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当前操作细胞生物学。作者手稿;PMC 2009年4月1日提供。
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美国国立卫生研究院:NIHMS47426
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FoxO转录因子在衰老过程中维持细胞内环境稳定

摘要

Forkhead转录因子FoxO家族在肿瘤抑制、能量代谢和生物体寿命的界面发挥作用。FoxO因子是胰岛素、生长因子、营养素和氧化应激刺激的关键下游靶点,可协调多种细胞输出。FoxO依赖性细胞反应包括糖异生、神经肽分泌、萎缩、自噬、凋亡、细胞周期阻滞和应激抵抗。这篇综述将在整个生物体的背景下讨论哺乳动物FoxO家族在从干细胞到成熟细胞的各种细胞类型中的作用。鉴于大量证据表明FoxO因子促进无脊椎动物的寿命,本综述还将讨论FoxO因素在哺乳动物生物衰老中的潜在作用。

FoxO调节与细胞功能的传统观点

哺乳动物有FoxO转录因子家族的四种亚型,即FoxO1、FoxO3、FoxO4和FoxO6。FoxO四种亚型中的三种,即FoxO1、FoxO3和FoxO4,在三个特定位点受到Akt依赖性磷酸化的关键调节,以响应生长因子和胰岛素刺激(人类FoxO3:Thr32、Ser253和Ser315)[1-4]. FoxO因子的Akt依赖性磷酸化促进FoxO从细胞核输出到细胞质,从而抑制FoxO转录功能(图1A). 虽然剩余两个Akt依赖位点的磷酸化抑制FoxO6转录活性[5,6]. FoxO因子已成为生长因子刺激和氧化应激反应信号的聚合点(图1) [1,7-12]. 胰岛素和生长因子通过PI3K/Akt抑制FoxO因子,而氧化应激刺激通过组合修饰激活FoxO因素。除PI3K/Akt途径外,直接调节FoxO因子活性的其他主要信号模块包括应激激活的Jun-N末端激酶(JNK)、哺乳动物Ste20-like蛋白激酶(MST1)的同源序列和脱乙酰酶Sirt1(图1) [9-11,13-15]. FoxO因子通过翻译后修饰(如磷酸化、乙酰化和单/多-泛素化)整合这些不同的信号,从而改变亚细胞定位、蛋白质稳定性、DNA结合特性和转录活性[1,9,11,12,14,16]. FoxO依赖性转录在多种细胞输出中起着重要作用,包括葡萄糖代谢、细胞周期阻滞、分化、活性氧(ROS)解毒、受损DNA修复和细胞凋亡[17-26].

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生长因子对FoxO转录因子的负调控和氧化应激刺激对Fox0因子的正调控

(A) 在生长因子或胰岛素刺激下,Akt在三个保守残基处直接磷酸化FoxO因子,通过与伴侣14-3-3结合促进其从细胞核输出,从而抑制FoxO依赖性转录。在生长因子或胰岛素的存在下,FoxO依赖性转录被抑制,促进细胞增殖和存活,但也使细胞对氧化损伤敏感。(B) 氧化应激通过AMPK(AMP-依赖性激酶)、JNK(Jun-N末端激酶)、MST1(哺乳动物Ste20-like激酶)和CBP(CREB结合蛋白)等因子在许多调节位点诱导FoxO因子的磷酸化、乙酰化和单泛素化。为了应对氧化应激,FoxO因子转移到细胞核并与脱乙酰酶Sirt1结合。关键的修饰标记似乎将FoxO因子招募到参与细胞周期阻滞和应激反应的特定基因中。第27页细胞周期素依赖性激酶抑制剂;锰超氧化物歧化酶锰超氧化物歧化酶;比姆细胞死亡的促凋亡Bcl2相互作用介质;Gadd45α、生长停滞和DNA损伤诱导基因45α。

因此,已经确定了大量的靶基因,它们介导FoxO因子在各种细胞过程中的作用(表1). 最明确的FoxO依赖性靶基因包括细胞周期抑制剂第27页第21页,应激反应基因锰超氧化物歧化酶(锰超氧化物歧化酶)、和生长停滞和DNA损伤诱导基因45(加德45),促凋亡因子Bcl2-细胞死亡的相互作用介质(Bim)Fas配体和糖原分解基因葡萄糖-6-磷酸酶(G6pc)(图1) [17,18,21,22,27-32]. 尽管进行了大量工作,但FoxO因子指定不同细胞反应的机制,以及FoxO依赖的细胞反应和基因靶点的集合尚未完全阐明。

表1

FoxO靶基因和功能

蜂窝输出基因功能细胞中的调节与启动子结合发起人的监管工具书类
新陈代谢G6个糖原分解+EMSA公司+[19,29,57]
Igfbp1调节IGF活性+炸薯条+[27,57,58,59]
Ppargc1α糖异生+[57]
第1包糖异生+EMSA公司+[57,58]
食物摄入量阿格普食欲神经肽+炸薯条;EMSA公司+[61,62]
Npy公司食欲神经肽+炸薯条;EMSA公司+[61]
Pomc公司厌食神经肽-炸薯条;EMSA公司+[61,62]
萎缩阿托品-1/MAFbx肌特异性泛素连接酶+EMSA公司+[66,67]
MuRF1号机组肌特异性泛素连接酶+[66]
自噬Bnip3号机组Bcl2相关自噬调节器+炸薯条[21,70]
加巴拉普1自噬体形成+炸薯条[72]
生命周期3自噬体形成+炸薯条+[70,72]
附件12I自噬相关基因+炸薯条[72]
细胞凋亡比姆Bcl2-细胞死亡的相互作用介质+炸薯条+[15,28,75]
隐藏促凋亡+炸薯条[76]
Fas配体促凋亡肿瘤坏死因子配体+[1]
细胞周期阻滞第27页基普1结合并抑制细胞周期蛋白E–CDK2复合物++[18,82]
第21页密码1结合并抑制细胞周期蛋白E–CDK2复合物+炸薯条+[30,34]
第19页墨水4d第19页阿尔夫结合并抑制细胞周期蛋白D–CDK4/6复合物+炸薯条;EMSA公司+[32,83]
第15页墨水4b结合并抑制细胞周期蛋白D–CDK4/6复合物+炸薯条;EMSA公司+[32,33,34]
血管生成萌芽2酪氨酸激酶信号传导抑制剂+炸薯条[63]
电子NOS内皮功能与新生血管-炸薯条+[64]
安哥拉2血管重塑因子+[64]
引用2CBP/p300互动交易激活器+炸薯条+[38,63]
抗应力锰超氧化物歧化酶锰超氧化物歧化酶+炸薯条+[20,82]
Gadd45α生长停滞和DNA损伤诱导基因45α++[21]

脚注

靶基因列表并不详尽。

通过评估mRNA或蛋白质水平,细胞中的调节详细说明FoxO因子是促进(+)还是抑制(-)培养细胞中的靶基因表达。

通过染色质免疫沉淀(ChIP)或电迁移分析(EMSA)评估FoxO因子与启动子的直接结合。

通过FoxO因子特异性驱动荧光素酶表达的能力来测试启动子的调节。

最近发现的调节FoxO活性的信号通路

最近的研究为FoxO调控途径的复杂性提供了进一步的见解。研究表明,FoxO因子受多种新的应激刺激调节,包括DNA损伤、营养剥夺、细胞因子和缺氧[30,33-38]. 例如,DNA损伤通过细胞周期依赖性激酶2(CDK2)影响FoxO活性[35]. CDK2在Ser249磷酸化FoxO1,导致在没有DNA损伤的情况下将FoxOl隔离在细胞质中。在存在DNA损伤的情况下,CDK2对FoxO1隔离的抑制作用被消除,FoxOl移位到细胞核诱导凋亡[35]. 此外,能量传感器AMP-activated protein kinase(AMPK)已被证明在六个不同于Akt磷酸化位点的调控位点直接磷酸化FoxO因子,导致FoxO活化[36,37]. AMPK对FoxO因子的激活促进基因表达程序的优先表达,从而增强细胞的应激抵抗力[36,37]. 虽然FoxO因子的调节主要通过翻译后修饰进行,但最近的一系列研究强调了FoxO因素如何通过替代机制整合细胞外刺激。例如,生长抑制性细胞因子转化生长因子-β(TGFβ)触发FoxO、Smad和C/EBPβ转录因子在特定启动子处形成复合物,从而导致细胞周期抑制剂基因的表达,包括第15页第21页[30,33,34,39,40]. 研究表明,FoxO和Smad转录因子之间的协同作用对于TGFβ在多种细胞类型(包括上皮癌和乳腺癌细胞)中的抗增殖作用至关重要[30,33]. 此外,一项有趣的新研究表明福克斯O3细胞缺氧通过缺氧诱导因子HIF1与福克斯O3发起人[38]. 增加的表达福克斯O3通过减弱HIF诱导的凋亡而提高细胞存活率。这些最新的研究强调了FoxO因子的复杂调节,通过广泛的不同刺激,包括DNA损伤、葡萄糖可用性、细胞因子和缺氧,这些刺激可能有助于在不同环境条件下微调不同细胞类型中的FoxO活性。

FoxO因子在整个生物体中的作用:来自无脊椎动物的见解

对无脊椎动物的研究揭示了FoxO因子在整个生物体中的细胞作用。与哺乳动物相比,无脊椎动物模型生物只有一种FoxO转录因子家族的亚型,即DAF-16,用于秀丽隐杆线虫和dFOXO黑腹果蝇DAF-16在生物体新陈代谢和寿命中的重要性在一系列有关蠕虫胰岛素/FoxO途径的精髓研究中得到了揭示。DAF-16对于胰岛素/胰岛素样生长因子受体突变所提供的寿命延长是必需的daf-2型[41-43]. DAF-16也是一种独特的发育停滞和滞育所必需的,称为dauer,其特点是代谢活性低,饥饿反应寿命长[43]. 有趣的是,与其他组织中的DAF-16活性相比,特定组织(尤其是肠道和神经系统)细胞中DAF-16的活性似乎更能促进长寿[44-46]. 这些结果表明,DAF-16/FoxO调节次级信号或激素的产生,这些次级信号或荷尔蒙协调机体内各种组织的新陈代谢和寿命[47]. 在苍蝇中,激活dFOXO公司脂肪体细胞(相当于哺乳动物的白色脂肪和肝组织)也能延长寿命[48,49]. 组织的dFOXO公司尽管观察dFOXO介导的代谢效应需要功能性dTOR信号通路,但苍蝇神经分泌胰岛素生成细胞中的过度表达和靶向过度表达会增加血糖和血脂水平[50]. 因此,无脊椎动物的研究告诉我们,胰岛素/FoxO途径对协调新陈代谢和寿命至关重要,它通过产生次级信使在整个生物体内系统地发挥作用,以细胞内和细胞外的方式发挥作用。

在哺乳动物中,FoxO亚型在整个生物体中表现出差异但重叠的表达

在哺乳动物中,FoxO家族在发育过程中和各种成体组织中都有互补但重叠的表达模式[5,51-53]. 在鼠标开发期间,福克斯O1在脂肪组织中检测到最高水平,福克斯O3在肝脏中表达最多,氧化磷骨骼肌和福克斯O6在中枢神经系统中。在成年小鼠中,FoxO1型脂肪组织、子宫和卵巢中含量最高,而骨骼肌和脾脏等大多数其他组织中含量较低。的表达模式福克斯O3更普遍,但福克斯O3在大脑、脾脏、心脏和卵巢中特别高表达。福克斯O4在骨骼肌、心肌和脂肪组织中表达最高。有趣的是,福克斯O6几乎只在成人大脑中表达。的表达式福克斯O1福克斯O3在人体组织中与小鼠的表达谱相似[54]. FoxO家族在成年小鼠大脑中的表达模式特别有趣,说明了FoxO亚型的差异表达。福克斯O1纹状体、齿状回和腹侧海马最丰富,而福克斯O3在大脑皮层、海马体和小脑中表达最高福克斯O6在海马体、杏仁核和扣带回皮质大量表达[53]. 海马体、杏仁核和小脑分别协调不同的有机体行为反应,如空间学习、情绪和运动协调。FoxO家族在成年小鼠大脑中的差异表达可能表明神经元中不同FoxO亚型的不同细胞功能或效力不同。这些观察结果表明,在进化过程中,FoxO途径被认为发挥了以下两种作用之一:1)对不同组织特异性环境刺激的反应中发挥了相关作用,或2)对相关环境刺激的响应中发挥了不同的组织特异性作用。

FoxO功能的集成模型?

哺乳动物细胞培养实验揭示的FoxO因子细胞作用的极端多样性给将这些多重作用整合到一个统一的模型中带来了挑战。此外,许多关于FoxO调节和功能的研究都是在永生或转化的培养细胞系中进行的,这些细胞系“脱离了组织背景”因此,很难根据条件推断结果体内依赖于特定的细胞生态位。尽管存在这些局限性,但越来越清楚的是,特定刺激对FoxO活性的调节会在同一组织内触发一致的细胞输出。由于细胞和组织所感受到的环境刺激不同,本综述的其余部分将重点讨论FoxO蛋白在机体不同组织中对组织特异性刺激的细胞作用。FoxO功能和组织信号的分类提供了一个有趣的框架,可以理解为什么哺乳动物有机体进化为利用FoxO因子家族的成员来控制各种不同的细胞过程,以应对不同的环境和老化。

在这篇综述中,作为我们讨论的框架,我们将哺乳动物组织分为三大类:1)“调节”组织,包括肝脏、胰腺和下丘脑-垂体轴;2) 允许组织间连接的血管系统;3) 包括骨骼肌、神经系统和造血系统在内的“能量利用组织”(图2). 除了调节成熟细胞外,FoxO因子也正在成为成人组织中干细胞的关键调节因子(图2). 例如,我们将讨论FoxO家族在造血系统干细胞中的作用。鉴于FoxO因子在无脊椎动物寿命中的作用,越来越多的证据表明胰岛素信号通路在哺乳动物寿命中的角色[55,56],我们还将推测FoxO因子在这些组织类别中调节哺乳动物寿命的可能作用。

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FoxO转录因子在组织稳态中的作用

FoxO-依赖性转录通过调节机体调节细胞(如肝细胞、胰腺β细胞和下丘脑神经元)中的糖异生、胰岛素分泌和食物摄入来提高系统葡萄糖水平。在能量利用细胞(如心肌细胞和神经元)中,FoxO因子似乎被激活,以应对饥饿和氧化应激等恶劣环境条件,从而引发萎缩、自噬或凋亡。在T细胞中,FoxO因子减弱增殖和过度激活。在血管系统的内皮细胞中,FoxO因子调节基因以抑制增殖和抑制迁移。FoxO因子还通过协调静止、抗应激和终末分化,在造血干细胞(HSC)的维持中发挥关键作用。总的来说,FoxO因素似乎会促进机体代谢停止,以应对严酷的环境条件,如饥饿,从而使机体能够在预期环境条件改善的情况下生存。

FoxO因子通过作用于调节细胞类型,增加机体葡萄糖水平和食物摄入

控制循环代谢物和激素的调节细胞位于肝脏、胰腺、下丘脑-垂体轴和脂肪组织中。在这些调节细胞中,FoxO似乎在许多不同的水平上发挥作用,系统性地增加循环葡萄糖水平(图2). 例如,消融福克斯O1在肝细胞中,FoxO因子降低新生和成年小鼠的葡萄糖水平,支持FoxO因素促进循环中葡萄糖水平升高的观点[57]. FoxO1通过作用于靶基因(如葡萄糖-6-磷酸酶G6pc(糖原分解),以及磷酸烯醇丙酮酸羧激酶1 Pck1,过氧化物酶体增殖物激活受体γ辅活化子1αPpargc1α(糖异生)(表1) [29,57,58]. 有趣的是,福克斯O1肝细胞中的缺失可防止过度葡萄糖生成和糖尿病胰岛素受体无鼠标[57]. 在培养的胰腺β细胞中,组成核型FoxO1的适度表达通过抑制糖酵解、减少胰岛素分泌和增加游离脂肪酸氧化,导致“代谢滞育”状态[59]. 的表达式福克斯O1在转基因小鼠的β细胞中,还可以阻止胰岛素抵抗期间β细胞的代偿性增殖[60]. 与所进行的研究相比在体外[59],福克斯O1表达体内不会降低循环胰岛素水平[60]表明FoxO因子可以通过减少胰岛素分泌或减弱β细胞分裂,在多个水平上发挥作用,增加循环葡萄糖。因此,FoxO因子协同作用,通过调节肝脏糖异生和糖原分解以及通过减少胰腺的净胰岛素产生来增加全身葡萄糖。这些观察结果提出了一个有趣的可能性,即如果FoxO因子具有组成活性,那么它们可能会促进哺乳动物的糖尿病。有可能是FoxO因子已经进化参与了对低营养可用性的适应,并且观察到的糖尿病表型是食物充足时适应反应的过度。

下丘脑调节食物摄入和能量平衡。FoxO因子通过协调下丘脑神经元中神经肽的产生,进一步控制代谢物的稳态[61,62]. 两份独立报告表明,FoxO1在下丘脑弓状核中发挥作用,通过诱导食欲激素的表达来增加食物摄入和体重促尿相关蛋白(阿格普)和/或神经肽Y(Npy公司) (图2). 此外,FoxO1似乎对厌食神经肽的表达有抑制作用,例如原-β-黑素皮质素(Pomc公司)通过抑制转录因子Stat3对该基因的诱导。厌食激素胰岛素和瘦素降低福克斯O1下丘脑神经元的表达。胰岛素和瘦素对食物摄入量的抑制作用部分是通过其抑制FoxO1的能力介导的[61]. 这些研究支持这样的观点,即在哺乳动物调节细胞中,FoxO转录因子将代谢从葡萄糖利用转变为保存状态,这让人联想到“代谢滞育”通过在从糖异生到食物摄入的许多不同水平上发挥作用,FoxO因子已经进化为帮助生物体适应营养剥夺。当食物供应充足时,FoxO转录似乎通过激素控制增加了生物体的食物摄入量和觅食行为。在不利的营养条件下,FoxO因子改变生物体的新陈代谢,使动物能够通过维持全身血糖和血脂水平来继续发挥功能。

FoxO因子限制血管生成

循环系统的血管连接“调节”和“能量利用”组织,由内皮细胞组成。新的证据表明FoxO因子减弱内皮细胞的增殖和迁移,导致血管形成受限(图2). 急性缺失福克斯O1,福克斯O3福克斯O4在使用诱导型Mx-Cre转基因的小鼠内皮细胞中,内皮细胞的年龄累进过度增殖导致血管瘤和动物过早死亡[63]. 有趣的是,虽然福克斯O1,福克斯O3福克斯O4全身内皮细胞缺失,血管瘤只在一部分组织中观察到,特别是子宫、肝脏和骨骼肌,表明特定的细胞外信号,可能是血管内皮生长因子(VEGF)--在缺乏FoxO因子的情况下,也在肿瘤进展中发挥重要作用。在缺乏FoxO因子的情况下引发血管瘤进展的因素尚未确定,但萌芽2,一种通用受体酪氨酸激酶抑制剂,被鉴定为一种重要的FoxO靶基因,参与抑制增殖和细胞存活。虽然三个FoxO家族成员的消融加重了血管表型,福克斯O3消融小鼠通过消除FoxO3对后肢缺血的抑制作用来增强新生血管的形成电子NOS表达式[64]. FoxO1和FoxO3(而非FoxO4)被证明直接与电子号码培养内皮细胞中的启动子(表1). 的静音福克斯O1福克斯O3培养内皮细胞中siRNA基因表达增强血管形成、迁移和血管萌芽对VEGF的响应[64]. 这些研究很有趣,因为它们提供了冗余的证据[34,64],但对于FoxO家族的不同亚型而言,作用并不完全重叠[63,64]. 事实上,虽然过表达了福克斯O1福克斯O3在内皮细胞中抑制血管形成和迁移福克斯O4没有抑制这些过程[64]. 此外,内皮细胞中由FoxO1和FoxO3调节的基因程序显示有重叠,但也有差异[64]. 例如,FoxO1和FoxO3均受到调节电子号码,但是血管生成素2(安哥拉2)由FoxO1独家监管。这些研究表明,FoxO因子限制血管化,甚至可能限制组织对恶劣环境刺激的营养供应,尽管这需要进行正式测试。FoxO因子促进代谢停止的可能性与观察结果一致,即FoxO因素在维持高血糖水平的同时限制血管形成,并在恶劣的环境条件下鼓励食物摄入。FoxO因子同时作为细胞肿瘤抑制因子和血管生成调节因子也很有趣。这种交叉提供了两种机制,通过这两种机制FoxO家族可以限制肿瘤的发展;通过细胞内对细胞周期的严格控制,以及通过外在限制血管系统对发展中肿瘤的供应。

FoxO因子在压力刺激下保护能量利用组织中未受损的细胞

生物体的能量利用细胞类型,如骨骼肌、神经系统和免疫系统中的细胞类型,对调节性“起搏器”组织(如肝脏、胰腺和下丘脑)作出反应(图2). 虽然在这些能量利用细胞中调节FoxO的整套刺激物尚不清楚,特别是对免疫系统而言,但当调节组织和血管系统功能不正常或自身受到环境影响时,FoxO家族似乎会被激活(例如饥饿期间)。在这种不利的情况下,这些利用能量的细胞似乎进入了自我保存状态。

骨骼肌

在营养缺乏或饥饿期间,骨骼肌会经历两个高度保守的过程引起的蛋白质降解:1)泛素蛋白体萎缩,2)溶酶体自噬。自噬是一种对营养缺乏的保护性细胞反应,溶酶体酶介导蛋白质、细胞质和细胞器的循环[65]. 最近的研究表明,FoxO因子是肌肉萎缩和自噬的关键介导因子,对空腹反应,也对去神经、糖皮质激素和后肢悬吊反应[66-72]. 在禁食期间FoxO1和FoxO3诱导两种肌肉特异性E3泛素连接酶的转录,阿奇金-1/MAFbxMuRF1号机组,以及泛素-蛋白酶体系统的其他成分(例如ZNF216,一种含有锌指的新型泛素结合蛋白),导致骨骼肌萎缩而不发生凋亡[66-69]. While期间阿奇金-1似乎是FoxO的直接靶基因,尚不清楚蛋白酶体系统的其他成分,如ZNF216型是FoxO的直接靶基因。有趣的是阿奇金-1通过介导FoxO1和FoxO3的多向泛素化来增强FoxO转录活性,从而启动正反馈环以减轻心肌肥厚[73]. 同时,研究表明,FoxO3通过直接控制自噬相关基因的转录,激活自噬,以应对禁食或去神经支配,包括生命周期3,加巴拉普省Bnip3附件12l[70,72]. 这些促进自噬的基因被证明是肌管中FoxO因子的直接靶点(表1). 有趣的是,FoxO因子诱导的自噬似乎并不局限于哺乳动物的肌肉,因为在果蝇属饥饿也会导致脂肪体自噬[74]. 哺乳动物研究支持这样的观点,即FoxO因子促进骨骼肌管的急性萎缩和自噬,以应对饥饿或调节性“起搏器”组织的营养支持不足。目前尚不清楚肌肉萎缩和自噬是否对机体有益,但萎缩和自吞噬可能会导致急性自我保护状态,以期改善营养状况。长时间的应激,如饥饿、肢体制动和慢性糖皮质激素,可能会抵消FoxO依赖性萎缩和自噬提供的短暂组织保护,并可能导致FoxO依存性细胞凋亡或其他FoxO非依赖性有害影响的诱导。

神经系统

在神经系统中,FoxO家族似乎被激活以应对各种应激刺激,如癫痫发作和氧化应激,并通过凋亡消除受损神经元。大鼠癫痫性脑损伤导致海马神经元FoxO1和FoxO3激活,促凋亡基因上调比姆导致神经元凋亡[75]. 同样,紫外线对果蝇属dFOXO诱导视网膜神经组织凋亡隐藏[76]. dFOXO诱导苍蝇视网膜细胞凋亡需要激活JNK通路,这进一步支持了JNK激活FoxO因子的观点[10,77]. 最后,过氧化氢处理诱导的氧化应激通过激活FoxO因子促进大鼠初级小脑神经元的凋亡[15]. 氧化应激诱导神经元凋亡至少部分是通过细胞凋亡的重要效应物MST1蛋白激酶对FoxO因子的定向激活介导的[15]. 当FoxO因子明显有能力通过诱导自噬来保护其他组织(如肌管)时,为什么凋亡是神经元中环境应激源激活FoxO因素的主要细胞输出尚不清楚。神经元可能比其他细胞类型对凋亡更敏感。虽然MST-FoxO通路的激活会导致培养神经元的凋亡,但同样的通路会促进秀丽线虫[15]. 因此,FoxO因子促进神经系统中的细胞凋亡,但却有能力在无脊椎动物中诱导较长的寿命,这一事实造成了一个难题,因为细胞凋亡是一种被认为是终末性和负性的细胞输出。有两种解释可以解释这种明显的差异:1)受损神经元的有限凋亡实际上可能有助于保护剩余神经系统的功能;或2)FoxO可能需要在适当的时间/幅度“窗口”内激活,否则会产生不利影响。

免疫系统

在免疫系统中,FoxO转录因子似乎在多个阶段发挥作用,以限制成熟造血细胞的扩增和/或激活,尽管激活这些细胞中FoxO因子的特定刺激物仍有待确定[78,79]. 消融体内FoxO3导致T细胞增殖和过度活动(例如升高的白介素-2表达),导致多系统炎症综合征[80]. 这项研究表明,FoxO3通常抑制哺乳动物的炎症反应。由于与炎症相关的某些基因的表达在衰老过程中增加(由[81])很容易推测FoxO因子也可以通过阻止不受控制的炎症反应来维持组织内环境稳定。然而,需要做更多的工作来剖析免疫功能的组成部分,这些免疫功能在机体维持期间是有益的,而不是可能加速衰老的炎症途径。

FoxO因子限制干/前体细胞和增殖/致瘤细胞的扩张并调节其末端分化

除了在成熟细胞类型中的作用外,FoxO转录因子还起着限制造血系统等组织中干/祖细胞扩张的作用(图2). 急性缺失福克斯O1,福克斯O3福克斯O4在成年小鼠中,骨髓导致髓系和淋巴系的扩张,同时长期造血干细胞的细胞周期增加[79]表明FoxO家族通常限制这些干细胞的增殖。任何一种的烧蚀福克斯O3单独或与福克斯O1福克斯O4导致造血干细胞池维护减少[79,82]由于活性氧和细胞凋亡增加,静息期减少,随着年龄的增长而逐渐恶化。有趣的是,用抗氧化剂N-乙酰-L-半胱氨酸治疗突变小鼠可以显著改善FoxO-缺陷造血干细胞的细胞周期和生存缺陷。这一发现表明,氧化应激是调节这些干细胞增殖和凋亡的主要因素,化学干预至少可以修复部分细胞缺陷。造血细胞中FoxO因子的消融会导致细胞周期进程增加和/或对凋亡的抵抗,从而通过减少第27页第19页表达式[63,83]. 与这些研究一致,FoxO转录活性的丧失使祖细胞或肿瘤细胞对TGFβ等细胞外效应物的细胞抑制作用产生抵抗,这可能有助于肿瘤的发展(图2) [30,33,34,84,85]. FoxO转录活性在祖细胞和肿瘤细胞中通过多种机制减弱[30,84,85]包括:i)PI3K/Akt信号通路对FoxO因子磷酸化的核排斥;ii)FoxO因子与转录阻遏物FoxG的结合;iii)IκB激酶β(IKKβ)或细胞外信号调节激酶(ERK)磷酸化FoxO因子后泛素依赖性降解。总之,这些研究通过协调干/祖细胞中的细胞静止,将FoxO因子确定为肿瘤发生的关键抑制剂。这些发现也突出了FoxO家族在维持成人组织干细胞池方面的重要性。与这种可能性一致福克斯O3在雌性小鼠中,导致卵泡池过早耗尽和过早不育[86]. FoxO家族在其他组织特异性干细胞中的作用尚不清楚,但一个有趣的可能性是,FoxO基因家族可能通过维持成人干细胞库,在衰老过程中促进组织的维护和修复。

结论

虽然FoxO家族的调控和作用已经被很好地研究过,但对于这些混杂转录因子在不同环境下响应不同细胞输出的决定机制,仍然缺乏知识。同样,虽然现在有证据表明四种FoxO亚型的作用并不完全重叠,但尚不清楚其存在的原因[63,64]. 出现的一个模型是,不同的FoxO亚型与具有不同亲和力的靶基因启动子结合,这可能是由于亚型之间的结构差异和翻译后修饰导致细胞输出差异的机会。了解FoxO因子是否除了本综述中提到的那些之外还调节其他细胞反应,并阐明FoxO因素如何在分子水平上指定它们对多种环境刺激的反应,将为了解它们的生物功能提供重要的见解。

鉴于此处讨论的证据表明,FoxO因子协调葡萄糖稳态、血管生成、干细胞维持、免疫、肌肉和神经功能,其对糖尿病、癌症、自身免疫性疾病和神经变性的影响显而易见。最后,有压倒性证据支持FoxO因子在决定无脊椎动物寿命中的重要作用,尽管还有进一步的研究体内需要就FoxO因子在哺乳动物寿命中的作用得出结论。了解FoxO因子细胞功能如何整合到内聚性机体反应中,对于治疗糖尿病、癌症、自身免疫综合征和神经退行性变等年龄依赖性疾病具有重要意义。

致谢

由于篇幅限制,我们无法引用所有相关论文,对此深表歉意。我们感谢布鲁内特实验室的成员,特别是埃里克·L·格里尔、维多利亚·A·拉斐斯基、达里奥·瓦伦扎诺和瓦莱里·雷诺对手稿的有益评论。

脚注

出版商免责声明:这是一份未经编辑的手稿的PDF文件,已被接受出版。作为对客户的服务,我们正在提供这份早期版本的手稿。手稿在以最终可引用的形式出版之前,将经过编辑、排版和校对结果证明。请注意,在制作过程中可能会发现可能影响内容的错误,适用于该期刊的所有法律免责声明均适用。

参考文献和推荐阅读

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•15.Lehtinen MK、Yuan Z、Boag PR、Yang Y、Villen J、Becker EB、DiBacco S、de la Iglesia N、Gygi S、Blackwell TK等。一种保守的MST-FOXO信号通路介导氧化应激反应并延长寿命。单元格。2006;125:987–1001.[公共医学][谷歌学者]这项研究表明,哺乳动物Ste20-like激酶MST1直接磷酸化培养神经元中Ser207的FoxO3,以应对氧化应激。MST1促进FoxO3核移位和诱导促凋亡基因,如比姆。MST1同源基因在秀丽线虫福克斯O/daf-16-依赖方式。
16Matsuzaki H、Daitoku H、Hatta M、Aoyama H、Yoshimochi K、Fukamizu A。Foxo1的乙酰化改变了其DNA结合能力和磷酸化敏感性。美国国家科学院程序。2005;102:11278–11283. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
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28Dijkers PF、Medema RH、Lammers JW、Koenderman L、Coffer PJ。前凋亡Bcl-2家族成员Bim的表达受叉头转录因子FKHR-L1调节。当前生物量。2000;10:1201–1204.[公共医学][谷歌学者]
29Schmoll D、Walker KS、Alessi DR、Grempler R、Burchell A、Guo S、Walther R、Unterman TG。蛋白激酶Balpha和叉头转录因子FKHR对葡萄糖-6-磷酸酶基因表达的调节。胰岛素对启动子活性的反应单位依赖性和独立性影响的证据。生物化学杂志。2000;275:36324–36333.[公共医学][谷歌学者]
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•33.Gomis RR、Alarcon C、Nadal C、Van Poznak C、Massague J.C/EBPbeta是TGFbeta细胞抑制反应及其在转移性乳腺癌细胞中的逃避的核心。癌细胞。2006;10:203–214.[公共医学][谷歌学者]参见注释34.
•34.Gomis RR,Alarcon C,He W,Wang Q,Seoane J,Lash A,Massague J.人类角质形成细胞中FoxO-Smad共表达组。美国国家科学院程序。2006;103:12747–12752. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]33和34揭示了生长抑制性细胞因子转化生长因子β(TGFβ)诱导Smad、FoxO和其他转录因子(如C/EBPβ)之间形成转录活性复合物,从而导致细胞停滞。TGFβ诱导细胞抑制基因程序在多种祖细胞和肿瘤细胞类型中的表达,包括上皮性和转移性乳腺癌细胞。
•35.Huang H,Regan KM,Lou Z,Chen J,Tindall DJ。FOXO1的CDK2依赖性磷酸化作为对DNA损伤的凋亡反应。科学。2006;314:294–297.[公共医学][谷歌学者]这项研究表明,蛋白激酶CDK2在丝氨酸249处磷酸化FoxO1,这有助于FoxOl在细胞质中的隔离。DNA损伤会消除这种磷酸化,从而触发FoxO1激活和凋亡细胞死亡。
•36.Greer EL、Dowlatshahi D、Banko MR、Villen J、Hoang K、Blanchard D、Gygi SP、Brunet A。一种AMPK-FOXO途径介导由秀丽隐杆线虫饮食限制新方法诱导的寿命。当前生物量。2007;17:1646–1656. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]36和37表明,一种饮食限制方法对秀丽线虫寿命。AMPK在六个残基上直接磷酸化DAF-16和哺乳动物FoxO3。AMPK对哺乳动物FoxO3的磷酸化是上调与应激抵抗和能量代谢相关的基因所必需的。
•37.Greer EL、Oskoui PR、Banko MR、Maniar JM、Gygi MP、Gyji SP、Brunet A。能量传感器AMP活化蛋白激酶直接调节哺乳动物FOXO3转录因子。生物化学杂志。2007;282:30107–30119.[公共医学][谷歌学者]参见注释36.
•38.Bakker WJ,Harris IS,Mak TW.FOXO3a在低氧应激反应中被激活,并通过调节CITED2抑制HIF1诱导的细胞凋亡。分子细胞。2007;28:941–953.[公共医学][谷歌学者]这项研究表明,低氧应激通过上调FoxO3的激活福克斯O3mRNA。为了应对缺氧,FoxO3调节转录辅因子的表达引用2从而抑制正常细胞和癌细胞中HIF1依赖的凋亡。
39Shaw WM、Luo S、Landis J、Ashraf J、Murphy CT。秀丽线虫TGF-β-Dauer途径通过胰岛素信号调节寿命。当前生物量。2007;17:1635–1645. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
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58Hall RK、Yamasaki T、Kucera T、Waltner-Law M、O’Brien R、Granner DK。胰岛素对磷酸烯醇式丙酮酸羧激酶和胰岛素样生长因子结合蛋白-1基因表达的调节。翼螺旋/叉头蛋白的作用。生物化学杂志。2000;275:30169–30175.[公共医学][谷歌学者]
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••61.Kim MS、Pak YK、Jang PG、Namkoong C、Choi YS、Won JC、Kim KS、Kin SW、Kim-HS、Park JY等。下丘脑Foxo1在食物摄入和能量平衡调节中的作用。自然神经科学。2006;9:901–906.[公共医学][谷歌学者]参见注释62.
••62.Kitamura T,Feng Y,Kitamula YI,Chua SC,Jr,Xu AW,Barsh GS,Rossetti L,Accili D.Forkhead蛋白FoxO1介导瘦素对食物摄入的Agrp依赖性作用。自然医学。2006;12:534–540.[公共医学][谷歌学者]61和62表明,在下丘脑弓状核中表达的FoxO1的组成活性形式通过直接诱导食欲肽的转录来增加食物摄入量和体重促尿相关蛋白(阿格普)和神经肽Y(Npy公司). 厌食激素胰岛素和瘦素通过抑制FoxO1抑制进食行为。FoxO1还抑制厌食肽原-黑素皮质素的表达(Pomc公司).
••63.Paik JH、Kollipara R、Chu G、Ji H、Xiao Y、Ding Z、Miao L、Tothova Z、Horner JW、Carrasco DR等。FoxO是血统受限的冗余肿瘤抑制因子,调节内皮细胞稳态。单元格。2007;128:309–323. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]这是第一项消融FoxO家族多个成员的研究体内并证明FoxO系列真诚地肿瘤抑制剂。急性缺失FoxO1、FoxO3福克斯O4在胸腺和内皮细胞中,导致胸腺淋巴瘤和血管瘤的年龄依赖性进展。本研究还进行了全面的转录组和启动子分析,以确定内皮细胞中许多新的FoxO靶基因,并表明链轮2是促进内皮细胞静止的FoxO因子的关键靶基因。
•64.Potente M、Urbich C、Sasaki K、Hofmann WK、Heeschen C、Aicher A、Kollipara R、DePinho RA、Zeiher AM、Dimmeler S。Foxo转录因子参与血管生成和产后新生血管生成。临床投资杂志。2005;115:2382–2392. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]这是一项综合研究,表明FoxO1和FoxO3(而非FoxO4)抑制培养细胞和体内本研究还表明,虽然FoxO家族的亚型确实具有重叠功能,但它们对靶基因也表现出不同的偏好,例如血管生成素2(安哥拉2).
65Massey AC,Zhang C,Cuervo AM。衰老和疾病中的伴侣介导自噬。当前最高开发生物。2006;73:205–235.[公共医学][谷歌学者]
•66.Sandri M、Sandri C、Gilbert A、Skurk C、Calabria E、Picard A、Walsh K、Schiaffino S、Lecker SH、Goldberg AL。Foxo转录因子诱导萎缩相关的泛素连接酶atogin-1并导致骨骼肌萎缩。单元格。2004;117:399–412. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]这项研究和67表明,FoxO1和FoxO3通过诱导泛素连接酶促进培养的肌管和肌纤维萎缩阿奇金-1/MAFbxMuRF1号机组为了应对饥饿、糖皮质激素和失神经。
•67.Stitt TN、Drujan D、Clarke BA、Panaro F、Timofeyva Y、Kline WO、Gonzalez M、Yancopoulos GD、Glass DJ。IGF-1/PI3K/Akt途径通过抑制FOXO转录因子防止肌肉萎缩诱导的泛素连接酶的表达。分子细胞。2004;14:395–403.[公共医学][谷歌学者]参见注释66.
68Hishiya A、Iemura S、Natsume T、Takayama S、Ikeda K、Watanabe K。一种在肌肉萎缩中起作用的新型泛素结合蛋白ZNF216。Embo J。2006;25:554–564. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
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••70.Mammucari C、Milan G、Romanello V、Masiero E、Rudolf R、Del Piccolo P、Burden SJ、Di Lisi R、Sandri C、Zhao J等。FoxO3控制体内骨骼肌的自噬。单元格元数据。2007;6:458–471.[公共医学][谷歌学者]这项研究和72表明,FoxO3通过诱导自噬相关基因,如生命周期3和Bcl2相关的自噬调节器Bnip3号机组FoxO3诱导的基因程序与小鼠骨骼肌对失神经和禁食的反应中诱导的基因分布相似。
71铃木N、本桥N、上泉A、福田S、吉村T、伊藤Y、青木M、宫崎骏Y、武田S。NO的产生通过神经元NOS的脱位导致悬浮诱导的肌肉萎缩。临床投资杂志。2007;117:2468–2476. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
••72.Zhao J,Brault JJ,Schild A,Cao P,Sandri M,Schiaffino S,Lecker SH,Goldberg AL。FoxO3通过萎缩肌肉细胞中的自噬/溶酶体和蛋白酶体途径协同激活蛋白质降解。单元格元数据。2007;6:472–483.[公共医学][谷歌学者]参见注释70.
73Li HH、Willis MS、Lockyer P、Miller N、McDonough H、Glass DJ、Patterson C.Atrogin-1通过泛素依赖性共同激活Forkhead蛋白抑制小鼠Akt依赖性心肌肥大。临床投资杂志。2007;117:3211–3223. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
74Juhasz G、Puskas LG、Komonyi O、Erdi B、Maroy P、Neufeld TP、Sass M。基因表达谱鉴定FKBP39是果蝇幼虫脂肪体内自噬的抑制剂。细胞死亡不同。2007;14:1181–1190. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
•75.Shinoda S、Schindler CK、Meller R、So NK、Araki T、Yamamoto A、Lan JQ、Taki W、Simon RP、Henshall DC。Bim调节可能决定海马在损伤性癫痫发作和颞叶癫痫发作后的脆弱性。临床投资杂志。2004;113:1059–1068. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]这项研究首次证明了在大鼠中诱导癫痫会导致FoxO1和FoxO3的激活,以及比姆和诱导神经细胞死亡体内普通磷酸酶抑制剂可阻断FoxO1和FoxO3的去磷酸化,并防止癫痫发作时神经元死亡。
76Luo X、Puig O、Hyun J、Bohmann D、Jasper H.Foxo和Fos调节紫外线照射下细胞死亡和存活之间的决定。Embo J。2007;26:380–390. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
77Wang MC、Bohmann D、Jasper H.JNK通过对抗细胞和组织对胰岛素信号的反应来延长寿命并限制生长。单元格。2005;121:115–125.[公共医学][谷歌学者]
78Peng SL.Foxo转录因子的免疫调节。自身免疫。2007;40:462–469.[公共医学][谷歌学者]
••79.Tothova Z、Kollipara R、Huntly BJ、Lee BH、Castrillon DH、Cullen DE、McDowell EP、Lazo-Kallanian S、Williams IR、Sears C等。FoxO是造血干细胞抵抗生理氧化应激的关键介体。单元格。2007;128:325–339.[公共医学][谷歌学者]这是首次通过消融来确定FoxO家族在维持造血干细胞(HSC)池中的关键作用的研究FoxO1、FoxO3福克斯O4在骨髓中。亚家族-缺乏的HSC表现出细胞循环增加、凋亡增加、ROS生成增加以及骨髓长期再生能力受损。服用抗氧化剂N-乙酰-L-半胱氨酸体内导致了亚家族-HSC表型缺陷。
•80.Lin L,Hron JD,Peng SL.叉头转录因子Foxo3a对NF-kappaB、Th活化和自身炎症的调节。免疫。2004;21:203–213.[公共医学][谷歌学者]这项研究表明福克斯O3烧蚀体内结果导致淋巴增生和多器官炎症。FoxO3的丢失与活化过度的辅助T细胞有关,其增殖增加,Th1和Th2细胞因子的产生增加是由于核因子-κB激活。
81Wyss-Coray T.阿尔茨海默病中的炎症:驱动力、旁观者还是有益反应?自然医学。2006;12:1005–1015.[公共医学][谷歌学者]
••82.宫本茂K、荒木KY、中谷K、荒野F、大久保K、山崎S、松冈S、宫本茂T、伊藤K、大村M等。FoxO3a对维持造血干细胞池至关重要。细胞干细胞。2007;1:101–112.[公共医学][谷歌学者]本研究报告,FoxO3单独通过促进静止和ROS解毒,在维持造血干细胞(HSC)池中发挥关键作用。有趣的是,由于HSC池在老年人中显著减少,因此该表型随着年龄的增长而进行福克斯O3使鼠标无效。
83Bouchard C、Lee S、Paulus-Hock V、Loddenkemper C、Eilers M、Schmitt CA。FoxO转录因子通过直接激活Arf抑制真菌驱动的淋巴腺病。基因发育。2007;21:2775–2787. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
84Hu MC,Lee DF,Xia W,Golfman LS,Ou-Yang F,Yang JY,Zou Y,Bao S,Hanada N,Saso H等。IkappaB激酶通过抑制叉头FOXO3a促进肿瘤发生。单元格。2004;117:225–237.[公共医学][谷歌学者]
85Yang JY、Zong CS、Xia W、Yamaguchi H、Ding Q、Xie X、Lang JY、Lai CC、Chang CJ、Huang WC等。ERK通过MDM2介导的降解抑制FOXO3a,从而促进肿瘤发生。自然细胞生物学。2008;10:138–148. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
86Castrillon DH、Miao L、Kollipara R、Horner JW、DePinho RA。转录因子Foxo3a抑制小鼠卵泡激活。科学。2003;301:215–218.[公共医学][谷歌学者]