF3拷贝数增加高于原发性乳腺癌。有趣的是,在另一项研究中,miR-106b-5p基因转染下调了YTHDF3的表达,从而增强了雌激素诱导的乳腺癌的细胞增殖、迁移和侵袭[99]. 此外,在转染模拟物的细胞中,研究人员发现miR-106b-5p通过抑制翻译或诱导mRNA降解来调节YTHDF3的表达。
HNRNP家族
HNRNP家族成员,包括HNRNPC、HNRNPG和HNRNPA2B1,也调节RNA稳定性、RNA剪接、RNA翻译和RNA加工。HNRNPC是一种剪接因子,在乳腺癌中高度表达,并促进肿瘤细胞增殖和生长[68,76]. 此外,HNRNPC参与异常剪接并参与肿瘤转录组的形成[69]. 在MCF7和T47D,而不是MCF10A、BT549和MDA-MB-231细胞中,即使部分抑制HNRNPC功能也会导致I型干扰素应答、内源性dsRNA增加,以及通过激活ISGF3复合物上调ISG表达。HNRNPC的敲除抑制这些乳腺癌细胞的细胞增殖和肿瘤生长[68]. 另一项研究发现,HNRNPC在LvBr2中的表达明显高于MDA-MB-435细胞[68,70]. 在LvBr2细胞中,miR-146a通过下调HNRNPC抑制Akt的激活,从而抑制肿瘤的迁移和侵袭。
乳腺癌的另一剪接因子HNRNPA2B1在人类乳腺癌组织和细胞系中也显著上调[71]. 新的证据表明,HNRNPC在癌症的发展、进展、基因表达和信号转导中发挥着重要作用。敲除HNRNPA2B1抑制MCF-7和MDA-MB-231细胞系中的细胞增殖和细胞生长。此外,在HNRNPA2B1敲除的MCF-7/H1和231/H2细胞中,磷酸化STAT3和磷酸化ERK1/2表达水平显著降低。也就是说,HNRNPA2B1调节乳腺癌中STAT3和ERK1/2信号通路。值得注意的是,HNRNPA2B1在LCC9他莫昔芬耐药细胞中的表达高于亲代他莫昔酚敏感MCF-7细胞[72]. 相反,侵袭性乳腺癌中HNRNPA2B1的表达显著降低({“类型”:“entrez-geo”,“属性”:{“文本”:“GSE59246”,“term_id”:“59246“}}GSE59246型)和MDAMB-231和MCF-7细胞[73]. HNRNPA2B1抑制异种移植瘤的生长,但促进自发肺转移。HNRNPA2B1敲除促进F-actin细胞骨架的形成,激活Wnt通路的下游基因,激活ERK/MAPK/Twist通路,上调PFN2表达,并抑制上皮-间质转化和转移(EMT)促进基因和信号通路[73]. HNRNPG作为ERa外显子7剪接的特异性调节因子,调节子宫内膜癌中雌激素受体α的表达[100]. 然而,对乳腺癌中HNRNPG的分子特征知之甚少。基于这些发现,HNRNPG可能在雌激素受体表达的乳腺癌中发挥潜在作用。
FXR家族
FXR家族的三个成员FMR1、FXR1和FXR2通过形成多蛋白复合物参与脆性X智力低下综合征[41,90]. 先前的研究发现,所有FXR家族蛋白都包含两个KH结构域和一个RCG盒,并与多核糖体相关,主要与60S大核糖体亚基相关[90].
FMR1在其5′非翻译区含有CGG三核苷酸重复元件,在人类乳腺癌和远处转移中高度表达,并影响4个T1细胞系的细胞间粘附、细胞形状和侵袭[41,42]. FMR1还介导E-cadherin和Vimentin的表达。同时,CHIP通过非四肽重复域与FMR1相互作用并上调FMR1的表达[43].
FXR1作为一种RNA结合蛋白,在乳腺癌的进展和细胞侵袭中起着重要作用[44,45]. 在TNBC中,FXR1作为一种新的预后生物标志物,刺激肺转移FXR1与TNBC新辅助化疗的更好pCR相关[44]. 这些treRNA功能需要FXR1、FXR2和hnRNPK,而它们的表达促进体外肿瘤侵袭和体内转移[46]. FXR1或FXR2在MCF7细胞中不介导细胞增殖。此外,hnRNPK或FXR1的敲除而不是FXR2的敲除增加了MCF7细胞小鼠模型的肿瘤生长,而RNA结合蛋白的双重敲除或三重敲除显著降低了原发性肿瘤生长。也就是说,FXR1介导的肿瘤生长不是细胞增殖。简而言之,hnRNPK和FXR2的联合作用会影响体内肿瘤转移,但其治疗机制尚需评估。
IGF2BP家族(KH结构域蛋白)
胰岛素样生长因子2 mRNA结合蛋白(IGF2BP)将靶转录物招募到细胞质蛋白-RNA复合物[47,53,54,58——60,101——103]. IGF2BP家族成员IGF2BP1、IGF2BP2和IGF2BP3调节RNA剪接、翻译、加工和稳定性,从而影响乳腺癌的细胞增殖、分化、侵袭和转移。IGF2BPs作为FGF13-AS1的盲蛋白,阻止靶向Myc mRNA降解以调节乳腺癌细胞的增殖、侵袭和转移[102].
IGF2BP1作为一种结合蛋白,通过抑制eIF5A的积累来调节细胞凋亡[104]. 以前的研究发现IGF2BP1在乳腺癌中高度表达[47——50]. IGF2BP1通过β-catenin/TCF4反应元件促进β-catelin mRNA的稳定性,进而加速乳腺肿瘤的细胞粘附和转录[47]. 小鼠异种移植模型研究表明,IGF2BP1通过与GDF15 mRNA的3′UTR结合,抑制乳腺癌细胞增殖、肿瘤生长和肿瘤转移[49,50]而其他研究表明IGF2BP1不会影响肿瘤的生长或大小[51]. 在T47D和MDA231细胞中,IGF2BP1在抑制细胞迁移和转移中起着关键作用,部分通过调节E-cadherin mRNA的表达[50]. 在T47D细胞中,IGF2BP1沉默导致UCA1水平增加,随后miR-122-5p靶mRNA表达增加,最终促使乳腺癌细胞侵袭[52].
IGF2BP2是一种致癌蛋白,位于染色体3q27上,在乳腺癌细胞和组织中高度过度表达[53,55,56]. 先前的研究表明,IGF2BP2的敲除显著降低转移性内皮细胞密度和功能性血管含量,从而抑制乳腺癌细胞的肺转移。IGF2BP2过表达通过体外靶向CTGF mRNA增加细胞迁移和减少细胞粘附,刺激细胞增殖并影响生长和分化[56]. 此外,在MDA-MB-231和MCF-7细胞中,miR-1193通过抑制IGF2BP2翻译和减少人类乳腺癌细胞的增殖和侵袭来抑制ERK和PI3K/Akt信号通路的表达和激活[54]. CCN6直接降低IGF2BP2和HMGA2的表达,进一步降低MDA-MB-231细胞的肿瘤生长[53].
新的证据表明IGF2BP3在乳腺癌中高度表达[25,57——67]. 有趣的是,IGF2BP3在间充质细胞中的表达高于上皮细胞[105]. Hye-Youn-Kim等人阐明,IGF2BP2和IGF2BP3通过负向靶向microRNA-200a和部分确定特征表型,协同刺激细胞迁移、侵袭和侵袭[61]. 在乳腺癌细胞中,IGF2BP3与E-cadherin、vimentin和Slug直接相关(P(P) < 0.05),并通过刺激EMT进一步促进入侵和迁移83通过激活Hedgehog信号通路CD44/CD44减少细胞凋亡+Fbs/IGF2[59,106]. 此外,IGF2BP3通过EGFR信号传导和ERβ、SLUG mRNA和miRNA-34a的阻遏调节细胞迁移、侵袭和干细胞特性[105]. IGF2BP3通过抑制miRNA-3614成熟来增加TRIM25的表达,从而促进细胞生长和增殖[58]. IGF2BP3作为CERS6-AS1的RNA-结合蛋白,促进CERS6 mRNA的稳定,进而促进细胞增殖并抑制细胞凋亡[60].
带有C终端读取器的eIF系列
EIF3A是人类乳腺癌的癌基因,Bachmann等人首次将其描述为eIF家族中最大的亚单位[78]. 据报道,eIF3A在乳腺癌中显著高表达[79——81]. Dong等人发现,eIF3A调节M2蛋白的合成,并且降低MCF7细胞中eIF3A的表达可显著逆转其恶性生长表型[107]. TG2型/TIS21型通过抑制4EBP1磷酸化来消耗eIF的可用性,从而抑制翻译起始[80]. 此外,eIF3A中的rs10787899和rs3824830单核苷酸多态性与乳腺癌风险增加有关(所有P(P) < 0.01) [81]. EIF3A,也被描述为雌激素反应基因,可以靶向ER介导的信号,促进ERα阳性乳腺癌细胞的细胞增殖和/或迁移[79]. 需要更多的实验来确定eIF3A表达下调是否可以改变乳腺细胞的恶性表型。
在MCF7细胞中,抑制eIF4G1促进eIF4G2的表达,而抑制eIF4 G2部分增加电离辐射介导的DNA损伤的敏感性[108]. Columba等人发现eIF4G1与DAP5的相互作用很弱[109]. 此外,ERα−乳腺癌患者的eIF4G2表达高于ERα+患者。此外,eIF4G2在增殖细胞中大量表达,eIF4 G2水平的下调降低了整体蛋白翻译速率并抑制细胞增殖[110].
其他乳腺癌读者
G3BP1在乳腺癌中显著过度表达[82——86]. G3BP1通过抑制乳腺细胞中PMP22 mRNA的表达促进细胞增殖,通过抑制E-cadherin的表达和增加TGF-β信号传导基因、Smad靶基因、波形蛋白、蜗牛、Slug、纤维连接蛋白和ZEB1的表达促进肿瘤转移和侵袭[83,84,111]. 此外,G3BP1的过度表达在MCF-7细胞中诱导EMT,从而增加细胞迁移和侵袭[86]. 此外,与上调的G3BP1相比,下调的G3BP 1限制MDA-MB-231细胞的侵袭和迁移,促进MCF-7细胞的肿瘤侵袭和迁移[83,84]. 此外,G3BP1通过抑制核p53水平抑制细胞凋亡[112]. 更有趣的是,G3BP1也参与囊泡贩运[113].