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2013:4:2139.
doi:10.1038/ncomms3139。

线粒体Hsp90代谢组在肿瘤中的分布

附属机构

线粒体Hsp90代谢组在肿瘤中的分布

杨赞泽等。 国家公社 2013

勘误表in

  • 勘误表:肿瘤中线粒体Hsp90代谢组的景观。
    Chae YC、Angelin A、Lisanti S、Kossenkov AV、Speicher KD、Wang H、Powers JF、Tischler AS、Pacak K、Fliedner S、Michalek RD、Karoly ED、Wallace DC、Languino LR、Spiecher DW、Altieri DC。 Chae YC等人。 国家公社。2015年6月18日;6:7605. doi:10.1038/ncomms8605。 国家公社。2015 PMID:26085380 免费PMC文章。 没有可用的摘要。

摘要

肿瘤细胞代谢的重新编程有助于疾病的进展和对治疗的抵抗,但这一过程是如何在分子水平上调控的尚不清楚。在这里,我们报道了线粒体中热休克蛋白90引导的蛋白质折叠控制肿瘤细胞的中央代谢网络,包括电子传输链、柠檬酸循环、脂肪酸氧化、氨基酸合成和细胞氧化还原状态。具体而言,线粒体热休克蛋白90(而非细胞溶质热休克蛋白)结合并稳定电子传递链复合物II亚基琥珀酸脱氢酶B,在低营养条件下维持细胞呼吸,以及促进琥珀酸脱氢酶-B突变患者的低氧诱导因子-1α介导的肿瘤发生。因此,线粒体中的热休克蛋白90定向蛋白沉积调节肿瘤细胞的代谢,并可能为癌症治疗提供一个易处理的靶点。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者贡献

Y.C.C.、A.A.、A.S.T.、R.D.M.、D.C.W.、L.R.L.、D.W.S.和D.C.A.设计的研究;Y.C.C.、A.A.、K.D.S.、H.W.、J.F.P.和E.D.K.进行了研究;S.L.、K.P.、S.F.和R.D.M.提供了新的试剂/分析工具;Y.C.C.、A.A.、A.S.T.、R.D.M.、D.C.W.、L.R.L.、D.W.S.和D.C.A.分析了数据,Y.C.C.、A.A.、A.S.T.、D.C.W.、D.W.S.和D.C.A.撰写了论文。

竞争性金融利益

作者声明没有竞争性的经济利益。

数字

图1
图1。线粒体Hsp90蛋白质组
()用溶媒(对照)或非细胞毒性浓度的线粒体靶向Hsp90抑制剂伽米替尼处理LN229细胞,并通过1-D质谱(光谱计数)或SILAC技术鉴定不溶于洗涤剂的线粒体蛋白。热图量化了使用两种独立蛋白质组学方法评估的治疗之间蛋白质溶解度的变化(>3倍截止值)。(b)线粒体Hsp90蛋白质组的示意图。基于文献检索和Ingenuity软件的信息,对蛋白质进行功能注释,该软件也用于确定已知的直接蛋白质相互作用。所有蛋白质都进行了颜色编码,以反映处理和未处理(unter)样品之间检测差异的大小。与对照组相比,标记为“红色”的蛋白质在伽米替林处理后表现出大于3倍的变化差异,并通过1-D质谱和SILAC技术进行了独立确认。
图2
图2。线粒体Hsp90对肿瘤细胞代谢的调控
用对照非靶向siRNA或TRAP-1导向的siRNA转染PC3细胞,或者用非细胞毒性浓度的17-AAG(5μM)或甘美替尼(2.5–5μM)处理,并通过质谱分析301种个体代谢物的表达变化。补充数据2中给出了靶向线粒体Hsp90引起的代谢变化的完整总结。实验进行一次,每个测试条件有5个独立的重复。在这些条件下受影响的代谢途径描述如下:()柠檬酸循环;(b)脂肪酸氧化;(c(c))支链氨基酸分解代谢;(d日)氧化还原状态;(e(电子))胆固醇代谢;((f))嘌呤核苷酸代谢;和()精氨酸代谢。各组内代谢物水平的显著变化(p<0.05)(Ctrl vs.TRAP-1 siRNA或载体vs.Gamitrinib)用红色表示(增加)或绿色(减少)使用韦尔奇的两个样本t吨-测试(n=5)。
图3
图3。线粒体Hsp90对细胞呼吸的调节
()PC3细胞用载体或伽米替林(Gam)处理,溶解在指示浓度增加的洗涤剂(NP-40)中,不溶性蛋白质通过OXPHOS复合物抗体混合物的Western blotting分析。(b、 c(c))用伽米曲尼治疗PC3细胞(b)或用对照非靶向siRNA(Ctrl)或TRAP-1导向的siRNA转染(c(c)),并通过Western blotting进行分析。无,未经治疗。(d日)PC3细胞被转染为(c(c)),用指示的增加浓度的H处理2O(运行)2(μM),并通过Western blotting进行分析。(e(电子))用指定浓度的伽米特里尼(Gam,μM)或17-AAG(10μM)处理PC3细胞,并在指定的时间间隔内分析SDHB活性。NT,未处理。((f))从PC3细胞中免疫沉淀内源性复合物II(SDH),并在重组TRAP-1(μM)浓度增加的情况下分析SDHB活性。面板数据(e、 (f))来自至少两个独立测定的代表性实验。()用17-AAG(5μM)或指示增加的伽米替林浓度(Gam,μM)处理PC3细胞,并在基础条件下实时测量耗氧率(OCR),以响应指示的抑制剂。箭头表示药物添加时间:D、伽米替尼(Gam)或17-AAG;O、 寡聚菌素(1.25μM);F、 催化裂化装置(0.4μM);A、 抗霉素(1.8μM)。(小时)OCR通过细胞数量进行标准化,并减去添加抗霉素后的胞外呼吸作为背景。*p<0.05;**p<0.01每个状态下的对照样品(双面未配对t吨测试)。()用对照(Ctrl)siRNA或TRAP-1定向siRNA转染PC3细胞,用Gamitrinib(Gam,μM)或17-AAG处理,并分析OCR,如(). (j个). 定量分析:b/o、基础条件(添加前)和添加寡霉素后的OCR比率;f/o,添加FCCP和寡霉素后;f/b,添加FCCP后,转染对照siRNA(Ctrl)或TRAP-1定向siRNA的PC3细胞的基础状态。*p<0.05;**p<0.01(双面未配对t吨测试)。对于所有OCR实验,数据代表了以一式三份的形式进行的两个独立实验,平均值±sd
图4
图4。线粒体Hsp90对应激生物能量学的调节
()用对照、非靶向siRNA(Ctrl)或TRAP-1导向的siRNA转染PC3细胞,并在OCR分析之前在1或10mM葡萄糖(Glc)中维持3小时。箭头表示加药时间:O,寡聚菌素(1.25μM);F、 催化裂化装置(0.4μM);A、 抗霉素(1.8μM)。(b)OCR输入在不同葡萄糖(Glc)浓度的siRNA-转染细胞中定量。面板数据(b)数据代表两个独立实验,一式三份,平均值±标准差。*p<0.05;**p<0.01每个状态下的对照样品(双面未配对t吨测试)。(c(c))用对照载体或TRAP-1 cDNA转染正常NIH3T3成纤维细胞并进行Western blotting分析(左边)或葡萄糖(Glc,25 mM)存在(+)或不存在(−)时ATP生成(正确的). *, p=0.03(双面未配对t吨测试)。(d日)NIH3T3成纤维细胞被转染为(c(c))与指示浓度的葡萄糖(Glc,mM)孵育,并通过Western blotting进行分析。p、 磷酸化。
图5
图5。TRAP-1-SDHB复合物调节HIF-1α定向肿瘤发生
()用不同浓度(mM)的SDHB抑制剂、TTFA或3-NPA处理指定的肿瘤细胞类型(LN229或PC3细胞),并通过Western blotting进行分析。(b)在不存在(−)或存在(+)TTFA(0.3mM)的情况下,用增加浓度的甘美替尼(Gam,0,2.5,5μM)处理PC3细胞,并通过蛋白质印迹进行分析。(c(c))用对照siRNA(Ctrl)或TRAP-1定向siRNA转染LN229细胞,并在显示的TTFA浓度增加的情况下通过Western blotting进行分析。(d、 e(电子))PC3细胞在缺氧条件下(H,0.5%O2,5%一氧化碳2,94%牛顿224小时)或常氧(N),并通过全细胞提取物(TCE)中的Western blotting进行分析(d日)或分馏细胞溶质(细胞)或线粒体(线粒体)提取物(e(电子)). VDAC或β-微管蛋白分别用作线粒体或细胞溶质标志物。((f))用对照siRNA(Ctrl)或HIF-1α定向siRNA转染PC3细胞,维持在常氧(N)或缺氧(H)条件下,并通过Western blotting进行分析。()PC3细胞被转染并按((f))通过Western blotting分析分离的细胞溶质(Cyto)或线粒体(Mito)组分。COX-IV被用作线粒体标记物。(小时)通过Western blotting分析PCC/PGL患者衍生组织样本。指出了每个肿瘤的突变状态。前医生,肾上腺外定位。()肾上腺外PGL的组织样本SDHD公司苏木精/伊红(H&E,顶部)或TRAP-1(底部)免疫组化染色。比例尺,50μm。(j个)显示突变状态的PCC/PGL患者TRAP-1免疫组化表达的定量(顶部). 将来自不同肿瘤样本的细胞保存在培养基中,并用伽米替林(10μM,持续两周)进行杀伤分析(底部)通过在由随机放置在35mm圆形培养皿中的22×22mm正方形盖玻片限定的区域中计数的酪氨酸羟化酶阳性细胞的计数来测量。每个点代表一个肿瘤。同一肿瘤的配对样本共有12例,并用匹配数字表示。数据来自一个有代表性的实验。

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    1. Kroemer G,Pouyssegur J.肿瘤细胞代谢:癌症的致命弱点。癌细胞。2008年;13:472–482。-公共医学
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