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.2021年2月4日;11(1):3164.
doi:10.1038/s41598-021-81838-9。

TonEBP调节椎间盘水通道蛋白1和5的高渗表达

附属公司

TonEBP调节椎间盘水通道蛋白1和5的高渗表达

J W挂钩等。 科学代表. .

摘要

椎间盘中央区域(IVD)富含蛋白多糖,导致高渗环境,并随每日负荷波动。髓核细胞(NP细胞)通过张力增强剂结合蛋白(TonEBP)的功能适应了这种环境,NP细胞已被证明表达几种水通道,称为水通道蛋白(AQP)。我们之前已经证明,AQP1和5在IVD变性期间降低。在这里,我们研究了高渗条件对AQP1和5的调节以及TonEBP在这一调节中的作用。AQP1和5基因表达在模拟健康IVD的渗透压的高渗条件下上调,而TonEBP基因敲除则使其消失。此外,TonEBP中AQP1和5免疫阳性率显著降低Δ/Δ与野生型对照组相比,E17.5小鼠表明AQP1和5的体内表达至少部分由TonEBP控制。AQP1和5的这种高渗调节可能有助于解释当NP的渗透压降低时,AQP1和5在退行性变过程中的表达降低。总之,这些数据表明,当两个AQP的表达降低时,在IVD退行性变期间,TonEBP调节的渗透压适应可能被破坏。

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作者声明没有相互竞争的利益。

数字

图1
图1
人NP细胞中AQP1和5基因表达的高渗调节。的规定()AQP1和(b条)用425 mOsm/kg培养基处理8-72小时后,在处理前单层培养至第2代的人NP细胞中AQP5基因的表达。的规定(c(c))AQP1和(d日)用425或525 mOsm/kg培养基处理48小时后,AQP5基因在处理前封装在藻酸盐珠中培养2周的人NP细胞中的表达。未经处理的对照组在标准培养基中的渗透压为325 mOsm/kg。使用氯化钠改变处理介质的渗透压,并使用冰点降低渗透压计(3320型渗透压计,先进仪器)进行测量。将来自3名患者的人NP细胞以技术三等分进行基因表达实验。使用Kruskal–Wallis检验确定的统计显著性* = 第页 ≤ 0.05.
图2
图2
高渗定位()AQP1和(b条)单层培养大鼠NP细胞中的AQP5。基因调控(c(c))AQP1和(d日)AQP5在高渗条件下。(e(电子))兔IgG同型对照。比例尺20µM。使用来自3只大鼠的混合NP细胞进行三次重复的基因表达实验。使用Kruskal–Wallis检验确定的统计显著性* = 第页 ≤ 0.05.
图3
图3
TonEBP敲除对大鼠NP细胞AQP1和5高渗调节的影响。在TonEBP敲除(shTonEBP)或无敲除对照(shCTR)4d后,将大鼠NP细胞暴露于对照(325 mOsm/kg)或高渗(525 mOmm/kg)处理24小时。敲除和治疗后,TonEBP的基因表达(),AQP1(b条)和AQP5(c(c))分别测定。结果归一化为325 mOsm/kg shCTR对照。使用来自3只大鼠的混合NP细胞进行三次重复的基因表达实验。使用Kruskal–Wallis检验确定的统计显著性* = 第页 ≤ 0.05.
图4
图4
AQP1&5在野生型和TonEBP基因敲除小鼠胚胎中的体内表达。显示AQP1的荧光IHC图像()和AQP5((f))野生型(WT)17.E小鼠脊髓染色(红色)。放大倍数增加突出了AQP1的定位(b条)和AQP5()位于髓核(NP)区域。显示AQP1的荧光IHC图像(c(c))和AQP5(小时)TonEBP敲除(Δ/Δ)17.E小鼠棘中的染色(红色)。放大倍数增加突出了AQP1的定位(d日)和AQP5()在Δ/Δ小鼠的髓核(NP)区域。含AQP1的NP面积百分比的量化(e(电子))和AQP5(j个)WT和Δ/Δ小鼠的染色。每个队列的中值由每列中的水平线表示。描述了纤维环(AF)和椎体(VB)区域(白色虚线;,c(c),(f),小时). 细胞核用DAPI(蓝色)复染。比例尺(,c(c),(f),小时) = 100微米。比例尺(b条,d日,,) = 50微米。使用五个WT和五个Δ/Δ小鼠胚胎进行IHC染色,每个胚胎至少有三个代表性圆盘。使用Kruskal–Wallis检验确定的统计显著性* = 第页 ≤ 0.05.
图5
图5
实验设计旨在研究NP细胞中AQP1和5的体外渗透调节,以及TonEBP对IVD组织中AQP和5的体内调节。

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