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.2018年9月;42(3):1508-1516.
doi:10.3892/ijmm.2018.3701。 Epub 2018年5月22日。

低氧诱导CXCR4表达通过激活HIF‑1α促进滋养层细胞迁移和侵袭

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低氧诱导CXCR4表达通过激活HIF‑1α促进滋养层细胞迁移和侵袭

詹章等。 国际分子医学杂志. 2018年9月.

摘要

胎盘最初在低氧环境中发育,直到妊娠第8至10周,低氧水平是调节滋养层细胞迁移和侵袭的关键因素。CXC趋化因子受体4(CXCR4)在肿瘤细胞中被缺氧转录激活。然而,CXCR4是否参与缺氧诱导因子(HIF)‑1α依赖性滋养层细胞在生理性缺氧环境(3%O2)中的迁移和侵袭,尚需进一步研究。在本研究中,研究了CXCR4在妊娠早期绒毛中的表达,以及滋养层细胞对缺氧的反应,以及CXCR4和HIF-1α在滋养层细胞迁移和侵袭中的作用。与正常足月胎盘相比,CXCR4在妊娠早期绒毛中显著升高。在体外,暴露于3%O2的JEG3细胞中,CXCR4在mRNA和蛋白水平的表达以时间依赖性的方式增加,JEG3的迁移和侵袭能力上调。此外,通过转染CXCR4特异性小干扰(si)RNA来敲除CXCR4,可以减少暴露于3%O2的JEG3细胞的迁移和侵袭。此外,针对HIF‑1α的合成siRNA显著抑制了暴露于3%O2的JEG3细胞中CXCR4的表达,而pcDNA‑HIF-1α显著增加了CXCR4表达。这些结果表明,低氧诱导的CXCR4表达通过激活HIF‑1α促进滋养层细胞迁移和侵袭,这在胎盘形成过程中至关重要。

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图1
图1
CXCR4在妊娠早期绒毛中高水平表达。(A) 通过逆转录定量聚合酶链反应分析检测CXCR4在早期妊娠绒毛和正常足月胎盘中的mRNA表达。**P<0.01。(B) 在绒毛滋养层细胞中检测到CXCR4的免疫反应性。与正常足月胎盘相比,妊娠早期绒毛中CXCR4的免疫染色增强。比例尺=100µm.CXCR4,CXC趋化因子受体4。
图2
图2
缺氧诱导JEG3细胞CXCR4的表达。(A) 通过逆转录定量聚合酶链反应分析检测暴露于3%O的JEG3细胞中CXCR4 mRNA的表达2在指定的时间段内(**P<0.05)。(B) western blotting分析HIF-1α和CXCR4蛋白水平。β-actin作为内部对照。CXCR4、CXC趋化因子受体4;HIF-1α,低氧诱导因子1α。
图3
图3
缺氧促进JEG3细胞的侵袭和迁移。JEG3细胞暴露于21或3%的O2评估细胞迁移/侵袭。(A) ×200放大倍数下外膜上迁移/入侵JEG3细胞的代表性图像。(B) 数据表示为平均值±标准偏差。*P<0.05。
图4
图4
CXCR4敲低可降低低氧诱导的JEG3细胞侵袭和迁移。通过(A)逆转录定量聚合酶链反应和(B)western blot分析分析siRNA对JEG3细胞CXCR4的特异性敲除(**P<0.01)。(C) 转染NC-siRNA或siCXCR4,然后暴露于21或3%O的JEG3细胞的迁移和侵袭2在放大×200倍的情况下,通过Transwell分析进行评估。(D) 迁移或入侵细胞的数量表示为平均值±标准偏差(*siCXCR4与NC-siRNA相比P<0.05;#与21%O下的NC-siRNA相比,P<0.052). CXCR4、CXC趋化因子受体4;小干扰RNA;NC,阴性对照。
图5
图5
CXCR4的表达由HIF-1α介导。(A) 用siHIF-1α或NC-siRNA转染JEG3细胞,然后在3%O培养基中培养,其HIF-1 A和CXCR4的mRNA和(B)蛋白水平2分别用RT-qPCR和western blot分析48 h(*P<0.05**P<0.01)。(C) 转染NC-siRNA或siHIF-1α,然后暴露于3%O的JEG3细胞的迁移和侵袭2使用Transwell分析在放大×200倍的条件下进行评估。(D) 迁移和侵入数据以平均值±标准差表示(**P<0.01)。(E) 转染pcDNA-NC或pcDNA-HIF-1α,然后暴露于3%的O2分别用RT-qPCR和western blot分析48 h(*P<0.05**P<0.01)。(G) 转染pcDNA-NC或pcDNA-HIF-1α,然后暴露于3%O的JEG3细胞的迁移和侵袭2使用Transwell分析在放大×200倍的条件下进行评估。(H) 迁移和侵入数据以平均值±标准差表示(*P<0.05**P<0.01)。CXCR4、CXC趋化因子受体4;HIF-1α,低氧诱导因子1α;逆转录定量聚合酶链式反应;小干扰RNA;NC,阴性对照。

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引用人

工具书类

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