跳到主要内容
访问密钥 NCBI主页 MyNCBI主页 主要内容 主导航
美国生理学杂志Regul Integr Comp Physiol。2014年7月1日;307(1):R26–R34。
2014年4月30日在线发布。 数字对象标识:10.1152/ajpregu.00049.2014年
预防性维修识别码:项目经理4080277
PMID:24789994

母亲肥胖导致子代脂肪肝规划中的氧化应激和脂质稳态改变

摘要

胎儿发育期间母体营养环境的变化会影响后代晚年的代谢风险。动物模型表明,饮食诱导肥胖母鼠的后代会出现代谢并发症,包括非酒精性脂肪肝。在这项研究中,我们研究了幼年后代中导致非酒精性脂肪性肝病(NAFLD)发生的机制。在8周龄时,对C57BL/6J母鼠的雌性后代进行了研究,这些雌性后代分别喂食对照组和致肥饲料。我们研究了氧化应激和脂质代谢在后代脂肪肝形成中的作用;然而,肥胖母鼠的后代患有高胰岛素血症。肝脏中的氧化损伤标记物显著增加,抗氧化酶谷胱甘肽过氧化物酶-1水平降低。线粒体复合物I和II活性升高,而线粒体细胞色素水平升高c(c)显著降低,谷氨酸脱氢酶显著升高,提示线粒体功能障碍。肥胖母鼠后代的肝脏脂质含量也显著增加,这与PPARγ水平增加和甘油三酯脂肪酶降低有关。肥胖母鼠后代的肝糖原和蛋白质含量同时降低。总之,饮食诱导肥胖母鼠的后代在体重或身体成分出现任何差异之前,已经破坏了肝脏代谢,并发展为NAFLD。氧化应激可能在这些后代脂肪肝的进展中起到机制作用。

关键词:发育规划、非酒精性脂肪肝、氧化应激、代谢、母亲肥胖

代谢的流行在过去几十年里,疾病急剧增加,尤其是在发达国家和发展中国家。生活方式、饮食和体力活动的改变虽然促成了这种流行病,但并不能解释发病率的迅速增加。许多流行病学研究都强调了出生前和出生后营养暴露在增加晚年代谢疾病风险方面的重要性(2,15). 随着全球育龄期超重和肥胖女性人数的增加,肥胖的周期性、跨代传播令人担忧。已经建立了母亲肥胖模型,以了解导致这些后代肥胖的机制,这可能导致干预、治疗或预防。

肥胖的发展往往会导致进一步的代谢并发症,包括胰岛素抵抗和心血管疾病,统称为代谢综合征。代谢综合征的肝脏表现(20)非酒精性脂肪肝(NAFLD)是西半球最常见的肝病,患病率高达30%(19). 在几种母亲饮食诱导肥胖的动物模型中观察到成年后代(包括NAFLD)代谢综合征的特征(4,23,28).

已经提出了许多NAFLD的致病机制;然而,一个明确而一致的病因模型尚待阐明。肝脏脂质沉积主要归因于脂质稳态失调,这可能是由于脂肪组织脂肪酸输送增加、通过从头开始的脂肪生成增加脂肪酸合成、线粒体β-氧化减少或这些因素的综合作用所致(25). 在不同的代谢状态下,每个因素的相对重要性可能不同(9,10). NAFLD也与胰岛素抵抗有关,胰岛素抵抗被认为是其发病机制的核心(20). 然而,由于肥胖是胰岛素抵抗的有力预测因素,它混淆了对潜在机制的研究。

氧化应激被认为是胰岛素抵抗和肝脂肪变性发病的可能触发因素(8,29). 研究表明,氧化应激标记物与肥胖、胰岛素抵抗和糖尿病之间通过胰岛素信号的干扰有着广泛的联系(13,26,39). 在胰岛素抵抗发生之前,已经观察到胰岛素反应组织(肝脏和脂肪组织)中活性氧(ROS)生成和氧化应激途径的上调(22)可以通过饮食限制或补充抗氧化剂来抑制(5,7,16). 此外,据报道,肥胖糖尿病孕妇胎盘中存在氧化应激标记物和炎症基因表达(30)这表明氧化应激在为后代提供异常发育环境中起着作用,这可能会导致不利的代谢影响。

在本研究中,我们旨在研究饮食诱导肥胖小鼠后代中NAFLD发病的机制。迄今为止,研究母亲营养过剩对后代代谢疾病影响的动物研究已经对3个月及以上的后代进行了研究。然而,到了3个月大的时候,体重已经发生了变化,肥胖母鼠的后代比对照组更重更胖,从而混淆了潜在机制的研究(4,24,28). 因此,我们选择研究子代肥胖差异前的一个时间点——8周龄,以研究母亲饮食诱导肥胖导致肝脂肪变性的病因。这让我们更好地了解了NAFLD发病机制中多种机制因素之间的相互作用。鉴于新生脂肪生成在促进肝脏脂质沉积方面的重要性以及动物模型中氧化应激在胰岛素抵抗和肝脂肪变性发病中的意义,我们也在我们的营养规划模型中研究了这些促进NAFLD发病的机制。

材料和方法

动物模型。

所有研究均由当地道德委员会批准,并根据1986年《内政部动物(科学程序)法案》进行。初生雌性C57BL/6J小鼠可随意喂食标准的chow RM1饮食[~7%单糖,3%脂肪,50%多糖,15%蛋白质(wt/wt),10.74 kJ/g]或半合成的能量丰富的高适口性肥胖饮食[~10%单糖,20%动物猪油,28%多糖,23%蛋白质(wt%),28.43 kJ/g]补充甜炼乳(雀巢,英国)(~16%脂肪,33%单糖,15%蛋白质,13.7 kJ/g),并添加矿物质和维生素混合物AIN93G。这两种饮食都是从特殊饮食服务(英国威瑟姆)购买的。饮食6周后,筑坝(n个=每组11只),与喂食食物的雄性交配,进行首次妊娠。母鼠被允许产仔,第一胎在断奶后被扑杀。第一次怀孕确保了这些老鼠是经过验证的繁殖者。一周后,小鼠再次怀孕第1天妊娠的定义是塞子的外观。在整个怀孕和哺乳期,母鼠都在各自的实验饮食中维持。产仔量标准化为三只雄性和三只雌性出生后第3天在研究的剩余时间里,子代组[对照组和母亲肥胖组(Mat-Ob)]在21天大的时候断奶后食用标准食物(RM1)。每周记录体重和食物摄入量。在8周大时,在隔夜禁食后,后代被不断上升的CO杀死2浓度。对组织进行解剖、称重、快速冷冻,并在−80°C下储存,直至使用。本研究对雌性后代进行了评估。

人体成分的双能X射线吸收法测量。

在杀死后立即通过双能X射线吸收仪(DEXA,Lunar PIXImus密度计;GE Lunar,Madison,WI)对8周龄的后代进行身体成分分析。

血清分析。

在研究结束前一天上午9点至10点之间,使用血糖分析仪(OneTouch Ultra,LifeScan)从尾血中获取喂食后的血糖测量值。在隔夜禁食16小时后,对禁食血清进行所有分析。使用Mercodia胰岛素ELISA试剂盒(瑞典乌普萨拉Mercodia AB)测量空腹胰岛素。使用酶法测定空腹甘油三酯、游离脂肪酸(FFA)、高密度脂蛋白(HDL)和胆固醇(Dade Behring、Siemens Healthcare、Deerfield、IL)。低密度脂蛋白(LDL)是根据胆固醇、HDL和甘油三酯水平,使用公式LDL=胆固醇−HDL−(甘油三酸酯/2.2)计算得出的。

氧化应激ELISA分析。

使用8-羟基-2-脱氧鸟苷(8-OH-dG)EIA试剂盒(StressMarq Biosciences编号SKT-120-96)来确定血清8-OH-dG作为DNA损伤的标记。使用3-硝基酪氨酸(3NT)ELISA试剂盒(Abcam MitoSciences编号ab116691;Abcam,马萨诸塞州剑桥市)测量肝蛋白氧化。使用OxiSelect 4-羟基壬醛(4HNE)加合物ELISA试剂盒(Cell Biolabs,编号STA-338)测量肝脏脂质过氧化。使用酶活性微量测定试剂盒(分别为Abcam编号ab109721、ab109908和ab109911)在分离的肝线粒体(编号ab110170)中测量线粒体复合体I、II和IV的活性。所有试剂盒均按照制造商的协议使用。

蛋白质印迹分析。

该方法已在前面描述过(35). 简而言之,将肝蛋白裂解物标准化为2 mg/ml的浓度,并使用SDS-PAGE解析40μg总蛋白。表1列出了本研究中使用的主要抗体。抗体在1×TBS、0.1%吐温20(含1%脱脂脱水牛奶或5%牛血清白蛋白)中稀释。使用辣根过氧化物酶结合二级抗体[抗兔/鼠/羊抗体(英国纽马克特Stratech Jackson ImmunoResearch)]。使用AlphaEase软件(AlphaInnotech,San Leandro,CA)定量蛋白质表达。

表1。

本研究中使用的抗体

抗体来源稀释单位
5-脂氧合酶兔子1:1000细胞信号,编号3289
乙酰辅酶A羧化酶兔子1:1000细胞信号,编号3676
Akt1公司鼠标1:1000细胞信号,编号2967
阿克2兔子1:5000细胞信号,编号2962
ATGL公司兔子1:1000细胞信号,编号2439
过氧化氢酶兔子1:10000Abcam,编号ab1877
COX4公司兔子1:1000细胞信号,编号4844
铜锌超氧化物歧化酶山羊1:20000研发系统,编号AF3787
密码4a14鼠标1:10000圣克鲁斯生物技术公司,编号sc-271983
细胞色素c(c)鼠标1:1000Abcam,编号ab13575
电子NOS兔子1:1000细胞信号,编号9572
脂肪酸合成酶兔子1:10000细胞信号,编号3180
G6酶山羊1:500圣克鲁斯生物技术,编号sc-27198
谷氨酸脱氢酶1/2兔子1:1000细胞信号,编号9828
谷胱甘肽还原酶兔子1:1000Abcam,编号ab16801
GPx1型山羊1:2000研发系统,编号AF3798
GSK3α/β鼠标1:200圣克鲁斯生物技术公司,编号sc-7291
血红素加氧酶1兔子1:2000Abcam,编号ab13243
iNOS系统兔子1:1000细胞信号,编号2977
IRS1系统兔子1:1000Upstate(默克Millipore),编号06-248
红外β兔子1:200圣克鲁斯生物技术公司,编号sc-711
脂蛋白脂肪酶鼠标1:1000Abcam,编号ab21356
锰超氧化物歧化酶兔子1:10000Upstate(默克Millipore),编号06-984
氮氧化物4兔子1:500Abcam编号ab60940
p110β兔子1:1000圣克鲁斯生物技术公司,编号sc-602
p47-呼气山羊1:200圣克鲁斯生物技术公司,编号sc-23492
p85α兔子1:1000Upstate(默克Millipore),编号06-195
PEPCK公司兔子1:1000圣克鲁斯生物技术公司,编号:sc-32879
磷蛋白Akt(Ser-437)兔子1:1000细胞信号,编号4058
磷酸化GSK3α/β(Ser-21/9)兔子1:1000细胞信号,编号9331
磷酸-IRS1(Tyr-608)兔子1:1000Upstate(默克Millipore),编号09-432
PKCζ兔子1:1000圣克鲁斯生物技术公司,编号sc-216
PPARα兔子1:200圣克鲁斯生物技术公司,编号sc-9000
PPARγ兔子1:1000细胞信号,编号2435
丙酮酸脱氢酶兔子1:1000细胞信号,编号2784
SREBP1号机组兔子1:200圣克鲁斯生物技术公司,编号sc-8984
肿瘤坏死因子α兔子1:1000细胞信号,编号3707
黄嘌呤氧化酶兔子1:200圣克鲁斯生物技术公司,编号sc-20991

脂肪甘油三酯脂肪酶;COX4,细胞色素-c(c)氧化酶复合物IV;铜锌超氧化物歧化酶;CYP4A14,细胞色素P(P)-450 4A14;内皮型一氧化氮合酶;G6Pase,葡萄糖-6磷酸酶;GPx1,谷胱甘肽过氧化物酶-1;糖原合成酶激酶;诱导型一氧化氮合酶;IRS1,胰岛素受体底物-1;胰岛素受体β;锰超氧化物歧化酶;NOX4、NADPH氧化酶4;磷酸烯醇丙酮酸羧激酶;过氧化物酶体增殖物激活物受体;SREBP1,固醇调节元件结合蛋白1。

肝糖原测定。

用淀粉葡萄糖苷酶测定肝脏糖原含量(31). 将冷冻的肝组织(100mg)在1ml冰冷的去离子水中匀浆。将匀浆液(100μl)与100μl 50 mM醋酸盐缓冲液(pH 4.5)一起培养10分钟,在55°C下加入或不加入70单位淀粉葡萄糖苷酶和200μl去离子水。加入300 mM硫酸锌(300μl)和300 mM氢氧化钡(300μl),混合样品并在2000年离心使样品脱蛋白10分钟。收集上清液,并使用YSI 2300 STAT PLUS葡萄糖分析仪(Yellow Springs Instruments Life Sciences,Yellow Springs,Ohio)分析葡萄糖浓度。相对于组织重量的糖原含量是通过从肝匀浆(用酶孵育的匀浆)中存在的总葡萄糖量减去游离葡萄糖(无酶孵煮的匀浆。

肝脂质测定。

根据改良的Folch方法提取肝脏脂质(12). 用1 ml比例为2:1的氯仿:甲醇混合物(英国多塞特Sigma-Aldrich)彻底均质冷冻肝组织(100 mg)。然后将去离子水(200μl)添加到混合物中,旋涡并摇晃10分钟。样品在16100离心10分钟生成独特的有机和水相。将较低有机相(500μl)收集到预先称重的玻璃管中,并使用旋转蒸发器在37°C下干燥2 h,然后称量剩余的脂质含量。

肝脏组织学。

根据标准方案,肝脏切片用油红O染色以测定脂质含量。简单地说,将肝脏固定在10%福尔马林中,将石蜡包埋,切成7μm的切片,然后浸泡在30%蔗糖溶液中过夜。切片在60%异丙醇中冲洗,在新制备的油红O溶液中浸泡15分钟(Sigma-Aldrich,英国),再在60%伊索前列醇中冲洗一次,细胞核在迈尔苏木精中复染。图像是在倒置光学显微镜上拍摄的(奥林巴斯BX41;奥林巴斯,英国南海岸)。使用Adobe Photoshop Elements(Adobe Systems Software,Dublin,Ireland)对每个样本的两个部分的两个视场进行分析(n个=每组7人)。使用魔术棒工具选择脂滴(红色),并量化为视野中阳性染色像素的百分比。

统计分析。

数据分析来自每窝一个雌性后代;因此,n个指每组的窝数。数据由未配对学生的t吨-除非另有说明,否则使用Prism 5(GraphPad,La Jolla,CA)进行测试。蛋白质表达数据以对照组±SE的平均表达百分比表示。所有数据均以平均值±SE表示。对于所有数据,P(P)<0.05被认为具有统计学意义。

结果

后代表型。

母亲的饮食不会影响孩子的体重出生后第3天(对照组1.76±0.06 g vs.Mat-Ob 1.63±0.12 g,n个=11)或产仔数(对照组7.6±0.3 vs.Mat-Ob 6.0±0.7,n个= 11). 8周龄时,对照组和Mat-Ob组后代的体重、身体成分和肝脏重量没有显著差异(表2). 断奶至第8周两个实验组之间相似(对照组107.6±4.0 g vs.Mat-Ob 111.8±3.4 g,n个=8和n个分别=7)。在这个年龄段,两个后代组的葡萄糖、甘油三酯和FFA水平没有显著差异。与对照组相比,Mat-Ob后代的空腹总胆固醇和HDL胆固醇显著降低(P(P)< 0.05) (表3). 然而,与对照组相比,Mat-Ob组的空腹胰岛素水平显著升高(图1A类,P(P)< 0.05).

表2。

8周龄雌性的身体成分

控制Mat-Ob公司
总体重,g20.85 ± 0.9819.16 ± 0.78
脂肪质量,g3.24 ± 0.173.20 ± 0.26
精益质量,g15.04 ± 0.1214.77 ± 0.61
骨量密度,g/cm20.04 ± 0.000.06 ± 0.02
%脂肪质量17.74±0.6317.83 ± 0.78
%精益质量83.03 ± 0.6982.08 ± 0.68
肝脏重量,g1.12 ± 0.040.98 ± 0.06
%肝脏重量5.37 ± 0.044.90 ± 0.08

数据以平均值±SE表示;n个=每组6人。Mat Ob,母亲肥胖。

表3。

8周龄女性的血清特征

控制Mat-Ob公司
总胆固醇,mmol/l2.55 ± 0.121.93 ± 0.07*
高密度脂蛋白胆固醇,mmol/l0.99 ± 0.040.85 ± 0.04*
低密度脂蛋白胆固醇,mmol/l0.94 ± 0.070.76 ± 0.06
甘油三酯,mmol/l0.75 ± 0.050.70 ± 0.11
游离脂肪酸(毫摩尔/升)1.03 ± 0.080.87 ± 0.05
葡萄糖(喂食),mmol/l9.5 ± 1.110.2 ± 1.1
葡萄糖(禁食),mmol/l6.7 ± 0.35.9 ± 0.6

数据以平均值±SE表示;n个=每组6个,

*P(P)< 0.05. 高密度脂蛋白;低密度脂蛋白;游离脂肪酸。
保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh6014148478001.jpg

胰岛素和氧化应激标记物。A类:空腹血清胰岛素浓度。B类:血清8-羟基-2-脱氧鸟苷(8-OH-dG)浓度。C类:肝脏3-硝基酪氨酸(3NT)浓度。:肝脏4-羟基壬醛(4HNE)浓度。E类:肝肿瘤坏死因子-α(TNF-α)蛋白水平。数据以控制(白色条)和母亲肥胖(Mat-Ob)(灰色条)后代的平均值±SE表示。n个=每组6-8人*P(P)< 0.05, **P(P)< 0.01.

肝脏胰岛素信号。

我们研究了高胰岛素血症是否与肝脏胰岛素信号蛋白表达受损有关。然而,在8周龄母体肥胖对子代肝脏关键胰岛素信号分子的反应中没有发现差异(表4).

表4。

8周龄女性肝组织中胰岛素信号蛋白的表达

表达式,%平均值控制控制Mat-Ob公司
红外β100 ± 3102 ± 4
IRS1系统100 ± 15120 ± 15
p-IRS1(序列-307)100 ± 16109 ± 15
阿克特1100 ± 1091 ± 11
Akt2公司100 ± 499 ± 5
p-Akt(丝氨酸-473)100 ± 2395 ± 30
p110β100 ± 18110 ± 11
p85α100±492 ± 7
PKCζ100 ± 4103 ± 5

数据以平均值±SE表示;n个=每组6人。

氧化应激损伤。

血清8-OH-dG和肝脏3NT分别作为DNA和蛋白质氧化损伤的标记物,在Mat-Ob后代中显著增加(图1,B类C类,P(P)<0.01和P(P)分别<0.05)。肝脏4HNE是脂质氧化的标志物,在这个年龄段,两个实验组之间保持不变(图1). 与对照组相比,Mat-Ob子代的肝脏TNF-α显著升高(图1E类,P(P)< 0.05).

氧化稳态。

参与氧化稳态的蛋白质被研究为氧化应激增加的可能因素。与对照组相比,8周龄Mat-Ob雌性大鼠的肝脏NADPH氧化酶4(NOX4)显著降低(图2A类,P(P)< 0.01). 抗氧化酶谷胱甘肽过氧化物酶-1(GPx1)也显著降低(P(P)<0.001),过氧化氢酶水平显著增加(P(P)与对照组相比,Mat-Ob组<0.05)(图2B类). 在研究的其他蛋白质中未观察到显著差异。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh6014148478002.jpg

氧化稳态。A类:氧化和硝化酶的蛋白质水平。内皮一氧化氮合酶;诱导型一氧化氮合酶;XO,黄嘌呤氧化酶;NOX4、NADPH氧化酶4。B类:抗氧化酶的蛋白质水平。锰超氧化物歧化酶;GPx1,谷胱甘肽过氧化物酶-1;GR,谷胱甘肽还原酶;铜锌超氧化物歧化酶;HO1、血红素加氧酶-1。C类:线粒体复合体活性。:线粒体酶的蛋白质水平。COX4,细胞色素-c(c)氧化酶复合物IV;塞浦路斯c(c),细胞色素c(c); 谷氨酸脱氢酶。数据以控制(白色条)和Mat-Ob(灰色条)后代的平均值±SE表示。n个=每组6-8个*P(P)< 0.05, **P(P)< 0.01, ***P(P)< 0.001.

线粒体氧化呼吸解偶联也可能是自由基的来源。与对照组相比,Mat-Ob后代的肝线粒体复合物I和II活性显著增加(图2C类,P(P)<0.001和P(P)分别<0.05)。虽然复合物IV的表达和活性没有不同,但我们观察到细胞色素的表达显著降低c(c)与对照组相比,饮食诱导肥胖母鼠后代中复杂的III-IV电子穿梭(图2,P(P)< 0.01). 谷氨酸脱氢酶(GDH)是完整线粒体的标志物,在该组中升高(图2,P(P)< 0.05).

肝脏脂质代谢。

我们测量了参与脂肪生成和脂肪分解的蛋白质水平,以确定肝脏脂质稳态的可能变化。PPARγ显著上调(P(P)<0.05),乙酰辅酶A羧化酶(ACC)蛋白水平增加了49%(P(P)= 0.08) (图3A类)与对照组相比,Mat-Ob子代的肝脏甘油三酯脂肪酶(ATGL)显著降低(P(P)< 0.05) (图3B类). 在研究的其他蛋白质中没有发现显著差异。根据脂质分析和组织学脂质含量分析,与8周龄的对照组相比,脂质稳态的这些变化与Mat-Ob肝脏中总脂质含量的增加有关(P(P)分别<0.05和0.001,图3,C–E类).

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh6014148478003.jpg

肝脏脂质代谢。A类:脂肪生成酶的蛋白质水平。ACC,乙酰辅酶A羧化酶;丙酮酸脱氢酶;过氧化物酶体增殖物激活物受体γ;脂肪酸合成酶;SREBP1,固醇调节元件结合蛋白1。B类:脂解酶的蛋白质水平。过氧化物酶体增殖物激活物受体α;脂蛋白脂肪酶;脂肪甘油三酯脂肪酶;5-LO,5-脂氧合酶;CYP4A14,细胞色素P(P)-450 4A14。C类:从100 mg肝组织中测定的总肝脏脂质含量。:具有代表性的Oil-red-O(ORO)和苏木精-伊红(H&E)组织学图像。比例尺为50μm。E类:脂滴染色定量。数据以控制(白色条)和Mat-Ob(灰色条)后代的平均值±SE表示。n个=每组6-8人*P(P)<0.05时***P(P)< 0.001.

肝糖原代谢。

与对照组相比,Mat-Ob组的总禁食肝糖原含量显著降低(图4A类,P(P)< 0.05). 糖原合成酶激酶-3(GSK-3)α和β蛋白水平在两个实验组之间相似,其磷酸化水平也没有差异(图4B类). 与对照组相比,Mat-Ob组中磷酸烯醇丙酮酸羧激酶(PEPCK)和葡萄糖-6-磷酸酶(G6Pase)的表达水平降低,这是关键的葡萄糖异生酶(图4C类,P(P)分别为0.08和0.07)。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh6014148478004.jpg

肝糖原代谢。A类:肝糖原含量。B类:总糖原合成酶激酶-3亚型的蛋白质水平及其磷酸化水平。C类:糖异生酶的蛋白质水平。磷酸烯醇丙酮酸羧激酶;G6Pase,葡萄糖-6磷酸酶。数据以控制(白色条)和Mat-Ob(灰色条)后代的平均值±SE表示。n个=每组6-8人*P(P)< 0.05.

肝脏蛋白质含量。

与对照组相比,雌性Mat-Ob子代的肝脏总蛋白含量略有下降,但具有统计学意义(对照组为0.28±0.01 mg,Mat-Ob0.25±0.00 mg蛋白/mg组织,n个=6和n个分别=5,P(P)< 0.05).

讨论

怀孕期间肥胖在发达国家和发展中国家都是一个日益严重的问题。现在很明显,孕期母亲肥胖会增加后代患代谢性疾病的风险,包括糖耐量受损、胰岛素抵抗、肥胖和NAFLD。这种编程背后的机制尚不清楚,这些病理学之间的密切关系使得很难解剖出原发性代谢缺陷。因此,我们合理地认为,为了确定NAFLD的编程机制,我们需要在糖耐量异常和肥胖发生之前的早期研究后代。

我们发现,在8周龄时,对照组和Mat-Ob组的后代在体重或肥胖方面没有差异。因此,任何代谢差异都可以归因于代谢组织的差异编程。肥胖发病前Mat-Ob后代的高胰岛素血症表明他们在这个年龄段是胰岛素抵抗的。这可能是由脂肪组织中的胰岛素抵抗引起的(11),因为在这个年龄段测量的关键胰岛素信号蛋白在肝脏的表达没有差异,表明肝脏对胰岛素敏感。Mat-Ob后代循环胆固醇水平降低的意义尚不清楚。然而,几乎没有证据表明血清胆固醇水平与肝脏脂肪沉积之间存在联系。一项研究报告了2型糖尿病患者肝脂肪变性与HDL胆固醇水平降低之间的关系(37)而另一项研究报告称,在纠正胰岛素抵抗后,这种关联变得不显著(17)这表明胰岛素抵抗是肝脏脂质沉积的一个重要因素。

我们认为,外周胰岛素抵抗导致Mat-Ob子代高胰岛素血症,促进肝脏基因(包括PPARγ)的转录上调,以促进肝脏从头开始的脂肪生成。在胰岛素治疗刺激PPARγ活性的情况下,先前已证明PPARγ活动的激素调节(40,41)此外,它的过度表达导致了肝脏脂肪变性(42). 除了刺激脂肪生成外,胰岛素还通过抑制脂肪分解促进脂质积累。在饮食诱导的肥胖母鼠的后代中,启动脂质水解第一步的酶ATGL的表达减少可能有助于肝脏脂质积累(14). 据报道,胰岛素通过mTOR途径下调哺乳动物脂肪细胞中ATGL的转录(6). 因此,饮食诱导肥胖母鼠后代早期出现外周胰岛素抵抗可能是通过调节正常条件下脂肪组织中主要表达的基因而导致肝甘油三酯积聚的驱动因素。

暴露于母亲肥胖的后代的肝脏胰岛素敏感性在12周龄时下降,此时胰岛素信号通路的关键成分(包括胰岛素受体和IRS1)的表达降低(1,21,28); 这可能会进一步加剧脂质积聚和肝脏损伤。由于我们在循环和肝脏中观察到氧化损伤标志物升高,我们进一步研究了氧化失调是否会导致NAFLD和胰岛素抵抗的后期发展;这证实了通过减少GPx1的表达,肝脏抗氧化能力受损。已观察到HFD喂养后的氧化应激先于胰岛素抵抗(22)可以通过在啮齿类动物中补充抗氧化剂来阻止其发展(5,7,16). 在编程模型中早在囊胚阶段就观察到炎症(34). 因此,本研究中观察到的肝脏TNF-α升高为氧化应激增强状态提供了进一步证据。在宫内暴露于HFD的猕猴胎肝中也报告了氧化损伤标记物8-OH-dG和4HNE增加(23).

值得注意的是,动物模型在饮食组成、时间和暴露时间方面的差异混淆了单一机械编程模型的发展。迄今为止,大多数关于母亲营养过剩对肝脏影响的研究都使用了HFD。在这项研究中,母鼠被喂食高脂肪、高糖的食物,以更好地反映西方产肥环境。之前已经注意到,喂食HFD和“自助餐厅”西方饮食的啮齿动物的代谢反应存在差异,尽管这两种饮食挑战都会导致肥胖和肝脂肪变性,但食堂喂养的大鼠脂肪和肝组织炎症增加(32). 因此,不能忽视来自不同饮食挑战的编程机制的特殊性,需要进一步研究。尽管如此,我们目前的研究结果与氧化应激相一致,氧化应激是饮食诱导肥胖母亲的后代易患NAFLD的早期机制。目前的研究结果表明,母亲高脂肪、高糖喂养导致的慢性氧化损伤是一种程序性反应,与肥胖增加无关,当与肝脏脂质沉积相结合时,可导致胰岛素抵抗、进行性肝脂肪变性和肝损伤。

在我们的母亲饮食诱导肥胖模型中,线粒体功能障碍可能是活性氧的来源之一。而Bruce等人()以前曾报道过HFD喂养的母鼠15周龄后代的肝脏线粒体复合体I、II/III和IV活性降低,在8周龄时,我们观察到Mat-Ob后代复合体I和II活性随着下游电子载体细胞色素表达的减少而增加c(c)。这种跨电子传输链的活性解耦可能会导致电子泄漏和自由基生成增加。此外,Mat-Ob子代肝线粒体中大量表达的谷氨酸脱氢酶的表达增加(27). 母亲饮食诱导的肥胖导致的肝脏升高可能意味着功能受损或肝细胞坏死导致的代偿性线粒体增殖(尽管本研究未对后者进行研究)。因此,我们假设线粒体功能障碍加上抗氧化能力降低是导致早期抗氧化环境的原因。过氧化氢酶是一种抗氧化酶,已知在氧化应激反应中上调(36). 因此,这种蛋白质在Mat-Ob肝脏中的升高表明对ROS暴露有进行性的代偿反应。有证据表明NAFLD的氧化还原中心致病理论,其中氧化还原状态/ROS可以调节脂质代谢以及胰岛素敏感性(33). 此外,线粒体代谢增加和复合III生成的ROS被发现可诱导PPARγ活性和脂肪细胞分化(38). PPARγ在肝细胞中的自由基生物学值得进一步研究,但表明氧化失调在NAFLD的潜在发病机制中发挥着进一步的作用。

我们观察到Mat-Ob子代的肝糖原和蛋白质减少。在喂食HFD的大鼠中也观察到了这种情况,其中肝甘油三酯和糖原含量之间的负相关与胰岛素抵抗有关(18)提示这是维持肝细胞完整性和功能的代偿反应。通过ATGL减少脂肪分解,通过PEPCK和G6Pase减少糖异生,表明糖原是Mat-Ob后代的主要能量来源。

观点和意义

总之,我们的数据提供了证据,证明在早期发育阶段暴露于肥胖环境会使后代对非酒精性脂肪肝的易感性增加。我们提出了一种模型,在该模型中,饮食诱导肥胖母鼠的后代会因外周胰岛素抵抗而出现早期高胰岛素血症,从而刺激肝脏脂质沉积。肝脏线粒体呼吸和氧化应激的解耦进一步调节脂质代谢,导致肝脏胰岛素抵抗的发生,随着年龄的增长,肝脏脂肪变性加重。因此,高胰岛素血症和活性氧可能是预防易感人群NAFLD的早期治疗靶点。这项研究强调了怀孕和哺乳期间均衡饮食对后代长期健康的重要性。

赠款

这项研究得到了Wellcome Trust(致M.Z.Alfaradhi)、生物技术和生物科学研究委员会(致D.S.Fernandez-Twinn:BB/F015364/1型)英国心脏基金会(致M.S.Martin-Gronert和S.E.Ozanne)。S.E.Ozanne是剑桥大学MRC代谢疾病科的成员。导致这些结果的研究得到了欧盟第七框架计划的资助(FP7/2007–2013),赠款协议编号为。289346.

披露

提交人未声明任何利益冲突,无论是财务还是其他方面。

作者贡献

作者贡献:M.Z.A.、D.S.F.-T、M.S.M.-G和S.E.O.研究的概念和设计;M.Z.A.、D.S.F.-T.和M.S.M.-G.进行了实验;M.Z.A.、D.S.F.-T.和M.S.M.-G.分析数据;M.Z.A.、D.S.F.-T.、B.M.、A.L.F.和S.E.O.解释了实验结果;M.Z.A.准备的数字;M.Z.A.起草的手稿;M.Z.A.、D.S.F.-T.、M.S.M.-G.、B.M.、A.L.F.和S.E.O.编辑和修订的手稿;M.Z.A.、D.S.F.-T.、M.S.M.-G.、B.M.、A.L.F.和S.E.O.批准了手稿的最终版本。

致谢

作者感谢Keith Burling博士的血清分析、Keli Phillips的肝脏组织学以及Adrian Wayman的技术专长。

参考文献

1Ashino NG、Saito KN、Souza FD、Nakutz FS、Roman EA、Velloso LA、Torsoni AS、Torsoni MA。孕期和哺乳期母亲高脂肪喂养会使小鼠后代易患分子胰岛素抵抗和脂肪肝.坚果生物化学杂志 23: 341–348, 2012 [公共医学][谷歌学者]
2Boney CM、Verma A、Tucker R、Vohr BR。儿童代谢综合征:与出生体重、母亲肥胖和妊娠糖尿病的关系.儿科 115:e290–e2962005年[公共医学][谷歌学者]
三。Bruce KD、Caganpang FR、Argenton M、Zhang J、Ethirajan PL、Burdge GC、Bateman AC、Clough GF、Poston L、Hanson MA、McConnell JM、Byrne CD。母亲高脂肪喂养导致成年小鼠后代脂肪性肝炎,涉及线粒体功能障碍和脂肪生成基因表达改变.肝病学 50:1796–18082009年[公共医学][谷歌学者]
4Buckley AJ、Keseru B、Briody J、Thompson M、Ozanne SE和Thompson-CH。高脂饮食大鼠雄性后代体内成分和代谢的变化.新陈代谢 54:500–507,2005年[公共医学][谷歌学者]
5Campion J、MilagroFI、Fernandez D、Martinez JA。在食堂肥胖模型中添加抗坏血酸诱导的差异基因表达和肥胖减轻.物理生物化学杂志 62: 71–80, 2006 [公共医学][谷歌学者]
6Chakrabarti P、Kim JY、Singh M、Shin YK、Kim J、Kumbring J、Wu Y、Lee MJ、Kirsch KH、Fried SK、Kandror KV。胰岛素通过进化保守的mTORC1-Egr1-ATGL介导的途径抑制脂肪细胞的脂肪分解.分子细胞生物学 33: 3659–3666, 2013[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
7Dandona P、Mohanty P、Ghanim H、Aljada A、Browne R、Hamouda W、Prabhala A、Afzal A、Garg R。肥胖者饮食限制和体重减轻对白细胞、脂质过氧化和蛋白质羰基化产生活性氧的抑制作用.临床内分泌与代谢杂志 86: 355–362, 2001 [公共医学][谷歌学者]
8白天CP,James OF。脂肪性肝炎:两次“袭击”的故事? 胃肠病学 114:842–8451998年[公共医学][谷歌学者]
9Diraison F,Beylot M。人类肝脏脂肪生成和重消毒在甘油三酯分泌和FFA重消毒中的作用.美国生理内分泌代谢杂志 274:E321–E3271998年[公共医学][谷歌学者]
10Diraison F、Moulin P、Beylot M。非酒精性脂肪性肝病患者肝脏新生脂肪生成和血浆非酯化脂肪酸再酯化对血浆甘油三酯合成的影响.糖尿病Metab 29: 478–485, 2003 [公共医学][谷歌学者]
11Fernandez-Twinn DS、Alfaradhi MZ、Martin-Gronert MS、Duque-Guimaraes DE、Piekarz A、Ferland-McCollough D、Bushell M、Ozanne SE。肥胖小鼠后代脂肪组织中IRS-1的下调通过转录后机制由细胞自主编程.摩尔金属 : 325–333, 2014[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
12Folch J、Lees M、Sloane Stanley GH。一种从动物组织中分离纯化总脂质的简便方法.生物化学杂志 226: 497–509, 1957 [公共医学][谷歌学者]
13Furukawa S、Fujita T、Shimabukuro M、Iwaki M、Yamada Y、Nakajima Y、Nagayama O、Makishima M、Matsuda M、Shimomura I。肥胖患者氧化应激增加及其对代谢综合征的影响.临床研究杂志 114: 1752–1761, 2004[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
14Haemmerle G、Lass A、Zimmermann R、Gorkiewicz G、Meyer C、Rozman J、Heldmaier G、Maier R、Theussl C、Eder S、Kratky D、Wagner EF、Klingenspor M、Hoefler G、Zechner R。缺乏脂肪甘油三酯脂肪酶小鼠的脂肪分解缺陷和能量代谢改变.科学类 312: 734–737, 2006 [公共医学][谷歌学者]
15Hochner H、Friedlander Y、Calderon-Margalit R、Meiner V、Sagy Y、Avgil-Tsadok M、Burger A、Savitsky B、Siscovick DS、Manor O。孕妇孕前体重指数和妊娠期体重增加与成年子女心脏代谢危险因素的关系:耶路撒冷围产期家庭随访研究.循环 125: 1381–1389, 2012[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
16Hotamisligil GS、Arner P、Caro JF、Atkinson RL、Spiegelman BM。肥胖和胰岛素抵抗患者脂肪组织肿瘤坏死因子-α表达增加.临床研究杂志 95: 2409–2415, 1995[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
17Kantartzis K、Rittig K、Cegan A、Machann J、Schick F、Balletshofer B、Fritsche A、Schleicher E、Haring HU、Stefan N。脂肪肝与循环HDL2和HDL3亚组分的改变独立相关.糖尿病护理 31: 366–368, 2008 [公共医学][谷歌学者]
18Kusunoki M、Tsutsumi K、Hara T、Ogawa H、Nakamura T、Miyata T、Sakakibara F、Fukuzawa Y、Suga T、Kakumu S、Nakaya Y。脂蛋白脂肪酶激活剂NO-1886治疗高脂饮食大鼠肝脏脂质和糖原含量与胰岛素抵抗的关系.新陈代谢 51: 792–795, 2002 [公共医学][谷歌学者]
19Lazo M、Clark JM。非酒精性脂肪肝的流行病学:全球视角.赛明肝病 28: 339–350, 2008 [公共医学][谷歌学者]
20Marchesini G、Brizi M、Bianchi G、Tomassetti S、Bugianesi E、Lenzi M,McCullough AJ、Natale S、Forlani G、Melchionda N。非酒精性脂肪肝:代谢综合征的特征.糖尿病 50: 1844–1850, 2001 [公共医学][谷歌学者]
21Martin-Gronert MS,Fernandez-Twinn DS,Poston L,Ozanne SE。肥胖小鼠雄性后代肝脏胰岛素信号的改变.J Dev起源健康疾病 1: 184–191, 2010 [公共医学][谷歌学者]
22松泽-纳加塔N、高村T、安藤H、中村S、千田S、三穗H、大田T、横山M、本田M、宫本康夫K、Kaneko S。氧化应激增加先于高脂饮食诱导的胰岛素抵抗和肥胖的发生.新陈代谢 57: 1071–1077, 2008 [公共医学][谷歌学者]
23McCurdy CE、Bishop JM、Williams SM、Grayson BE、Smith MS、Friedman JE、Grove KL。母亲的高脂肪饮食引发非人类灵长类动物胎儿肝脏的脂肪毒性.临床研究杂志 119: 323–335, 2009[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
24Mouralidarane A、Soeda J、Visconti-Pugmire C、Samuelsson AM、Pombo J、Maragkoudaki X、Butt A、Saraswati R、Novelli M、Fusai G、Poston L、Taylor PD、Oben JA。母亲肥胖通过小鼠先天免疫功能障碍为后代规划非酒精性脂肪肝.肝病学 58: 128–138, 2013 [公共医学][谷歌学者]
25穆索·G、甘比诺·R、卡萨德·M。非酒精性脂肪性肝病(NAFLD)患者肝脏脂质代谢的最新研究进展.程序脂质研究 48: 1–26, 2009 [公共医学][谷歌学者]
26西川T、Kukidome D、Sonoda K、Fujisawa K、Matsuhisa T、Motoshima H、Matsumura T、Araki E。线粒体ROS生成在胰岛素抵抗发病机制中的作用.糖尿病研究临床实践 77 补充1:S161–S164,2007年[公共医学][谷歌学者]
27O'Brien PJ、Slaugter MR、Polley SR、Kramer K。谷氨酸脱氢酶作为大鼠急性肝损伤血液生物标志物的优势.实验室动画 36:2002年313月至321日[公共医学][谷歌学者]
28Oben JA、Mouralidarane A、Samuelsson AM、Matthews PJ、Morgan ML、McKee C、Soeda J、Fernandez-Twinn DS、Martin-Gronert MS、Ozanne SE、Sigala B、Novelli M、Poston L、Taylor PD。孕期和哺乳期母亲肥胖可导致小鼠后代非酒精性脂肪肝的发生.肝脏病学杂志 52:913–9202010年[公共医学][谷歌学者]
29佩塞尔·D·。线粒体在非酒精性脂肪性肝病中的作用.胃肠肝素杂志 22 补充1:S20–S272007年[公共医学][谷歌学者]
30Radaelli T、Varastehpour A、Catalano P、Hauguel-de Mouzon S。妊娠期糖尿病诱导胎盘基因参与慢性应激和炎症途径.糖尿病 52: 2951–2958, 2003 [公共医学][谷歌学者]
31Roehrig KL,Allred JB公司。肝糖原测定的直接酶法.Ana Biochem公司 58: 414–421, 1974 [公共医学][谷歌学者]
32Sampey BP、Vanhoose AM、Winfield HM、Freemerman AJ、Muehlbauer MJ、Fueger PT、Newgard CB、Makowski L。自助餐厅饮食是伴有肝脏和脂肪炎症的人类代谢综合征的有力模型:与高脂肪饮食的比较.肥胖(银泉) 19:2011年11月9日至11月17日[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
33Serviddio G、Bellanti F、Vendemiale G。医学自由基生物学:从非酒精性脂肪性肝病中学习.自由基生物医学 65摄氏度: 952–968, 2013 [公共医学][谷歌学者]
34Shankar K、Zhong Y、Kang P、Lau F、Blackburn ML、Chen JR、Borengasser SJ、Ronis MJ、Badger TM。母亲肥胖促进大鼠子宫和胚泡中的促炎信号.内分泌学 152: 4158–4170, 2011[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
35Shelley P、Martin-Gronert MS、Rowlerson A、Poston L、Heales SJ、Hargreaves IP、McConnell JM、Ozanne SE、Fernandez-Twinn DS。肥胖小鼠成年后代骨骼肌胰岛素信号和线粒体复合体II-III连接活性的改变.美国生理学杂志Regul Integr Comp Physiol 297:R675–R6812009年[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
36Sindhu RK、Roberts CK、Ehdaie A、Zhan CD、Vaziri ND。主动脉缩窄对主动脉抗氧化酶和NADPH氧化酶蛋白表达的影响.生命科学 76: 945–953, 2005 [公共医学][谷歌学者]
37托莱多FG、斯奈德曼AD、凯利DE。肝脂肪变性(脂肪肝)对2型糖尿病血脂异常严重程度和组成的影响.糖尿病护理 29: 1845–1850, 2006 [公共医学][谷歌学者]
38Tormos KV、Anso E、Hamanaka RB、Eisenbart J、Joseph J、Kalyanaraman B、Chandel NS。线粒体复合体III ROS调节脂肪细胞分化.单元格元 14: 537–544, 2011[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
39Urakawa H、Katsuki A、Sumida Y、Gabazza EC、Murashima S、Morioka K、Maruyama N、Kitagawa N、Tanaka T、Hori Y、Nakatani K、Yano Y、Adachi Y。男性氧化应激与肥胖和胰岛素抵抗相关.临床内分泌与代谢杂志 88:4673–46762003[公共医学][谷歌学者]
40Vidal-Puig A、Jimenez-Linan M、Lowell BB、Hamann A、Hu E、Spiegelman B、Flier JS、Moller DE。营养和肥胖对啮齿动物PPARγ基因表达的调节.临床研究杂志 97:2553–25611996年[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
41Vidal-Puig AJ、Considine RV、Jimenez-Linan M、Werman A、Pories WJ、Caro JF、Flier JS。过氧化物酶体增殖物激活受体基因在人体组织中的表达。肥胖、减肥以及胰岛素和糖皮质激素的调节作用.临床研究杂志 99: 2416–2422, 1997[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
42Yu S、Matsuse K、Kashiredy P、Cao WQ、Yeldandi V、Yeldindi AV、Rao MS、Gonzalez FJ、Reddy JK。过氧化物酶体增殖物激活受体γ1(PPARγ1)过度表达导致小鼠肝脏脂肪细胞特异性基因表达和脂肪性脂肪变性.生物化学杂志 278: 498–505, 2003 [公共医学][谷歌学者]

文章来自美国生理学杂志-调节、综合和比较生理学由以下人员提供美国生理学会