Mitochondrial Lon protease is a human stress protein

doi:10.1016/j.freeradbiomed.2008.12.024

.2009年4月15日；46(8):1042-8.

doi:10.1016/j.freeradbiomed.2008.12024。 Epub 2009年1月15日。

线粒体Lon蛋白酶是一种人类应激蛋白

珍妮·恩戈¹, 开尔文·J·A·戴维斯

附属公司

PMID： 19439239
PMCID公司：项目经理3093304
内政部： 10.1016/j.freeradbiomed.2008.12.024

线粒体Lon蛋白酶是一种人类应激蛋白

珍妮·恩戈等。自由基生物医学. 2009.

.2009年4月15日；46(8):1042-8.

doi:10.1016/j.freeradbiomed.2008.12024。 Epub 2009年1月15日。

作者

珍妮·恩戈¹, 开尔文·J·A·戴维斯

附属

¹美国加利福尼亚州洛杉矶市南加州大学Ethel Percy Andrus老年医学中心分子和计算生物学部，邮编：90089-0191。

PMID： 19439239
PMCID公司：项目经理3093304
内政部： 10.1016/j.freeradbiomed.2008.12.024

摘要

通过蛋白水解有针对性地去除受损蛋白质对细胞生存至关重要。我们之前已经证明，Lon蛋白酶选择性降解氧化的线粒体蛋白质，从而阻止其聚集和交联。我们现在证明Lon蛋白酶是一种应激反应蛋白，由多种应激源诱导，包括热休克、血清饥饿和氧化应激。Lon诱导，通过低水平应激预处理，可保护机体免受氧化蛋白损伤、线粒体功能降低和过氧化氢中毒引起的细胞增殖丧失。用Lon siRNA阻断Lon诱导也可以阻断这种诱导保护。我们认为Lon是一种广义的应激保护酶，其下降可能导致蛋白质损伤水平的增加和线粒体功能障碍，这在衰老和与年龄相关的疾病中观察到。

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数字

**图1。过氧化氢处理诱导Lon**
A类用0、100、200或400μM H处理的RD细胞的Lon蛋白分析₂O（运行）₂1小时，然后在H后离开恢复长达25小时₂O（运行）₂治疗。”无H2O₂“代表用载体而不是过氧化氢孵育的样品。用抗Lon抗体或抗porin抗体作为线粒体负荷控制来检测印迹。条形图表示根据孔蛋白标准化的数据。B类，通过qRT-PCR对在A中检查的相同样品进行mRNA分析。用Lon和GAPDH引物扩增样品，并对照GAPDH对Lon mRNA水平的计算进行标准化，作为内部负载对照。在面板A和B中，显示的所有数据点均为三次独立测定的平均值±标准误差。

**图2。Lon是由热应激和血清饥饿引起的**
A类Lon和mtHSP-70对经45°C热休克处理1小时，然后在37°C中恢复3-24小时的RD细胞进行western分析。B类Western分析RD细胞在无血清培养基中培养，然后在含有血清的完整培养基中恢复3-24小时。样品用抗Lon抗体或抗孔蛋白抗体作为线粒体负荷控制。A和B中的条形图表示相对于通道蛋白标准化的Lon水平，所示的所有数据点均为三次独立测定的平均值±标准误差。

**图3。预处理细胞能更好地防止氧化损伤**
RD细胞的Western分析。细胞与A类，控制非沉默siRNA或B类，Lon siRNA。三天后，用0-800μM H预处理这些样品₂O（运行）₂1小时，然后在无H的介质中再恢复3小时₂O（运行）₂.“无挑战”样本表示与siRNA孵育的细胞，但不与H孵育₂O（运行）₂B中的印迹过度暴露，显示沉默的Lon带。在用2mM过氧化氢预处理4小时后，对相同的细胞进行1小时的激发，然后分析羰基含量C类控制非沉默siRNA，或D类用2,4-二硝基苯肼处理细胞提取物以衍生蛋白质羰基，然后使用2,4-二硝基苯肼多克隆抗体进行Western blot分析，检测氧化修饰蛋白质。*E、 F类*定量A-D的免疫细胞，显示的所有数据点均为三次独立测定的平均值±标准误差。

**图4。预处理细胞表现出更高的细胞活力**
收集图3实验中的细胞，再培养3天，以确定存活数和存活率。简而言之，细胞与对照或Lon siRNA孵育，然后与H孵育₂O（运行）₂预处理（指示浓度）并用2mM过氧化氢激发1小时。”“无挑战”样本是用siRNA处理但没有用过氧化氢处理的细胞。A类，通过直接细胞计数确定过氧化氢处理后存活的细胞数。B类，用MTT测定法表示细胞活力和线粒体活性的细胞的相对荧光。在面板A和B中，显示的所有数据点均为四次独立测定的平均值±标准误差。

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