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.2020年11月;44(5):2152-2164.
doi:10.3892/或.2020.7757。 Epub 2020年9月7日。

检查点激酶-1抑制和足叶乙甙通过破坏同源重组DNA损伤修复对慢性粒细胞白血病细胞系K562表现出强大的协同抗癌作用

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通过抑制同源重组DNA损伤修复,检查点激酶‑1抑制剂和足叶乙甙对慢性粒细胞白血病K562细胞具有较强的协同抗癌作用

卓一凡等人。 及国际医学权威期刊. 2020年11月.

摘要

白血病是一种恶性血液病,由于化疗耐药,治疗效果较差。越来越多的证据证实,癌细胞DNA损伤修复能力的提高是获得性化疗耐药的主要机制。因此,联合化疗和DNA损伤修复途径抑制剂可能是治疗白血病的理想策略。检查点激酶1(CHK1)是DNA损伤反应(DDR)的重要组成部分,参与G2/M DNA损伤检查点。在本研究中,我们通过CCK‑8和彗星实验的结果证明,shRNA‑介导的CHK1沉默抑制了慢性粒细胞白血病(CML)细胞株K562的细胞增殖,并增强了足叶乙甙(VP16)的细胞毒作用。结果表明,shRNA诱导的CHK1沉默可以通过降低乳腺癌易感基因1(BRCA1)的表达来覆盖G2/M阻滞并损害同源重组(HR)修复。细胞没有时间,因此修复损伤的能力有限,因此在CHK1下调后对化疗更敏感。其次,我们测试了VP16与CCT245737(一种口服生物可利用的CHK1抑制剂)联合的治疗效果,并在K562细胞中观察到了强大的协同抗癌作用。此外,我们发现CCT245737可显著预防VP16急性暴露引起的G2/M期阻滞。有趣的是,CCT245737同时抑制了HR修复途径中最重要的成分BRCA1和Rad51。总之,这些结果表明CHK1可能是治疗CML的理想靶点,CCT245737应被视为候选药物。

关键词:CHK1;CCT245737;DNA损伤反应;足叶乙甙;慢性粒细胞白血病。

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数字

图1。
图1。
CHK1在K562细胞中表达较高。(A) 用qPCR检测KCL22和K562细胞中CHK1 mRNA水平相对于β-actin(负荷对照)水平,以CAM-191细胞作为对照组,以虚线表示。(B) KCL22和K562细胞中CHK1蛋白水平的Western blot分析。(C) 基于对KCL22和K562细胞之间B(***P<0.001)条带强度的密度分析,CHK1表达的相对定量标准化为GAPDH表达。CHK1,检查点激酶1。
图2。
图2。
shRNA-介导的CHK1敲除有效抑制细胞增殖。(A) qPCR检测感染三种不同慢病毒(shVector、shNC和shKD)的K562细胞中CHK1 mRNA水平与β-actin(负载控制)水平的关系。(B) Western blotting证实shCHK1(shKD)能有效抑制K562细胞中CHK1蛋白的表达。(C) 在Chk1敲除(shKD)后,通过CCK-8分析检测不同天数的细胞活力。测量OD450 nm值并绘制时间曲线(*P<0.05,**P<0.01)。检查点激酶1。shKD、Chk1-敲除细胞。
图3。
图3。
CHK1敲除增强VP16在K562细胞中的细胞毒性。(A) DSB标记γH2AX和总H2AX表达的Western blot分析。(B) 使用在正常条件下(CON)或用DMSO或VP16处理后用shVector、shNC或shCHK1(shKD)转导的细胞进行碱性彗星试验,以评估DNA损伤水平。shRNA沉默CHK1可增强VP16对DNA损伤的诱导作用。(C) B中所述碱性彗星试验中尾部力矩的图示(***P<0.001)。(D) 细胞凋亡标记物裂解PARP(c-PARP)的Western blot分析。shRNA-介导的CHK1抑制显著增加VP16诱导的细胞凋亡。(E) 在正常条件下(CON)和DMSO或VP16处理后,对感染三种不同慢病毒的K562细胞进行集落形成分析。(F) E中描述的菌落数量的图形表示(**P<0.01,***P<0.001)。NS,不显著;CHK1,检测点激酶1;DSB,双绞线断裂;VP16,依托泊苷。
图4。
图4。
shRNA-介导的CHK1击倒降低G2/K562细胞的M阻滞与HR修复。(A) 用二甲基亚砜(对照)或VP16处理后,检测shNC或shCHK1(shKD)转导的K562细胞的细胞周期分布。(B) G的统计分析2/M期百分比(%)如A所示(*P<0.05,**P<0.01)。(C) G蛋白的Western blot分析2/在正常条件下和DMSO或VP16存在下,感染携带shVector、shNC或shCHK1(shKD)慢病毒的K562细胞中的M阻遏标记物pS216CDC25c、pY15CDK1和总CDC25c和CDK1。(D) 在正常条件下和DMSO或VP16存在下,对感染携带shVector、shNC或shCHK1(shKD)慢病毒的K562细胞中有丝分裂标记pS10-H3和总H3进行Western blot分析。(E) 在正常条件下和用DMSO或VP16处理后,对shVector-、shNC-或shCHK1-转导(shKD)K562细胞中NHEJ通路相关蛋白Ku70、Ku80和连接酶4(Lig4)进行Western blot分析。(F) 通过密度分析显示E中Ku70(a)、Ku80(b)和Lig4(c)表达的相对定量;靶带强度归一化为GAPDH的强度。(G) 在正常条件下和用DMSO或VP16处理后,对shVector-、shNC-或shCHK1-转导(shKD)K562细胞中HR通路相关蛋白BRCA1、Rad50、MRE11和Rad51进行Western blot分析。(H) 通过密度分析对G中显示的BRCA1(a)、Rad50(b)、MRE11(c)和Rad51(d)表达进行相对定量;带强度归一化为GAPDH(*P<0.05)。NS,不显著。CHK1,检测点激酶1;HR,同源重组;VP16,依托泊苷。
图5。
图5。
CCT245737对VP16诱导的K562细胞CHK1和DNA损伤生物标记物水平变化的影响的表征。(A) 增加CCT245737浓度处理24小时后K562细胞CHK1总表达的Western blot分析(B)通过密度分析显示A中CHK1表达的相对定量;带强度归一化为GAPDH(*P<0.05)。(C) 用VP16(5µM)、CCT245737(5μM)或VP16和增加CCT24573浓度的组合处理K562细胞进行Western blot分析。CHK1在Ser296的自磷酸化和Ser317和Ser345的磷酸化被用作CHK1活性的生物标记,γH2AX被用作DNA损伤的生物标记。NS,不显著。CHK1,检测点激酶1;VP16,依托泊苷。
图6。
图6。
CCT245737使K562细胞对VP16敏感。(A) 增加CCT245737浓度治疗24小时后K562细胞存活率%的图形表示(B)使用指定药物治疗24小时之后,对K562电池进行Chou-Talalay分析后,(A)存活率%和(B)Fa-CI的图形表示伊马替尼处理的K562(K562-IM)细胞在用指定药物处理24小时后的Chou-Talalay分析后的Fa CI。(D)CAM191细胞在用指定药物处理24小时后的(a)生存率%和(b)Chou-Talalay分析后的Fa CI的图示。(E)进行碱性彗星试验,以评估用CCT245737(500 nM)和/或VP16(5µM)处理24小时的K562细胞的DNA损伤程度。(G) 用CCT245737(500 nM)和/或VP16(5µM)处理K562细胞24小时后,细胞凋亡标记物裂解PARP的Western blot分析。VP16与CCT24573结合可增加c-PARP水平。NS,不显著;VP16,依托泊苷;c-PARP,裂解聚(ADP-核糖)聚合酶。
图7。
图7。
CCT245737废除G2/M阻滞并降低K562细胞的HR修复能力。(A) CCT245737(500 nM,24小时)对急性VP16(5µM,1.5小时)处理的K562细胞的细胞周期阻滞的影响。(B) G的统计分析2/A中描述的M相百分比(%)(**P<0.01,***P<0.001)。(C) G蛋白的Western blot分析2/用CCT245737(500 nM)和/或VP16(5µM)处理24小时的K562细胞中的M阻滞标记pS216CDC25c、pY15CDK1和总CDC25c和CDK1CCT245737(500 nM)和/或VP16(5µM)处理K562细胞24小时后NHEJ通路相关蛋白Ku70、Ku80和连接酶4(Lig4)的Western blot分析。(G) CCT245737(500 nM)和/或VP16(5µM)处理24小时后K562细胞HR通路相关蛋白BRCA1、Rad50、MRE11和Rad51的Western blot分析(I)暴露于CCT245737(500 nM)和/或VP16(5µM)24 h后,伊马替尼处理的K562细胞中BRCA1和Rad51蛋白表达的Western blot分析。NS,不显著;HR,同源重组;CHK1,检测点激酶1;VP16,依托泊苷。
图8。
图8。
CHK1介导的G调节的示意图模型2/M细胞周期检查点和HR修复途径。BRCA1,乳腺癌基因易感性1;BARD1、BRCA1-相关环域蛋白1;CDC25c,细胞分裂周期蛋白25同源物C;CDK1,细胞周期蛋白依赖性激酶1;CHK1,检测点激酶1;Lig4,连接酶4。

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