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.2022年2月21日;41(1):71.
doi:10.1186/s13046-021-02237-6。

circCUL2通过激活MyD88依赖性NF-κB信号通路在胰腺导管腺癌中诱导炎症CAF表型

附属公司

circCUL2通过激活MyD88依赖性NF-κB信号通路诱导胰腺导管腺癌的炎症CAF表型

郑尚友等。 实验临床癌症研究杂志. .

摘要

背景:胰腺导管腺癌(PDAC)的特征是癌细胞簇被致密的促结缔组织增生基质包围。然而,对于胰腺肿瘤微环境中基质细胞的异质性知之甚少。

方法:我们通过高通量测序在原代成纤维细胞中进行了circRNA谱分析,并通过qRT-PCR检测了PDAC组织中的circCUL2水平。随后,我们通过ELISA、流式细胞术、体外集落形成和transwell分析以及体内异种移植物模型,研究了circCUL2对炎症性癌症相关成纤维细胞(iCAF)激活、异质性和促肿瘤活性的影响。通过RNA下拉、FISH和荧光素酶报告子分析检测circCUL2对miR-203a-3p/MyD88/IL6的调节作用。

结果:我们发现circCUL2在癌相关成纤维细胞(CAF)中特异表达,但在癌细胞中不表达。此外,肿瘤组织中circCUL2的富集与PDAC患者预后不良显著相关。正常成纤维细胞(NFs)中circCUL2表达上调诱导iCAF表型,然后iCAF通过IL6分泌促进PDAC进展。此外,circCUL2转导的NFs在体内促进PDAC细胞的肿瘤发生和转移,而PDAC细胞被抗IL6抗体阻断。从机制上讲,circCUL2作为ceRNA发挥作用,并调节miR-203a-3p/MyD88/NF-κB/IL6轴,从而进一步激活胰腺癌细胞中的STAT3信号通路,诱导PDAC进展。

结论:我们发现,circCUL2/miR-203a-5p/MyD88/NF-κB/IL6轴有助于诱导iCAF,并为PDAC进展建立了独特的成纤维细胞生态位,这有助于制定策略,选择性靶向PDAC中促肿瘤CAF。

关键词:炎症性CAF;MyD88;核因子-κB;胰腺导管腺癌;圆形2。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明没有潜在的利益冲突。

数字

图1
图1
CAF中circRNA circCUL2的鉴定。 A类与NF相比,集群热图显示CAF中上调的circRNAs。选择折叠变化>2和p<0.05的circRNAs作为显著差异。 BqRT-PCR分析20对CAF和匹配NF中的circCUL2。C类显示circCUL2的基因组位置和剪接模式的示意图。通过sanger测序证实了circCUL2的后拼接连接(红色箭头)。 用收敛和发散引物扩增NFs和CAF的cDNA和gDNA。GAPDH作为阴性对照。 E类用RNase R处理的NFs和CAFs中circCUL2和线性CUL2的qRT-PCR分析F类qRT-PCR分析在指定时间点用放线菌素D处理的NF和CAF中的circCUL2和linear CUL2。 G公司RNA FISH检测circCUL2在胰腺癌组织中的定位。CK19显示癌细胞。比例尺,50μm。 小时与配对NAT相比,161例PDAC组织中circCUL2的相对表达。-J型circCUL2表达水平与LN状态的相关性分析()和肿瘤分期(J型).K(K)-L(左)circCUL2表达水平与OS相关性的Kaplan-Meier分析(K(K))和DFS(L(左))PDAC患者。以circCUL2表达的中位数作为截止值。(M)PDAC组织和正常组织中circCUL2的ROC曲线分析。数据表示为三个独立实验的平均值±标准差。**p<0.01和***p<0.001(双尾学生t检验)
图2
图2
circCUL2对于维持体外CAF的促肿瘤活性至关重要。 A类-BEdU分析用来自circCUL2-过表达NFs或circCUL2-沉默CAF的条件培养液处理的PANC-1细胞的增殖。比例尺:100μm。 C类-用条件培养基circCUL2-过表达NFs或circCUL2-沉默CAF处理的PANC-1细胞的集落形成分析。 E类-F类用条件培养基circCUL2-过表达NFs或circCUL2-沉默CAF处理的PANC-1细胞的划痕伤口愈合试验。比例尺:100μm。 G公司-小时Transwell分析用条件培养基circCUL2-过表达NFs或circCUL2-沉默CAF处理的PANC-1细胞的迁移和侵袭。比例尺:100μm。数据表示为三个独立实验的平均值±SD。**p<0.01和***p<0.001(双尾学生t检验)
图3
图3
circCUL2通过IL6调节CAF的表型可塑性并促进PDAC进展A类成纤维细胞受影响特征的基因集富集分析(GSEA)(circCUL2与对照)。B对照组circCUL2过度表达NF中炎症CAF(iCAF)信号的GSEA图。C类-qRT-PCR分析iCAF标记物(IL6、TNF-α和IL1α)和myCAF标记(Acta2和Axin2)在circCUL2过表达NFs中的表达。E类流式细胞术分析circCUL2过度表达NFs中PDGFRα和α-SMA的表达。 F类-小时circCUL2-过表达NFs和对照的代表性细胞因子阵列(n=3)。箭头指示细胞因子发生显著变化,qRT-PCR和ELISA进一步证实了这一点。-L(左)EdU分析(),菌落形成(J型)、划伤愈合分析(K(K))和transwell分析(L(左))条件培养基circCUL2-过表达NFs或抗IL6处理的PANC-1细胞。比例尺,100μm。 M(M)PANC-1细胞中STAT3和p-STAT3的western blot分析。数据表示为三个独立实验的平均值±SD。**p<0.01和***p<0.001(双尾学生t检验)
图4
图4
circCUL2过表达的NFs在体内促进PDAC的进展。 A类尾静脉注射用条件培养基处理的luc-PANC-1细胞4周后小鼠肺组织的代表性生物发光图像、肺和HE染色(每组n=8)。比例尺,100μm。 B各组的相对发光强度。 C类每肺转移结节数的直方图分析。 各组肺转移率(卡方检验)。 E类-F类显示了第30天的代表性生物发光图像和发光强度的直方图分析(n=6)。 G公司计算指定组的腹部转移率(卡方检验)。 小时各组尸检原位模型的代表性图像。红色箭头表示原发肿瘤;S、 脾脏;T、 原发肿瘤;M、 转移。 来自5只小鼠中2名患者的PDX图像。 (J型)指示组肿瘤生长曲线(n=5)。 K(K)治疗前后小鼠PDX中circCUL2水平的qRT-PCR分析。 L(左)PDGFRα和IL6的IHC代表性图像。比例尺,100μm。数据表示为平均值±SD。**p<0.01和***p<0.001(双尾学生t检验)
图5
图5
circCUL2是miR-203a-3p的海绵。 A类FISH检测CAFs中circCUL2的亚细胞定位。比例尺,50μm。 BqRT-PCR检测CAF细胞质和细胞核中circCUL2的表达。GAPDH和U6 RNA分别用作细胞质和核RNA标记。 C类CircInteractome预测的circCUL2潜在靶miRNAs的示意图。 -E类对NF和CAF中富含生物素标记的circCUL2探针的指示miRNAs进行qRT-PCR分析。 F类RNAlifold预测的circCUL2的二级结构图和可能与miR-203a-3p结合的位点。 G公司-小时荧光素酶报告子分析用于检测与miR-203a-3p模拟物共转染的circCUL2-WT和circCUL2-mut(miR-203a-3p结合位点突变)荧光素酶报告子的荧光素素酶活性。N.S.,无显著差异。 NFs和CAF中富含生物素标记miR-203a-3p探针的circCUL2的qRT-PCR分析。J型FISH检测CAF中circCUL2和miR-203a-3p的亚细胞定位。比例尺,50μm。数据表示为平均值±SD。**p<0.01***p<0.001
图6
图6
MyD88是miR-203a-3p的直接下游靶基因。 A类-B用来自miR-203a-3p沉默NFs或miR-203a-3p过表达CAF的条件培养基处理的PANC-1细胞的集落形成和跨孔分析。比例尺:100μm。C类-ELISA检测从miR-203a-3p沉默NF或miR-203a-3p过度表达CAF中检测条件培养基的IL6水平。 E类miR-203a-3p潜在下游靶基因的文氏分析,由miRTarbase、miRWalk和Tarbase预测。 F类-G公司对指定NF和CAF中筛选的miR-203a-3p下游靶基因进行qRT-PCR分析。 小时荧光素酶报告子分析用于检测与miR-203a-3p模拟物共转染的MyD88野生型(MyD88-wt)和miR-203a-3p结合位点突变的MyD86(MyD88-mut)荧光素酶报告子的荧光素素酶活性。N.S.,无显著差异。 -J型在NFs中circCUL2过度表达或miR-203a-3p沉默,或CAF中circCUL2沉默或miR-205a-3p过度表达后,对MyD88、p65、pp65、IKBα和p-IKBα表达进行Western blotting分析。GAPDH作为加载控制。数据表示为平均值±SD。**p<0.01和***p<0.001
图7
图7
circCUL2通过MyD88/NF-κB/IL6轴促进增殖和迁移。A类-联合转染NFs中的circCUL2过表达质粒和miR-203a-3p模拟物或CAF中的ciRCUL2-siRNA和miR-205-3p抑制剂,检测MyD88、p65、pp65、IKBα和p-IKBα的蛋白水平以及IL6的分泌水平E类-F类将NFs共转染的circCUL2过表达质粒与miR-203a-3p模拟物或CAF共转染circCUL2-siRNA和miR-203-3p抑制剂的条件培养液处理PANC-1细胞48小时。通过集落形成和跨阱实验检测PANC-1的增殖和迁移能力。 G公司-J型在NFs中联合转染circCUL2过表达质粒和MyD88 siRNA,或在CAF中转染ciRCUL2-siRNA和MyD88-过表达质粒,检测MyD88、p65、pp65、IKBα和p-IKBα的蛋白水平以及IL6的分泌水平K(K)-L(左)将NFs与MyD88 siRNA共转染的circCUL2过表达质粒或CAFs与MyD 88过表达质粒共转染circCUL2 siRNA的条件培养液处理PANC-1细胞48 h。通过集落形成和跨阱实验检测PANC-1的增殖和迁移能力。数据表示为平均值±标准差。**p<0.01和***p<0.001
图8
图8
PDAC中circCUL2/miR-203a-3p/IL6轴的临床意义。A类F类K(K)miR-203a-3p的相对表达(A类),MyD88型(F类)和IL6(G公司)161例PDAC组织与配对NAT比较B-C类G公司-小时L(左)-M(M)miR-203a-3p之间的关联分析(B-C类),MyD88型(G公司-小时)和IL6(L(左)-M(M))161例PDAC组织的表达水平、LN状态和肿瘤分期。 (-E类-J型N个-O(运行))miR-203a-3p相关性的Kaplan-Meier分析(-E类),我的D88(-J型)和IL6(N个-O(运行))161例PDAC患者的表达水平和OS或DFS。miR-203a-3p、MyD88和IL6表达的中位数用作截止值。 P(P)该模型揭示了circCUL2通过miR-203a-3p/MyD88/NF-κB通路激活iCAF表型和IL6生成促进PDAC恶性进展的机制。数据表示为平均值±SD。*p<0.05和***p<0.001

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