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.2014年4月10日;9(4):e94708。
doi:10.1371/journal.pone.0094708。 2014年电子采集。

转录因子Egr3是小鼠卵母细胞微管组织中心的假定成分

附属公司

转录因子Egr3是小鼠卵母细胞微管组织中心的假定成分

Hyejin Shin先生等。 公共科学图书馆一号. .

摘要

锌指转录因子的早期生长反应(Egr)家族由4个成员组成。在对小鼠卵巢中Egr因子定位的研究中,我们注意到Egr3表现出与卵母细胞减数分裂纺锤体重叠的亚细胞定位。利用Egr3特异性抗体,我们确定Egr3在卵母细胞减数分裂成熟过程中与纺锤体和胞质微管组织中心(MTOCs)共定位。值得注意的是,Egr3蛋白似乎在MTOCs的γ-微管蛋白周围积聚。诺卡唑治疗导致微管解聚,导致纺锤体形成和Egr3定位中断,表明Egr3的定位依赖于纺锤体的正确配置。玻璃化卵母细胞升温后不久,在大簇Egr3附近观察到微管生长阵列。体外微管相互作用试验表明,Egr3不与聚合微管直接相互作用。在早期植入前小鼠胚胎中,Egr3在纺锤体上的定位持续存在,但这种模式直到囊胚期才持续。总之,我们的结果首次表明,Egr3a转录因子可能在小鼠卵母细胞微管组织中发挥新的非转录功能。

PubMed免责声明

利益冲突声明

竞争利益:作者特此声明,通讯作者Hyunjung Jade Lim是PLOS ONE编辑委员会成员。这并不会改变作者对《PLOS ONE》编辑政策和标准的坚持。

数字

图1
图1。小鼠卵母细胞减数分裂纺锤体中Egr3蛋白的亚细胞定位。
(A) Egr3在生长卵泡内的小鼠卵母细胞中的定位。在丙酮固定的卵巢冷冻切片上进行Egr3免疫荧光染色。以2μg/ml的剂量使用兔多克隆抗Egr3抗体(Santa Cruz)。用山羊抗兔IgG Alexa Fluor 488抗体探测初级抗体。用TO-PRO-3-碘化物对DNA进行反染色。白色刻度条,100μm。模拟对照,兔IgG。绿色,Egr3;红色,DNA。(B) Egr3在小鼠卵母细胞成熟的各个阶段都定位于减数分裂纺锤体。通过卵巢穿刺获得生殖囊期卵母细胞,并在M16中培养。卵母细胞固定在3.7%甲醛中,并用抗Egr3抗体(Santa Cruz)进行免疫荧光染色。左图中的卵母细胞显示为60X,右图中显示了含有染色体区域的放大图像。模拟对照,兔IgG。PI,前期I;PMI,前中期I(培养3h);MI,中期I(培养8h);MII、中期II(培养12小时)。红色标尺,30μm;白色刻度条,10μm。绿色,Egr3;蓝色,DNA。
图2
图2。的表达式出口风险3小鼠组织和培养细胞中的转录物和蛋白质。
(A) RT-PCR分析出口风险3在各种组织中表达。与核糖体蛋白L7的表达进行比较(rpl7型)或Gapdh公司将PI期(130个卵母细胞)或MI期(120个卵母公司)的卵母细胞合并,并进行Egr3 RT-PCR和巢式PCR。Cu,卵丘细胞;-,无RT.(B)不同组织和细胞类型中Egr3的Western blot分析。上图:用抗Egr3抗体探针Western blots分析转染CMV-GFP质粒(GFP)、空质粒(-)、pcDNA3.1/myc-his-NM质粒(NM)或pcDNA3.1/myc-his-BC质粒(BC)的293个T细胞。在10%的SDS-PAGE凝胶上运行50微克的每个细胞裂解物。底部面板:通过Western blotting分析MI卵母细胞(体外培养8小时的268个GV卵母细胞)、PI卵母细胞、卵巢、大脑和MCF7细胞(有或没有雌激素治疗)裂解物。在12%SDS-PAGE凝胶的每条通道中装载200微克组织提取物。剥离印迹,并使用抗α-微管蛋白抗体检测微管蛋白。
图3
图3。MI卵母细胞中Egr3和微管蛋白的免疫荧光染色。
PI卵母细胞体外培养8%甲醛,并用抗Egr3(上部为Santa Cruz抗体,下部为Abcam抗体)、抗α-微管蛋白或抗γ-微管素(Sigma-Aldrich)抗体进行免疫荧光染色。所有抗体均以2μg/ml的浓度使用。DNA用TO-PRO-3-碘化物反染。红色标尺,30μm;白色刻度条,5μm。绿色,Egr3;红色、α-微管蛋白或γ-微管蛋白;蓝色,DNA。箭头表示Egr3蛋白在γ-微管蛋白阳性MTOCs附近的定位。
图4
图4。Egr3定位与小鼠卵母细胞中的微管组织有关。
(A) MI卵母细胞用紫杉醇(微管稳定剂,1μM)或诺卡唑(微管解聚剂,10μg/ml)处理1–2 h,并用抗Egr3抗体(Santa Cruz)进行免疫荧光染色。红色标尺,30μm;白色刻度条,10μm。绿色,Egr3;红色,γ-微管蛋白;蓝色,DNA。(B) Egr3在用CytoD(肌动蛋白解聚剂,10μM)处理的MI卵母细胞和第二组-/-卵母细胞。第二组-/-卵母细胞与抗Egr3(Santa Cruz)和抗γ-微管蛋白抗体共同染色。红色标尺,30μm。绿色,Egr3;红色,γ-微管蛋白;蓝色,DNA。(C) 玻璃化卵母细胞解冻时Egr3和微管的定位。玻璃化MII卵母细胞保存在LN中2持续2周。从LN中取出卵母细胞2,在降低浓度的蔗糖中培养,然后立即固定。用抗Egr3(Abcam)和抗α-微管蛋白抗体对这些卵母细胞进行免疫荧光染色。箭头表示Egr3积聚部位微管的生长阵列。绿色,Egr3;红色,微管(MT)。
图5
图5。利用体外翻译的Egr3亚型进行微管相互作用分析。
为了检测聚合微管是否与Egr3蛋白直接相互作用,我们进行了微管相互作用分析。将来自牛脑的管蛋白(5μg/μl)在37℃聚合并稀释至0.2μg/微升。将4微升体外翻译裂解物(NM或BC)和50微升稀释的MT在室温下培养30分钟。将反应在100000×g下离心30分钟,以使聚合的MT颗粒化。上清液(S)和颗粒(P)在10%SDS-PAGE上进行,并用检测pcDNA3.1/Myc-his载体中表位的抗Egr3或抗Myc抗体进行蛋白质印迹。抗体的使用比例为1∶5000。剥离印迹,用抗微管蛋白抗体检测微管蛋白。数据表明,微管的存在并不影响上清液和颗粒中Egr3产物的数量,这表明微管与Egr3之间没有直接的相互作用。
图6
图6。Egr3在MCF7细胞和小鼠睾丸中的定位。
(A) MCF7人乳腺癌细胞Egr3的免疫荧光染色。细胞在甲醇中固定,并用抗Egr3(Santa Cruz)和抗α-微管蛋白(Sigma)抗体染色。所有抗体均以2μg/ml的浓度使用。下面板中的白色方框区域扩大。绿色,Egr3;红色,α-微管蛋白;蓝色,DNA。(B) 将4周龄小鼠睾丸冷冻切片固定在4%多聚甲醛中,并用抗Egr3(Santa Cruz)和抗α-微管蛋白抗体进行免疫荧光染色。绿色,Egr3;红色,α-微管蛋白;蓝色,DNA。(C) 小鼠脑冷冻切片进行Egr3免疫荧光染色。白色矩形内的区域放大显示(左)。
图7
图7。植入前小鼠胚胎中Egr3的免疫荧光染色。
将不同发育阶段的胚胎固定在4%多聚甲醛中,并用抗Egr3(Santa Cruz)和抗α-微管蛋白抗体进行免疫荧光染色。箭头表示卵裂球中的有丝分裂纺锤体。绿色,Egr3;红色,α-微管蛋白;蓝色,DNA。

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引用人

工具书类

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赠款和资金

本文来源于2011年孔雀大学研究支持项目(网址:www.konkuk.ac.kr)。资助者在研究设计、数据收集和分析、决定出版或编写手稿方面没有任何作用。

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