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2016年3月1日;14(8):1829-40.
doi:10.1016/j.celrep.2016.01.060。 Epub 2016年2月18日。

主轴组件检查点对APC/C活性基因降低的人类细胞的生存能力不是必需的

附属公司

主轴组件检查点对APC/C活性基因降低的人类细胞的生存能力不是必需的

托马斯·怀尔德等。 单元格代表

摘要

后期增殖复合体/环体(APC/C)和纺锤体组装检查点(SAC)抑制APC/C,是有丝分裂时间和遗传物质忠实分裂的重要决定因素。已知APC/C的激活依赖于两种APC/C相互作用的E2泛素结合酶-UBE2C和UBE2S。我们表明,人类细胞中的APC/C活性是通过三种E2(即UBE2C、UBE2S和UBE2D)的组合使用来调节的。UBE2C和UBE2S单独或联合的基因缺失导致APC/C功能的差异性降低,并使细胞对UBE2D缺失敏感。APC/C活性的降低导致开关样中晚期转换的丢失,并显著地使细胞对MPS1的化学抑制和MAD2的基因消融不敏感,这两者对SAC至关重要。这些结果为APC/C活性的调节提供了见解,并证明SAC的重要性是由APC/C的力量决定的。

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数字

无
图形摘要
图1
图1
APC/C-相关E2s的遗传分析确定UBE2S在有丝分裂K11-连接泛素化(A)产生中的UBE2C-独立功能UBE2S公司-以及UBE2C公司-敲除HCT116细胞。Western blot分析显示所示细胞系中UBE2S和UBE2C水平。(B) 通过延时微分干涉对比(DIC)显微镜测量指示细胞中NEBD到后期的发病时间。每个圆代表一个单元格;开圆圈表示完成有丝分裂的细胞,红色圆圈表示在规定时间内没有退出有丝分裂。红线表示NEBD到后期发病时间的中位数,这在各个数据点的顶部注明。对于每个细胞系,至少从四个独立实验中分析了145个细胞。p值通过Mann-Whitney试验计算。(C) 用指定浓度的proTAME和NEBD处理细胞,然后用活细胞成像(DIC)测量后期开始时间,如(B)所示。从两个独立的实验中分析了至少70个细胞。中位数用红线表示,并标注在数据点上方。所示条件的p值显示在顶部(ns,p≥0.01)。(D) 所示细胞系非同步和有丝分裂富集细胞中K11-连接的多泛素链的分析。CCNB1水平表明有丝分裂细胞富集。
图2
图2
APC/C特异性E2s基因缺失揭示UBE2D在APC/C激活中的体内功能(A)四独立ΔUBE2S公司ΔUBE2C公司产生细胞克隆并通过免疫印迹证实UBE2S和UBE2C的缺失。(B) NEBD至后期发作时间(Δ)UBE2S公司ΔUBE2C公司电池,如图1B所示进行分析。对于每个细胞系,从四个独立实验中分析了至少87个细胞。(C) 用指定浓度的proTAME和NEBD处理细胞,然后用活细胞成像(DIC)测量后期开始时间。从两个独立的实验中分析了至少55个细胞。红线表示NEBD到后期的中间时间,如数据点上方所示。所示条件的p值显示在顶部(ns,p≥0.01)。(D) NEBD到发病后期的时间分析如图1B所示。拍摄前24小时,WT和指示ΔUBE2S公司ΔUBE2C公司用靶向小干扰RNA(siRNAs)处理细胞克隆ube2天(+)或对照(−)siRNA。对于每种情况,从三个独立的实验中分析了至少113个细胞(ns,p≥0.01)。(E) 用靶向UBE2D(+)或对照siRNA(−)的siRNAs处理细胞,并用活细胞成像(DIC)测量NEBD到发病后期的时间。从三个独立实验中分析了至少95个细胞。中位数用红线表示,中位数时间显示在数据点上方。所示条件的p值显示在顶部(ns,p≥0.01)。(F) 所示细胞系的CCNB1降解曲线。CCNB1的一个等位基因被Venus标记,并通过活细胞成像分析CCNB1-Venus的降解。时间=0设置为CCNB1退化开始前的两帧,这被定义为CCNB1-Venus强度下降>4%。曲线描述了分析细胞的平均CCNB1-Venus荧光强度(从时间=0到后期开始后的五个时间帧),单侧误差条显示SD。(G)CCNB1降解率是根据(F)中所示的实验计算的。确定了两个时间点之间CCNB1-Venus强度最大差异(归一化为NEBD)周围的最佳线性拟合,并绘制了相应的斜率。平均值标注在数据点顶部,并用红线表示,SDs显示为垂直线。通过t检验计算p值(ns,p≥0.01)。另请参见图S1–S3。
图3
图3
UBE2S和UBE2C联合呈现SAC对细胞活力的重要性(A)NEBD,通过延时显微镜(DIC)测量诺康唑治疗后指示细胞系的后期开始时间(30 ng/ml)。每个圆圈代表单个细胞(红色圆圈表示在规定时间内没有退出有丝分裂的细胞)。从两个独立的实验中分析了至少61个细胞。中位数用红线表示,并标注在数据点上方。所示比较的p值通过Mann-Whitney检验计算(ns,p≥0.01)。(B) 在存在或不存在0.5μM逆转的情况下,对所示细胞系进行生长分析。使用基于发光的检测ATP水平的分析在指定时间评估细胞增殖。基于每个时间点至少六个测量值,为每个细胞系和条件绘制局部回归曲线。(C) 的生成UBE2S公司,UBE2C公司、和摩洛哥迪拉姆2三敲除细胞。免疫印迹证实亲代ΔUBE2S公司ΔUBE2C公司#3和三敲除克隆。(D) 有丝分裂声型的比较摩洛哥迪拉姆2-删除ΔUBE2S公司ΔUBE2C公司#3个具有WT细胞的细胞,其中摩洛哥迪拉姆2被RNAi击倒。通过活细胞成像监测瞬时转染RFP标记组蛋白H2B的细胞,并将其分为代表正常和异常有丝分裂表型的类别。从三个独立实验中分析了至少27个细胞。(E) 直方图描述了指定细胞中的DNA含量(2N、2-4N和>4N;N近似于单倍体基因组),这些细胞在指定的时间(hr)内培养有或没有逆转(0.5μM)。嵌体显示了在特定细胞和条件下具有指示DNA含量的细胞的百分比;数值显示了三个独立实验的平均值±标准偏差。DNA含量通过碘化丙啶染色和流式细胞仪分析。对于每个实验,每个条件下至少分析9000个细胞。直方图显示了其中一个实验的代表性数据。转速,反转。另请参见图S4。
图4
图4
Δ中SAC抑制分析UBE2S公司ΔUBE2C公司TP53型-敲除细胞(A)Δ的生长分析UBE2S公司ΔUBE2C公司单元格和TP53型-存在或不存在0.5μM逆转的敲除细胞。使用基于发光的检测ATP水平的分析在指定时间评估细胞增殖。基于每个时间点至少六个测量值,为每个细胞系和条件绘制局部回归曲线。(B) 抑制MPS1导致HCT116 WT和Δ的多倍体TP53型单元格,但不在Δ中UBE2S公司ΔUBE2C公司细胞。细胞用逆转剂处理4天,培养2天后更换培养基。细胞DNA用Hoechst染色,并用宽视野显微镜成像。比例尺代表20μm。(C) 击倒摩洛哥迪拉姆2加速有丝分裂进程。瞬时转染细胞摩洛哥迪拉姆2用延时显微镜监测siRNA和RFP标记组蛋白H2B。对所示细胞系的NEBD后期发病进行分析;每个圆圈代表一个单元格。p值通过Mann-Whitney试验计算。(D) WT有丝分裂的比较,ΔUBE2S公司ΔUBE2C公司,和ΔTP53型单元格位于摩洛哥迪拉姆2击倒。根据(C)中所示的实验分析有丝分裂细胞中中期板的形成。请注意摩洛哥迪拉姆2单位WT和ΔTP53型细胞导致中期板形成的严重问题。
图5
图5
抑制SAC对APC/C活性受损的细胞产生有益影响(A)WT中MPS1水平的Western blot分析和指示的ΔUBE2S公司ΔUBE2C公司显示了细胞克隆。(B) NEBD至后期发病时间(Δ)UBE2S公司ΔUBE2C公司#4在有或无诺卡唑的情况下,以及在有诺卡唑存在的情况下TFP-MPS1转染。从三个独立的实验中分析了至少30个细胞。中位数用红线表示,并标注在数据点上方。所示条件的p值显示在顶部。(C) Δ生成示意图UBE2S公司ΔUBE2C公司-R电池。UBE2C公司在Δ中删除UBE2S公司存在逆转的细胞。(D) Western blot分析WT中UBE2S和UBE2C水平以及指示的ΔUBE2S公司ΔUBE2C公司-图中显示了R细胞克隆。(E) 在存在或不存在0.5μM逆转的情况下,对所示细胞系进行生长分析。使用基于发光度的测定ATP水平的分析评估指示细胞和时间的细胞增殖。基于每个时间点至少六个测量值,为每个细胞系和条件绘制局部回归曲线。(F) 用时间推移显微镜(DIC)分析NEBD到发病后期的时间。每个圆圈代表单个细胞(红色圆圈表示在规定时间内没有退出有丝分裂的细胞)。WT细胞在以下条件下培养:对照,无逆转;rev,试验开始时添加的逆转;冲洗后,细胞与reversine培养24小时,并在开始拍摄前取出reversine。ΔUBE2S公司ΔUBE2C公司-R细胞在以下条件下培养:rev,细胞在reversine中连续培养;洗脱后第天,从在reversine中持续培养的细胞中洗脱reversine,并在去除reversine后的指定天数后进行涂膜。NEBD到后期发病时间的中位数用红线表示,并在数据点上方注明。从每个细胞系和条件中至少分析41个细胞。通过Mann-Whitney试验计算p值(ns,p≥0.01)。(G) NEBD与后期发病时间的关系,如(F)所述进行分析。在拍摄前24小时,用siRNAs靶向细胞摩洛哥迪拉姆2(+)或对照(−)siRNA.ΔUBE2S公司ΔUBE2C公司-R细胞用0.5μM reversine(rev)连续培养,或在拍摄前(冲洗)或拍摄前3天(rev去除后3天)去除reversine。从两个实验中分析了至少81个细胞(ns,p≥0.01)。另请参见图S5。

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引用人

参考文献

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