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.2018年6月;17(2):511-523.
doi:10.1177/1534735417696702。 Epub 2017年3月9日。

槲皮素通过调节NF-κb、PKC-δ、ERK1/2和AMPKα阻断uPA/uPAR功能对胃癌细胞的抗转移作用

附属公司

槲皮素通过调节NF-κb、PKC-δ、ERK1/2和AMPKα阻断uPA/uPAR功能对胃癌细胞的抗转移作用

海丽等。 Integr癌症治疗. 2018年6月.

摘要

胃癌是一种恶性肿瘤,发生转移后几乎没有有效的治疗方案。槲皮素(Qu)的摄入与GC的发病率降低和发展缓慢有关,可能是由于其抗增殖和凋亡作用,但Qu是否能抑制转移活性尚不清楚。尿激酶纤溶酶原激活物(uPA)/uPA受体(uPAR)系统在肿瘤转移中起重要作用。在本研究中,我们测量了uPA活性和uPAR在GC和癌周组织中的表达,并研究了uPAR表达与各种GC细胞系的迁移和侵袭活动之间的相关性。在评估细胞转移之前,用10μM Qu处理GC BGC823和AGS细胞72小时,并单独或联合敲除uPAR。结果表明,胃癌组织中uPA活性和uPAR表达高于癌周组织。GC细胞系的迁移和侵袭活性与uPAR表达呈正相关。Qu处理降低了BGC823和AGS细胞的迁移和侵袭,同时降低了uPA和uPAR蛋白的表达。Qu治疗和uPAR敲除均降低基质金属蛋白酶-2和-9的活性,并阻断Pak1-Limk1-cofilin信号传导。Qu治疗与NF-κb、PKC-δ和ERK1/2的抑制以及AMPKα的激活有关。NF-κb、PKC和ERK1/2的特异性抑制剂和AMPKα激活剂抑制GC细胞中uPA和uPAR的表达。总的来说,Qu通过阻断uPA/uPAR功能和调节NF-κb、PKC-δ、ERK1/2和AMPKα对GC细胞显示出抗转移作用。这表明曲是一种很有希望的抗胃癌转移的药物。

关键词:胃癌;转移;槲皮素;uPA受体;尿激酶纤溶酶原激活剂。

PubMed免责声明

利益冲突声明

利益冲突声明:作者声明,与本文的研究、作者身份和/或出版没有潜在的利益冲突。

数字

图1。
图1。
GC和癌旁组织中的uPA活性、uPAR表达和Pak1磷酸化。(A) 使用商业检测试剂盒检测胃癌(GC)和癌旁组织(n=35)中的uPA活性。与癌旁组织相比,GC组织中uPA活性显著升高。(B) 典型的Western blot图像显示了GC和癌旁组织中uPAR和p-Pak1的相对蛋白水平(n=35)。uPAR和p-Pak1在GC组织中的表达高于癌旁组织*P(P)<0.05与对照组。癌症、GC组织;GC正常、癌周组织;尿激酶纤溶酶原激活剂;uPAR,uPA受体;Pak1,p21-激活激酶-1;GAPDH,甘油醛-3-磷酸脱氢酶。
图2。
图2。
uPAR和p-Pak1蛋白水平与GC细胞迁移和侵袭的相关性。(A) GC细胞系(包括MGC803、GC7901、BGC823、AGS和N87)以及胃粘膜细胞系GES-1中的uPAR和p-Pak1蛋白水平。(B) 伤口愈合试验显示GC和胃粘膜细胞的迁移。(C) Transwell小室分析显示GC和胃粘膜细胞浸润。GC细胞系的迁移和侵袭与uPAR和p-Pak1表达呈正相关。代表3个独立测试数据平均值的条形图。不共享公用字母的横线不同(P(P)<.05)。uPAR,uPA受体;Pak1,p21-激活激酶-1;GAPDH,甘油醛-3-磷酸脱氢酶。
图3。
图3。
Qu治疗抑制GC细胞活性,可能与uPAR无关。用10μM Qu处理GC BGC823和AGS细胞72小时,以确定Qu对细胞活力的影响。在Qu存在或不存在的情况下,进行shRNA-介导的uPAR敲除,以确定Qu对细胞活力的抑制作用是否与uPA/uPAR功能有关。采用MTT法评估细胞活力。接触10μM Qu 72小时后,GC BGC823和AGS细胞活力显著降低。uPAR敲除不能削弱细胞活力。代表5个独立测试数据平均值的条形图*P(P)<0.05与对照组。Qu,槲皮素;非靶向siRNA,用非靶向小iRNA转染细胞;ShRNA-uPAR、uPAR通过ShRNA-uPAR转染被敲除;在Qu治疗前,ShRNA-uPAR+Qu,uPAR通过ShRNA-uPAR转染被敲除。
图4。
图4。
用Qu和uPAR敲除抑制GC细胞的转移活性。用10μM Qu处理GC BGC823和AGS细胞72小时。shRNA-介导的uPAR敲除在存在或不存在Qu治疗的情况下进行。(A) 伤口愈合试验显示BGC823和AGS细胞在各种治疗后迁移。(B) Transwell小室分析显示BGC823和AGS细胞在不同处理后侵袭。(C) 明胶酶谱分析显示不同处理后BGC823和AGS细胞中MMP-2和MMP-9的活性。Qu处理和uPAR敲除可单独或联合降低BGC823和AGS细胞的迁移和侵袭。代表3个独立测试数据平均值的条形图*P(P)<0.05**P(P)<0.01与对照组。Qu,槲皮素;ShRNA-uPAR、uPAR通过ShRNA-uPAR转染被敲除;在Qu治疗前,ShRNA-uPAR+Qu,uPAR通过ShRNA-uPAR转染被敲除。
图5。
图5。
Qu对uPA、uPAR及其下游靶点的表达具有抑制作用。用10μM Qu处理GC BGC823和AGS细胞72小时。shRNA-介导的uPAR敲除在存在或不存在Qu治疗的情况下进行。采用蛋白质印迹法测定不同处理后所示蛋白的表达水平。Qu治疗和uPAR敲除均降低MMP-2和-9活性,并阻断Pak1-Limk1-cofilin信号传导。代表3个独立测试数据平均值的条形图*P(P)<0.05**P(P)<0.01与对照组。Qu,槲皮素;ShRNA-uPAR、uPAR通过ShRNA-uPAR转染被敲除;ShRNA uPAR+Qu,uPAR在Qu处理前通过ShRNA uPAR转染被敲除;尿激酶纤溶酶原激活剂;uPAR,uPA受体;Pak1,p21-激活激酶-1;GAPDH,甘油醛-3-磷酸脱氢酶。
图6。
图6。
Qu对uPA/uPAR系统的抑制可能由NF-κb、PKC-δ、ERK1/2和AMPKα介导。(A) 用10μM Qu处理72小时后,用Western blotting法检测BGC823和AGS细胞中NF-κb(p65)、PKC-α、PKC--β、PKCδ、ERK1/2和AMPKα的磷酸化水平。Qu治疗与NF-κb、PKC-δ和ERK1/2活性的抑制以及AMPKα的激活有关。(B) 使用NF-κB(p65)、PKC和ERK1/2的特异性抑制剂以及AMPKα的激活剂来评估它们在uPA和uPAR调节中的作用。BGC823和AGS细胞与9μM JSH-23、10 nM Go6983、12μM SCH772984或4.5μM A-769662孵育72小时。与Qu类似,NF-κb、PKC和ERK1/2的特异性抑制剂以及AMPKα激活剂抑制GC细胞中uPA和uPAR的表达。代表3个独立测试数据平均值的条形图*P(P)<0.05**P(P)< .01,#P(P)< .05,##P(P)<0.01与对照组。Qu,槲皮素;尿激酶纤溶酶原激活剂;uPAR,uPA受体;GAPDH,甘油醛-3-磷酸脱氢酶;核因子-κb;蛋白激酶C;ERK1/2,细胞外信号调节激酶1/2;AMPKα,腺苷一磷酸活化蛋白激酶α;NF-κb(−),抑制剂对NFκb的抑制;PKC(−),抑制剂对PKC的抑制作用;ERK1/2(−),ERK1/2抑制剂抑制;AMPKα(+),用活化剂激活AMPK。
图7。
图7。
Qu抑制GC转移的可能机制。Qu抑制uPA/uPAR功能可能是通过抑制NF-κb、PKC-δ和ERK1/2以及AMPKα的激活。uPA/uPAR系统通过调节MMPs、Pak1/Limk1/cofilin信号通路以及FAK、TGF-β和VEGF,参与GC转移所必需的多种过程,包括ECM降解细胞运动、细胞形态变化和血管生成。因此,Qu抑制uPA/uPAR功能,导致GC转移抑制。Qu,槲皮素;尿激酶纤溶酶原激活剂;uPAR,uPA受体;基质金属蛋白酶;Pak1、p21活化激酶-1;FAK,粘着斑激酶;血管内皮生长因子;转化生长因子-β;核因子-κb;蛋白激酶C;ERK1/2,细胞外信号调节激酶1/2;AMPKα,腺苷一磷酸活化蛋白激酶α。

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