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.2022年8月8日;7(15):e155010。
doi:10.1172/jci.insight.155010。

糖盏硫酸乙酰肝素裂解通过削弱剪切应激相关的AMPK/FoxO1信号传导促进内皮细胞血管生成素-2的表达

附属公司

硫酸乙酰肝素糖裂解通过损伤剪切应力相关AMPK/FoxO1信号通路促进内皮细胞血管生成素-2的表达

罗伯特·P·里希特等。 JCI洞察力. .

摘要

血管生成素-2(Angiopoietin-2,Ang-2)是脓毒症期间血管疾病的关键介质,血浆Ang-2水平升高与器官损伤评分和不良临床结局相关。我们之前已经观察到内皮细胞糖萼(EG)损伤的生物标记物与血浆Ang-2水平相关,这表明在全身炎症状态下EG损伤与Ang-2表达之间存在潜在的机制联系。然而,EG损伤后调节Ang-2表达的细胞信号机制尚不清楚。在当前的研究中,我们确定了作为EG侵蚀标志物的血浆硫酸乙酰肝素(HS)水平与脓毒症儿童和脓毒症小鼠模型中血浆Ang-2水平之间的时间相关性。其次,我们评估了剪切应力介导的5'-腺苷一磷酸活化蛋白激酶(AMPK)信号在人原发性肺微血管内皮细胞(HLMVEC)表面酶促HS裂解后Ang-2表达中的作用。我们发现,脓毒症儿童和小鼠的血浆HS水平在血浆Ang-2水平之前达到峰值。此外,我们发现AMPK信号受损有助于血流调节HLMVEC HS裂解后Ang-2表达增加,建立了脓毒症期间Ang-2上调的范式。

关键词:内皮细胞;糖生物学;蛋白酶;血管生物学。

PubMed免责声明

利益冲突声明

利益冲突:提交人声明,不存在利益冲突。

数字

图1
图1。脓毒症患儿血浆HS水平在PICU入院时达到峰值,并与入院24小时后血浆Ang-2水平相关。
(A类)与健康对照组(HC)(对照组,n个= 39; 脓毒症,0小时和24小时n个=38,48小时n个=33,72小时n个= 30). **<0.01,与对照组相比。(B类)与10名随机选择的对照组相比,10名脓毒症患者在PICU入院时的血浆肝素酶活性水平显著升高,与脓毒症儿童入院时血浆HS水平的升高相对应***< 0.001. (C类)败血症儿童在PICU入院时(0小时)测得的血浆HS水平与PICU住院24小时后血浆Ang-2水平之间的Spearman等级相关性。数据以具有四分位范围的中位数表示,并通过普通的单向Kruskal-Wallis方差分析(经Dunn多重比较检验校正)进行分析(A类)或Mann-WhitneyU型测试(B类).
图2
图2。败血症小鼠血浆HS水平在血浆Ang-2之前升高。
(A类)C57BL/6J WT 12-14周龄雄性小鼠24小时血浆Ang-2水平(n个=3–4个/组)*<0.05和***<0.001,与车辆相比。(B类)IL-6和(C类)亚致死剂量注射LPS 0.1 mg/kg或等量注射0.9%无菌盐水后2小时和24小时小鼠血浆中的HS水平(n个=每组3人)**< 0.01, ***< 0.001. (D类)IL-6(E类)HS和(如果)基线检查时(盲肠结扎和穿孔前24小时)和CLP后4小时和24小时,C57BL/6J WT 12-14周龄雄性小鼠血浆中Ang-2水平(n个= 7). *< 0.05, **< 0.01, ***< 0.001. 所有数据均以平均值±SEM表示,并由普通(A类)或重复测量(D类如果)通过Tukey多重比较测试或Student双面测试校正的单因素方差分析t吨测试(B类C类).
图3
图3。流量调节HLMVEC改变HS分布并抑制ANG2型mRNA表达。
(A类)静态培养48小时(顶行)或15 dyn/cm后,叠加20倍原始放大共聚焦显微照片,显示HLMVEC上或中HS(10E4表位)、F-actin、β-catenin和细胞核(DAPI)的染色2(最下面一行)。比例尺:100μm。(B类)静态培养48小时(左侧)或15 dyn/cm后,叠加60倍原始放大共聚焦显微照片,显示HS相对于HLMVEC细胞边缘的分布(由β-catenin标定)2(右侧面板)(带有DAPI覆盖)。比例尺:20μm。(C类)在更换培养基后的24小时静态培养过程中,HLMVEC融合单层的上清液Ang-2水平(ELISA)(n个=每组4-8人)***<0.001,而不是5分钟。(D类)相对HLMVECANG2型静态培养48小时后的基因表达(n个=9)或15达因/厘米2(n个= 10). ***< 0.001. 所有数据均以平均值±SEM表示,并通过Tukey多重比较检验修正的单因素方差分析进行分析(C类)或学生的双面t吨测试(D类).
图4
图4。HLMVEC顶端表面的HS有助于调节ANG2型基因和Ang-2蛋白在流动条件下的表达。
(A类)流动调节HLMVEC(15 dyn/cm)上HS染色(10E4表位)的代表性20倍原始放大荧光图像2,48小时),然后再增加4小时15 dyn/cm2在没有(左面板)或有(右面板)200 mU/mL HepIII的情况下暴露(带DAPI覆盖)。比例尺:100μm。(B类)相对ANG2型流动调节HLMVEC中的基因表达(15 dyn/cm2,48小时)暴露于15 dyn/cm2在没有或存在HepIII 200 mU/mL的情况下再延长24小时(n个=每组5-8人)**< 0.01. (C类)流动调节HLMVEC的相对上清液Ang-2水平(ELISA)(15 dyn/cm2,48小时)暴露于15 dyn/cm2在没有或存在HepIII 200 mU/mL的情况下再延长24小时(n个=每组4人)***< 0.001. 所有数据均以平均值±SEM表示,并由学生的双面分析t吨测试(B类C类).
图5
图5。流动调节HLMVEC的HS裂解降低剪切应力诱导的p-AMPK,促进Ang-2分泌。
(A类)静态培养48小时(顶部)或15 dyn/cm后对p-AMPK染色的HLMVEC代表性100倍原始放大荧光图像2(底部)(带DAPI覆盖)。比例尺:10μm。(B类)静态培养或15 dyn/cm后HLMVEC细胞质内p-AMPK的相对染色强度2(从8张代表性的40倍原始放大图像中,归一化为视野内的核数)***< 0.001. (C类)流动调节HLMVEC中p-AMPK染色的代表性100×表观荧光图像(15 dyn/cm2,48小时)暴露于15 dyn/cm2在没有(顶部)或存在(底部)200 mU/mL HepIII的情况下再延长24小时(带DAPI覆盖)。比例尺:10μm。(D类)流动调节HLMVEC细胞质内p-AMPK的相对染色强度(15 dyn/cm2,48小时)暴露于15 dyn/cm2在没有或存在HepIII 200 mU/mL的情况下再延长24小时(从8张具有代表性的40倍原始放大图像中,归一化为视野内DAPI染色细胞核的数量)**< 0.01. (E类)流动调节HLMVEC的相对上清液Ang-2水平(ELISA)(15 dyn/cm2,48小时)暴露于15 dyn/cm2和HepIII 200 mU/mL,在有或无AICAR 1 mM的情况下持续24小时**< 0.01. 所有数据均以平均值±SEM表示,并由学生的双面分析t吨测试(B类,D类、和E类).
图6
图6。流动条件HLMVEC HS切割后AMPK活性降低可能通过FoxO1激活增加Ang-2表达。
(A类)相对FOXO1系列KLF2号机组静态培养48小时或15 dyn/cm后HLMVEC的基因表达2(n个=每组3-4人)**< 0.01, ***< 0.001. (B类)相对FOXO1系列KLF2号机组流动调节HLMVEC中的基因表达(15 dyn/cm2,48小时)暴露于15 dyn/cm的额外24小时2在没有或存在HepIII的情况下200 mU/mL(n个=每组3-4人)**< 0.01. (C类)静态培养48小时(顶部)或15 dyn/cm后,对p-FoxO1染色的HLMVEC代表性100倍原始放大荧光图像2(底部)(带DAPI覆盖)。比例尺:10μm。(D类)静态培养或流动调节后HLMVEC细胞质中p-FoxO1的相对染色强度(来自8张代表性40倍原始放大图像,归一化为视野内的细胞核数量)***< 0.001. (E类)流动调节HLMVEC在额外暴露于15 dyn/cm的24小时后,p-FoxO1染色的代表性100倍原始放大外荧光图像2在没有(顶部)或存在(底部)200 mU/mL HepIII的情况下(使用DAPI覆盖)。比例尺:10μm。(如果)再暴露15 dyn/cm 24小时的流动调节HLMVEC细胞质中p-FoxO1的相对染色强度2在不存在或存在HepIII 200 mU/mL的情况下(来自8张代表性的40倍原始放大图像,标准化为视野内的细胞核数量)**< 0.01. p-AMPK的代表性100倍原始放大荧光图像(G公司)和p-FoxO1(H(H))静态培养的HLMVEC经AICAR 1 mM或载体处理24小时后染色(DAPI覆盖)。比例尺:10μm。()相对ANG2型FoxO1抑制剂AS1842856或载体处理24小时后静态培养的HLMVEC中的基因表达(n个=每组4人)***< 0.001. 所有数据均以平均值±SEM表示,并由学生的双面分析t吨测试(A类,B类,D类,如果、和).
图7
图7。脓毒症期间HS从EG中切割降低AMPK信号传导从而促进Ang-2表达的拟议机制。
使用BioRender软件生成的图形。

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