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.2013年3月;34(6):809-17.
doi:10.1002/elps.201200503。 Epub 2013年2月25日。

用于定量膜蛋白质组学的LC-MS/MS方法中高纯度和高收率富集膜蛋白的可重复方法

附属公司

用于定量膜蛋白质组学的LC-MS/MS方法中高纯度和高收率富集膜蛋白的可重复方法

仙隐莱. 电泳. 2013年3月.

摘要

膜蛋白丰度相对较低阻碍了其蛋白质组分析,尤其是对于定量LC-MS/MS方法。为了克服这一局限性,开发了一种方法,包括使用液氮在低渗试剂中进行一个细胞破碎步骤,使用低速离心进行一个分离步骤,以及使用高速离心进行三个清洗步骤。颗粒含有血浆、核和线粒体膜,包括其整体、外周和锚定膜蛋白。通过四个单独实验的蛋白质分析验证了该方法的再现性,CV为7.7%,并通过两个实验之间的单个蛋白质的比较LC-MS/MS无标签定量验证了该法的重现性,99%的定量蛋白质的CV≤30%。细胞质、细胞核、线粒体及其膜的标记物的Western blot和LC-MS/MS结果表明,由于缺少或存在微量的非膜标记蛋白,富集的膜部分纯度很高。膜蛋白的平均产量为237μg/1000万HT29-MTX细胞。对膜富集样品进行LC-MS/MS分析,鉴定出2597个蛋白质组。总之,所开发的方法是可重复的,产生高纯度的膜组分,并产生高产量的膜蛋白。

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图1
图1
样品H清洗6次的典型工作流程示例。该程序包括一个细胞破碎步骤和六个清洗步骤,生成样品H1-7和膜组分样品H2将O添加到1000万个细胞中,用移液管上下移动样品10次,在冰上培养10分钟,用液体N冷冻1分钟2,室温解冻,10000×离心10 min,4摄氏度。清除上清液。在清洗步骤中,在500μL H后2将O添加到颗粒中,用移液管上下移取样品20次,在冰上培养10分钟,以100000×,4摄氏度。经过多次洗涤步骤后,将500μL 8 M尿素和10 mM DTT添加到最终颗粒中。
图2
图2
使用干冰/乙醇浴与液体N评估冻融效率2比较表明,干冰/乙醇浴产生的膜蛋白与总蛋白的比率远高于液体N2(23.4%对13.9%)。这与Western blot结果一致,因为未破裂的细胞污染了膜部分。E1,细胞分裂步骤上清液;E2,第一次清洗的上清液;E3,第二清洗步骤的上清液;E4,第三清洗步骤的上清液;E、 膜蛋白组分颗粒。
图3
图3
使用Western印迹法比较多个洗涤步骤。在比较中,分析了8个样品,生成了36个子样品,如补充表1所示。样品B仅包括一个膜隔离步骤;样品C-G分别包括一个膜分离步骤和1-5个清洗步骤。β-actin、LSD1和细胞色素c分别是细胞质、细胞核和线粒体的标记物。+/K(K)+-ATP酶、Lamin B1和COX IV分别是血浆、核和线粒体膜的标记物。在没有清洗步骤的情况下(样品B和B1),膜蛋白组分中富含β-肌动蛋白、LSD1和细胞色素c,表明非膜蛋白污染了膜组分。随着额外的洗涤步骤,它们的丰度降低。经过三个清洗步骤后,膜组分(样品E)中β-肌动蛋白和LSD1的丰度很低,而细胞色素c在膜组分中无法检测到。因此,膜富集法选择了三个洗涤步骤。
图4
图4
方法的再现性。在不同的日子进行,1000万HT29-MTX细胞的总蛋白测量值为1687.1、1780.1、1583.9和1939.1μg,膜蛋白组分为13.3、14.4、12.0和13.9%。总蛋白和膜蛋白产率的变异系数分别为8.6%和7.7%,表明膜富集法具有较高的重复性。E1,细胞分裂步骤上清液;E2,第一次清洗的上清液;E3,第二清洗步骤的上清液;E4,第三清洗步骤的上清液;E、 膜蛋白组分颗粒。
图5
图5
定量LC-MS/MS分析。(A) 在2362个蛋白质中,2001个蛋白质(85%)的CV≤15%,200个蛋白质(8%)的CV>15%和≤20%,91个蛋白质(4%)的CV<20%和≤35%,41个蛋白质(2%)的CV>25%和≤30%,只有29个蛋白质(1%)的CV大于30%。单个蛋白质CV分析清楚显示99%的蛋白质用可接受的CV进行了量化,验证了富集方法的再现性。(B) 给出了六种标记蛋白的强度和变异系数。膜蛋白标记物Na+/K(K)+-ATP酶(ATP1A1)、拉明B1(LMNB1)和COX IV(COX4I1)的变异系数分别为6%、7%和13%。膜蛋白富集样品中未检测到非膜蛋白标记物β-肌动蛋白(ACTB)和LSD1。线粒体标记蛋白细胞色素c(CYCS)的检测和定量CV为4%,但其强度仅为线粒体膜蛋白标记物COX IV(COX4I1)的15%。图5B中的数据也与图3中的纯度分析数据一致,表明膜部分是高纯度的。

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