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.2022年6月9日;10(6):1364.
doi:10.3390/生物医学10061364。

非着丝粒微管组织中心发育不良引起的微管阵列减少导致Cx26-Null小鼠皮层器官畸形

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非着丝粒微管组织中心发育不良引起的微管阵列减少导致Cx26-Null小鼠皮层器官畸形

岳丘等。 生物医学. .

摘要

中的突变GJB2型基因约占所有非综合征遗传性耳聋病例的20-50%。在不同的Cx26-null小鼠模型中观察到Corti(OC)器官的畸形,这主要是由柱细胞(PC)的发育停滞引起的。然而,Cx26缺失导致PC发育异常的机制尚不清楚。在本研究中,在Cx26-null小鼠中观察了出生后不同天PCs的超微结构。耳蜗Cx26基因敲除导致远离中心体而非靠近中心体的非中心体微管组织中心(MTOCs)畸形组装。此外,异常非中心体MTOC发射的微管阵列显著减少。此外,我们发现Cx26-null组幼年PC中钙调蛋白调节的光谱相关蛋白2(camap2)的蛋白表达降低,camap2是一种与非中心体MT组织相关的微管负端靶向蛋白。我们的结果表明,耳蜗PC中非中心体MTOCs的畸形可能导致Cx26-null小鼠相应的MTs无法捕获和锚定,从而导致OC畸形。此外,这种异常的发育过程可能与发育早期Cx26缺失导致的camap2表达减少有关。

关键词:Cx26;GJB2;凸轮2;非中心体MTOCs;支柱单元。

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利益冲突声明

作者声明没有利益冲突。

数字

图1
图1
显示非中心体MTOCs和MT阵列在PC中的排列的示意图。表面小体(SSS)组装在PC的MTOCs处,并将MT末端连接到细胞表面。MTOC:微管组织中心,SSS:表面小体,MT:微管,IHC:内毛细胞,OHC:外毛细胞,IPC:内柱细胞,OPC:外柱细胞,P:内指骨细胞,DC:Deiters细胞。
图2
图2
Cx26-null小鼠PC细胞器降解受损和PC肥大。(A类D类)耳蜗中弯TEM横截面显示P10处IPCs和OPCs的超微结构;(E类,F类)P10时,对照组和Cx26-null组(每组3只小鼠中的9个IPC和9个OPC)中间转弯处Mt和GA变化的量化。GA的数量:在IPCs中为2.2±0.3(对照组)vs.7.2±0.8(Cx26 null),在OPCs中为0.9±0.4(对照组)vs.6.0±1.3(Cx26 null)。Mt:21.1±1.5(对照组)对IPCs中的30.6±3.3(Cx26 null),3.7±0.4(对照组)对OPCs中的13.6±1.2(Cx26 null)。(G公司J型)从耳蜗中弯获得的TEM横截面显示P18处IPC和OPC的超微结构。(K(K),L(左))P18时,对照组和Cx26-null组(每组3只小鼠中的9个IPC和9个OPC)中间转弯处Mt和GA变化的量化。GA的数量:在IPC中为0.8±0.4(控制)vs.6.3±0.8(Cx26空),在OPC中为1.3±0.6(控制)对1.6±0.5(Cx26-空)。Mt的数量:在IPC中为4.6±1.1(对照)对15.1±1.5(Cx26空),在OPC中为4.2±1.1(控制)对4.9±0.5(Cx25空)。顶部的小图像(比例尺:约10μm)显示了这些水平截面的评估水平。在Cx26-null组中观察到PC的肥大细胞体(黄色虚线)(D类,H(H),J型). 数据用SEM表示为平均值*第页< 0.05, **第页< 0.01, ****第页<0.0001,ns:无显著差异,TEM:透射电镜,P:出生后,IPC:内柱细胞,OPC:外柱细胞,Mt:线粒体,GA:高尔基体,ER:内质网。棒材:约1μm。
图3
图3
在Cx26-null组中,定位于远离中心体的非中心体MTOCs的减少MT阵列。(A类D类)乙酰化α-管蛋白在P10的免疫荧光染色。耳蜗尖转的三维重建显示了Corti器官的局部位置。(A类,C类)宽度:70.64μm,高度:70.63μm,深度:35.00μm。(B类,D类)宽度:70.64μm,高度:70.66μm,深度:21.00μm。白色箭头表示MT阵列锚定在远离中心体的非中心体MTOC上。(E类)P10时对照组和Cx26-null组(每组3只小鼠的18个IPC和18个OPC)IPC和OPC中乙酰化α-管蛋白免疫标记的定量。示意图(顶部)显示了PC的评估水平。乙酰化α-管蛋白的相对荧光强度:IPCs中1.00±0.09(对照)vs.0.50±0.07(Cx26 null),OPCs数据中1.00?.04(对照)对0.49?.07(Cx26 null)用SEM表示为平均值****第页< 0.0001; (F类)从耳蜗中弯获得的TEM横截面显示了P18处IPC和OPC中的MT阵列。示意图(左)显示了这些横截面的评估水平(右)。在Cx26-null组中观察到杂乱和缺失的MT(黄色虚线)(H(H),). P: 出生后,TEM:透射电镜,MT:微管,IHC:内毛细胞,OHC:外毛细胞,IPC:内柱细胞,OPC:外柱细胞,DC:Deiters细胞。棒材:约1μm。
图4
图4
MTs的正常组织,定位于中心体附近的非中心体MTOCs。(A类,B类)P10时耳蜗顶端乙酰化α-微管蛋白的免疫荧光染色。(C类)P10时对照组和Cx26-null组(每组3只小鼠的18个IPC和18个OPC)IPC和OPC中乙酰化α-管蛋白免疫标记的定量。评估的水平显示在图A、B中。乙酰化α-管蛋白的相对荧光强度:IPCs中1.00±0.03(对照)vs.1.03±0.06(Cx26 null),OPCs数据中1.00?.04(对照)对0.95±0.05(Cx26null)用SEM表示为平均值,ns:无显著差异。(D类G公司)从P18耳蜗中弯处获得的耳蜗横切面。示意图(中间)显示评估的(D类G公司). P: 出生后,TEM:透射电镜,MT:微管,IHC:内毛细胞,OHC:外毛细胞,IPC:内柱细胞,OPC:外柱细胞。棒材:约10μm(A类,B类),约1μm(D类G公司).
图5
图5
Cx26缺失小鼠PC非中心体MTOC的超微结构变化。(A类H(H))P18处PC的TEM纵断面。评估位置显示在示意图(顶部)中。远离中心体的非中心体MTOC的SSS用黄色虚线表示。在Cx26-null组中观察到SSS的松散纤维网(断裂的黄色线条,E类H(H)). IPC中内侧SSS缺乏纤维材料,用白色箭头表示。Cx26-null组中缺少由白色箭头突出显示的密集SSS簇。基底SSS的吞噬作用由一颗白星表示。(,J型)TEM纵切面显示P18中心体附近非中心体MTOCs的超微结构。(I1、I2、J1、J2)位置1和2的放大(,J型)分别显示指骨非中心体MTOCs的超微结构;(I3,J3)位置3的放大(,J型)分别显示了IPCs中顶端非中心体MTOCs的超微结构。中心粒用黑色箭头表示。SSS:表面小体,P:出生后,TEM:透射电镜,IHC:内毛细胞,OHC:外毛细胞,IPC:内柱细胞,OPC:外柱细胞,BM:基底膜。棒材:约1μm(A类H(H)),约5μm(,J型),约500 nm(I1,I2,J1,J2),约1μm(I3,J3)。
图6
图6
未发现非中心体MT成核和凤尾鱼相关蛋白的mRNA表达水平发生变化。(A类)P6耳蜗基底膜中GM130、Cdk5rap2、AKAP450、Camsap1、Camsap2、Camsap3、Mtcl1、Clasp1和Clasp2的mRNA表达水平。对照组和Cx26-null组(每组6只小鼠,第页> 0.05).
图7
图7
Cx26-null组PC中camap2蛋白表达水平降低。(A类,B类)P6耳蜗顶部camap2的免疫荧光染色。(C类,D类)P14尖耳蜗camap2的免疫荧光染色。(E类)P6时对照组和Cx26无效组的IPCs和OPCs(每组3只小鼠的18个IPCs和18个OPCs)中camsap2免疫标记的定量。评估的等级显示在绘图中(A类,B类). 凸轮2的相对荧光强度:在IPC中为1.00±0.10(对照)vs.0.46±0.06(Cx26 null),在OPCs数据中为1.000±0.13(对照)对0.32±0.06****第页< 0.0001. (F类)P14时对照组和Cx26-null组(每组5~6只小鼠的30~36个IPC和30~36只OPC)IPC和OPC中camap2的免疫标记定量。评估的等级显示在绘图中(C类,D类). 凸轮2的相对荧光强度:IPCs中为1.00±0.08(对照)vs.0.77±0.08;P: 出生后,IHC:内毛细胞,OHC:外毛细胞,IPC:内柱细胞,OPC:外柱细胞。棒材:约10μm(A类D类).
图8
图8
显示PC中正常和异常MT释放和捕获路径的示意图(以IPC为例)。MT成核发生在中心体。MT的负端被释放、成功捕获并锚定在中心体附近的非中心体MTOC,但未能捕获并锚定位在远离中心体的非中心体MTOC。MTOC:微管组织中心,MT:微管,IPC:内柱细胞。

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引用人

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工具书类

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