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2019年6月;234(6):9052-9064.
doi:10.1002/jcp.27583。 Epub 2018年10月30日。

Foxm1是TGF-β通过Smad2/3在内皮细胞中诱导EndMT的关键驱动因子,并与蜗牛启动子结合

附属机构

Foxm1是TGF-β通过Smad2/3诱导内皮细胞EndMT的关键驱动因素,并与Snail启动子结合

帅松等。 J细胞生理学 2019年6月

摘要

内皮-间充质转化(EndMT)首次在心脏发育中被报道。最近的研究表明,EndMT也发生在心脏纤维化的进展中。在此,我们证明了Forkhead Box M1(Foxm1)转录因子在内皮细胞(EC)中转化生长因子β(TGF-β)诱导的EndMT中的关键作用以及可能的潜在分子机制。TGF-β刺激后在内皮细胞中诱导Foxm1。使用药理学和分子方法抑制Foxm1功能可以减弱TGF-β诱导的EndMT和细胞迁移。相反,慢病毒介导的Foxm1过度表达使EndMT继续进行,尽管内皮细胞中没有TGF-β。此外,我们发现Smad2/3信号通路和EndMT相关转录因子的激活在Foxm1介导的EndMT的发病机制中起着重要作用。进一步分析表明,Foxm1结合并增加了编码EndMT关键转录调控因子的蜗牛基因的启动子活性。总之,我们的结果确定FOXM1是TGF-β诱导的EndMT的驱动因素,并强调以FOXM1为靶点治疗心脏纤维化的潜力。

关键词:末端MT;Foxm1;转化生长因子-β1;心肌纤维化;蜗牛。

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数字

图1
图1
TGF-β1在培养的原代HUVEC中诱导EndMT。(a) 代表性相位光镜图像显示了接触TGF-β1(10纳克/毫升)48hr.比例尺 = 200微米。(b) 通过免疫荧光分析细胞内皮细胞(ECs)标记物CD31(红色)和成纤维细胞标记物波形蛋白(绿色)和细胞核(DAPI:蓝色)的表达。比例尺 = 100微米。(c) 通过qRT-PCR评估内皮细胞标记物CDH5、CD31和间充质/肌纤维母细胞标记物波形蛋白、ACTA2和FSP1的相对mRNA表达水平。(d) TGF‐β1治疗后,通过western blot分析测定VE‐钙粘蛋白:CD31:波形蛋白:α‐SMA和FSP1的蛋白质水平和密度定量48hr.数据表示为平均值±扫描电镜*第页 < 0.05, **第页 < 0.01:和***第页 < 0.001与相应的Ctrl组。α‐SMA:α‐平滑肌肌动蛋白;DAPI:4′:6-二氨基-2-苯基吲哚;EndMT:内皮-间充质转化;FSP1:成纤维细胞特异性蛋白-1;HUVECs:人脐静脉内皮细胞;mRNA:信使RNA;qRT-PCR:定量实时聚合酶链反应;TGF-β1:转化生长因子β1
图2
图2
TGF-β1治疗后Foxm1表达增加,Foxm1-抑制剂Sio A可减轻TGF-α1诱导的HUVEC EndMT。(a) 通过qRT‐PCR评估暴露于对照条件(未刺激)或TGF‐β1的48个HUVEC中FoxmRNA的表达hr.(b)在相同条件下通过western blot评估Foxm1蛋白水平。(c) 通过western blot评估VE‐钙粘蛋白:CD31:波形蛋白、α‐SMA和FSP1的相对蛋白水平。(d) d是c的定量分析。数据表示为平均值±扫描电镜*第页 < 0.05, **第页 < 0.01:和***第页 < 0.001与相应的Ctrl组。# 第页与相应TGF-β1组相比<0.05。α‐SMA:α‐平滑肌肌动蛋白;EndMT:内皮-间充质转化;Foxm1:叉头箱M1;FSP1:成纤维细胞特异性蛋白-1;HUVECs:人脐静脉内皮细胞;mRNA:信使RNA;qRT-PCR:定量实时聚合酶链反应;Sio A:丝裂霉素A;TGF-β1:转化生长因子β1
图3
图3
TGF-β1治疗后Foxm1表达增加,Foxm1-抑制剂Sio A可减轻TGF-α1诱导的MAEC EndMT。(a) 通过qRT‐PCR评估暴露于对照条件(未刺激)或TGF‐β1 48hr.(b)在相同条件下通过western blot评估Foxm1蛋白水平。(c) 通过western blot评估VE‐钙粘蛋白:CD31:波形蛋白、α‐SMA和FSP1的相对蛋白水平。(d) d是c的定量分析。数据表示为平均值±扫描电镜*第页 < 0.05, **第页 < 0.01:和***第页 < 0.001与相应的Ctrl组。# 第页与相应的TGF-β1组相比,<0.05。α‐SMA:α‐平滑肌肌动蛋白;EndMT:内皮-间充质转化;Foxm1:叉头箱M1;FSP1:成纤维细胞特异性蛋白-1;MAECs:小鼠主动脉内皮细胞;mRNA:信使RNA;qRT-PCR:定量实时聚合酶链反应;Sio A:丝裂霉素A;TGF-β1:转化生长因子β1
图4
图4
用shRNA沉默Foxm1可减弱TGF-β1诱导的HUVEC末端MT和迁移。(a,b)通过qRT-PCR和western blot验证了Foxm1三个不同干扰序列的敲除效率。(c) 通过western blot评估VE‐钙粘蛋白、CD31、波形蛋白、α‐SMA和FSP1的相对蛋白水平。(d) d是c.(e)细胞的定量分析,通过免疫荧光分析CD31(红色)、波形蛋白(绿色)和细胞核(DAPI:蓝色)的表达。比例尺:200微米。(f) Foxm1沉默可改善TGF-β1诱导的细胞迁移。比例尺,50微米。(g) 通过western blot评估磷酸化PTK2的表达,并相对于总PTK2表达进行量化。数据表示为平均值±扫描电镜*第页 < 0.05, **第页 < 0.01与相应的Ctrl组相比。# 第页与相应的TGF-β1组相比,<0.05。α‐SMA,α‐平滑肌肌动蛋白;DAPI,4′,6-二氨基-2-苯基吲哚;EndMT:内皮-间充质转化;Foxm1:叉头箱M1;FSP1:成纤维细胞特异性蛋白-1;HUVECs:人脐静脉内皮细胞;PTK2:蛋白酪氨酸激酶2;qRT-PCR:定量实时聚合酶链反应;shRNA:短发夹RNA;TGF-β1:转化生长因子β1
图5
图5
TGF-β2处理后Foxm1表达增加,用shRNA沉默Foxm1-可以减轻TGF-α2诱导的HMECs EndMT。(a) 通过qRT-PCR评估暴露于对照条件(未刺激)或TGF-β2的HMEC中Foxm1 mRNA表达48hr.(b)在相同条件下通过western blot评估Foxm1蛋白水平。(c) 通过western blot评估VE‐钙粘蛋白、CD31:波形蛋白:α‐SMA:和FSP1的相对蛋白水平。(d) d是c的定量分析。数据以平均值表示±扫描电镜*第页 < 0.05, **第页 < 0.01,以及***第页 < 0.001与相应的Ctrl组。# 第页与相应的TGF-β2组相比<0.05。α‐SMA,α‐平滑肌肌动蛋白;EndMT:内皮-间充质转化;Foxm1:叉头箱M1;FSP1:成纤维细胞特异性蛋白-1;HMECs:人微血管内皮细胞;信使核糖核酸:信使核糖核酸;qRT-PCR:定量实时聚合酶链反应;shRNA:短发夹RNA;TGF-β2,转化生长因子β2
图6
图6
Foxm1过度表达可诱导HUVEC中的EndMT。(a,b)对转染Foxm1过表达质粒的细胞中Foxm1的表达进行qRT-PCR和western blot分析hr.(c)通过western blot检测转染FOXM1过表达质粒的细胞中VE‐钙粘蛋白、CD31:波形蛋白、α‐SMA:和FSP1的相对蛋白水平,以检测48个hr.(d)d是c的定量分析。数据表示为平均值±扫描电镜*第页 < 0.05: **第页 < 0.01与相应的Ctrl组相比。α‐SMA:α‐平滑肌肌动蛋白;EndMT:内皮-间充质转化;Foxm1:叉头箱M1;FSP1:成纤维细胞特异性蛋白-1;HUVECs:人脐静脉内皮细胞;OE:过度表达;qRT-PCR:定量实时聚合酶链反应
图7
图7
Foxm1调节EndMT相关转录因子的表达,并可直接激活Snail1启动子。(a,b)HUVEC中具有代表性的EndMT相关转录因子mRNA(a)和蛋白质(b)水平。(c) 所示各组HUVEC中p‐Smad2/3和总Smad2/3蛋白水平的代表性western blot和定量结果。(d) 在TGF‐β1治疗后,Foxm1直接与Snail1启动子区结合。数据表示为平均值±扫描电镜*第页 < 0.05, **第页 < 0.01,以及***第页 < 0.001与相应的Ctrl组。# 第页与相应的TGF-β1组相比,<0.05。EndMT:内皮-间充质转化;Foxm1:叉头箱M1;人脐静脉内皮细胞;mRNA、信使RNA;qRT-PCR:定量实时聚合酶链反应;TGF-β1:转化生长因子β1
图8
图8
工作假设的示意图。Foxm1通过Smad2/3信号通路促进内皮细胞中TGF-β1诱导的EndMT过程,并直接结合和诱导蜗牛基因:一种EndMT促进转录因子。内皮细胞:内皮细胞;EndMT:内皮-间充质转化;Foxm1:叉头箱M1;Sio A:丝裂霉素A;转化生长因子-β;TGF-βR:转化生长因子β受体;TSS:转录起始位点

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