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.2016年3月;11(1):168-181.
doi:10.1007/s11481-015-9643-8。 Epub 2015年11月20日。

创伤后应激障碍患者外周血单个核细胞中前炎症细胞因子、白细胞介素-12和干扰素γ的表观遗传调控证据

附属公司

创伤后应激障碍患者外周血单个核细胞中前炎症细胞因子、白细胞介素-12和干扰素γ的表观遗传调控证据

Marpe Bam公司等。 神经免疫药理学杂志. 2016年3月.

摘要

虽然创伤后应激障碍(PTSD)与免疫功能障碍有关,但其潜在机制尚不清楚。研究表明,表观遗传学机制和微小RNA(miRNA)的参与发挥了作用。在这里,我们检测了PTSD患者外周血单个核细胞(PBMC)的全基因组组蛋白和DNA甲基化。我们注意到PTSD组蛋白H3在K4、K9、K27和K36位点的三甲基化与对照组相比存在显著差异。虽然对照组和创伤后应激障碍组的总体DNA甲基化水平没有显著差异,但几个单独基因(例如干扰素-γ(IFNG)和白细胞介素(IL)-12B)的启动子甲基化程度不同。ChIP-seq数据显示,IFNG和TBX-21的启动子与PTSD中的激活标记H3K4me3相关。PTSD患者IFNG和TBX-21的转录水平较高,与甲基化模式的改变密切相关。此外,PTSD患者PBMC中IL-12的表达增加。对组蛋白和DNA甲基化标记的分析表明,IL-12的表达也可能通过表观遗传学修饰被激活。敲除赖氨酸(K)特异性去甲基酶5B(KDM5B)或抑制DNA(胞嘧啶-5-)-甲基转移酶1(DNMT1)导致IL-12上调。此外,这些细胞因子的表达也受到miRNAs的调节。我们的miRNA微阵列鉴定出PTSD中许多下调的miRNA,预测其靶向IFNG和IL-12。因此,我们发现上调hsa-miR-193a-5p可以降低IL-12的表达。总的来说,目前的研究表明,PTSD患者促炎细胞因子的高表达可能受到多种表观遗传机制和miRNA的调控。

关键词:DNA甲基化;组蛋白修饰;IL-12;炎症;创伤后应激障碍;miRNA。

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数字

图1
图1。PBMC中的全基因组组蛋白甲基化
分离出一名对照组和一名创伤后应激障碍患者的PBMC,并按照方法中的描述用ChIP-seq检测组蛋白甲基化。a)圆形图显示对照组和创伤后应激障碍患者23条染色体中的组蛋白三甲基化。从最外面的圆开始,这些圆分别代表对照组和创伤后应激障碍组的H3K4me3、H3K36me3、H3K27me3和H3K9me3。b)组蛋白标记整体相关性的热图。
图2
图2。组蛋白甲基化信号在基因组特征中的分布
如图1所示,分离出对照组和创伤后应激障碍患者的PBMC。组蛋白甲基化信号位于启动子区域(TSS上游3kb)、基因体(内含子和外显子)和基因间区域的百分比被表示出来。还显示了这3个区域的基因组序列百分比。a)H3K4me3,b)H3K27me3,c)H3K36me3和d)H3K9me3。
图3
图3。PBMC的全基因组DNA甲基化模式
从一名对照组和一名创伤后应激障碍患者的PBMC中分离出基因组DNA。用MeDIP-seq检测DNA甲基化。a)圆形图显示23条染色体中观察到的DNA甲基化,外环为对照,内环为创伤后应激障碍患者。彩色线条将miRNA在不同染色体中的位置与miRNA的预测或已知靶点的位置连接起来。b)TSS附近DNA甲基化信号的相对富集曲线。c)对照组和PTSD样本之间TSS 1kb范围内DNA甲基化信号的相关性。
图4
图4。提升的表达式IFNG公司TBX-21型PTSD患者PBMC中
如图1所示,分离出对照组和创伤后应激障碍患者的PBMC。a)不同相关组蛋白甲基化标记IFNG公司TBX-21型.b)基因启动子区的DNA甲基化水平IFNG公司.c、 d)相对丰度(以褶皱变化表示)IFNG公司TBX-21型通过实时PCR分别测定来自对照组(n=17)和PTSD患者(n=16)的PBMC转录物。创伤后应激障碍组中的每个方块代表一名人类受试者。控制中的液位设置为1。
图5
图5。提升的表达白介素-12PTSD患者PBMC中
对照组和PTSD患者的PBMC被分离,如图1所示。a)IL-12B启动子区的DNA甲基化。b)代表性对照组和PTSD患者的DNA甲基化特异性PCR结果(M:甲基化DNA,U:非甲基化DNA)。c)IL-12B基因中的相关组蛋白甲基化标记物。d、 e)实时PCR分别测定对照组(n=17)和创伤后应激障碍患者(n=16)PBMC中IL-12A和IL-12B转录物的相对丰度(以倍数变化表示)。创伤后应激障碍组中的每个方块代表一名人类受试者。控制中的液位设置为1。
图6
图6。白介素-12B表达受到多种表观遗传机制和miRNA的影响
a)通过Bioplex分析法分析对照组和PTSD受试者血清中IL12(p70)水平。对于在体外研究表明,在一种实验中,THP-1细胞被5-AZA@1μM浓度处理,并转染siRNAKDM5B系列另一种方法是通过实时PCR定量IL-12B转录。b)5-AZA治疗48小时后IL-12B的转录水平。c)基因敲除后IL-12B的转录水平KDM5B。 d)KDM5B被siRNA敲除后的转录水平。e)在IPA中为失调的miRNAs和一些选择性靶点生成MiRNA-gene交互网络。绿色表示下调的miRNA,红色表示上调。实心箭头表示直接交互,而断开则表示间接交互。随后,如方法所述,通过转染其前miR,hsa-miR-193a-5p在THP-1细胞中上调,以观察其对IL-12表达的影响。f)qRT-PCR检测PTSD患者PBMC中hsa-miR-193a-5p水平(对照组17人和PTSD组16人)。g)用pre-miR-193a-5p或其抑制剂转染后,健康对照组PBMC中IL-12B转录物的水平。h)用前miR-193a-5p转染健康对照组PBMC后,通过ELISA检测培养上清液中的IL-12(p70)。(RA:相对丰度,RE:相对表达)。
图6
图6。白介素-12B表达受多种表观遗传机制和miRNA的影响
a)通过Bioplex分析法分析对照组和PTSD受试者血清中IL12(p70)水平。对于在体外研究表明,在一种实验中,THP-1细胞被5-AZA@1μM浓度处理,并转染siRNAKDM5B系列随后通过实时PCR对IL-12B转录物进行定量。b)5-AZA治疗48小时后IL-12B的转录水平。c)基因敲除后IL-12B的转录水平KDM5B。 d)KDM5B被siRNA敲除后的转录水平。e)在IPA中为失调的miRNAs和一些选择性靶点生成MiRNA-gene交互网络。绿色表示下调的miRNA,红色表示上调。实心箭头表示直接相互作用,虚线表示间接相互作用。随后,如方法所述,通过转染其前miR,hsa-miR-193a-5p在THP-1细胞中上调,以观察其对IL-12表达的影响。f)qRT-PCR检测PTSD患者PBMC中hsa-miR-193a-5p水平(对照组17人和PTSD组16人)。g)用pre-miR-193a-5p或其抑制剂转染后,健康对照组PBMC中IL-12B转录物的水平。h)用前miR-193a-5p转染健康对照组PBMC后,通过ELISA检测培养上清液中的IL-12(p70)。(RA:相对丰度,RE:相对表达)。

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