美国国旗

美国政府的官方网站

显示设置:

每页的项目数

PMC全文搜索结果

项目:6

1
图1

图1。来源:程序性死亡-1诱导的单核细胞产生白细胞介素-10在HIV感染期间损害CD4+T细胞激活。

CD16中PD-1表达上调和CD16+HIV感染期间的单核细胞亚群。()PD-1在总单核细胞(CD14)上表达的MFI+细胞),CD14+CD16型单核细胞和CD14+CD16型+病毒血症患者PBMC中的单核细胞(n个=23),航空电子(n个=13)和健康(n个=14)受试者分析体外流式细胞术检测。此面板显示了每类捐赠者的代表性流式细胞术直方图。APC,别藻蓝蛋白。(b条)PD-1 MFI(以)与病毒血症患者的病毒载量有关*P(P)< 0.05, **P(P)<0.001和***P(P)< 0.0001.

Elias A Said等,《国家医学》;16(4):452-459。
2
图2

图2。来源:程序性死亡-1诱导的单核细胞产生白细胞介素-10在HIV感染期间损害CD4+T细胞激活。

细菌来源的TLR配体和炎症细胞因子上调了单核细胞中PD-1的表达,并与病毒血症患者血液中的IL-10浓度相关。()CD14上PD-1 MFI比值的流式细胞术分析+CD16型和CD14+CD16型+单核细胞(n个=3),与LPS、LTA、CpG DNA、单链RNA(ssRNA)、TNF、IL-1β或IL-6和HIV-1 R5株(ADA)一起孵育48小时,在健康受试者PBMC中未刺激的单核细胞上培养PD-1 MFI。(b条)流式细胞术分析健康人外周血单个核细胞PD-1 MFI比值(n个=3),与健康或病毒血症受试者的血清孵育48小时,在添加有商业人类血清的RPMI培养基孵育的单核细胞上培养PD-1 MFI。图中显示了三个实验的代表性结果*P(P)< 0.05. (c(c))HIV感染者血清中IL-10的ELISA分析(n个=39)和流式细胞术分析相同供体单核细胞PD-1的表达体外。误差条代表s.d。

Elias A Said等,《国家医学》;16(4):452-459.
三。
图6

图6。来源:程序性死亡-1诱导的单核细胞产生白细胞介素-10在HIV感染期间损害CD4+T细胞激活。

PD-1触发的单核细胞产生的IL-10对STAT-3的磷酸化作用及CD4中PD-1、PD-L1和IL-10R表达的相关性+T细胞。()流式细胞术检测P-STAT3的表达在CD4中+健康受试者的T细胞(n个=3)用10μg ml处理或不处理−1阻断IL-10R抗体1小时,并用50 ng ml刺激15分钟以上−1IL-10或用PD1抗体预先刺激的单核细胞(五个单核细胞与一个CD4的比值+T细胞)。(b–d段)PD-1与IL-10R的相关性(b条)、PD-L1和IL-10R(c(c))以及PD-1和PD-L1(d日)用流式细胞术检测CD3抗体、CD4抗体、PD-L1抗体、IL-10R抗体和/或PD-1抗体标记的PBMC中的表达。(e(电子))干扰素γ上PD-1和PD-L1的表达+CD4细胞+和CD154+CD4细胞+流式细胞术检测病毒血症患者PBMC中的T细胞(n个=9)在存在或不存在CMV和HIV肽的情况下培养。1小时后(细胞内染色(ICS)前5小时)加入Brefeldin-A*P(P)<0.05和**P(P)<0.005。误差线代表s.d。

Elias A Said等,《国家医学》;16(4):452-459.
4
图4

图4。来源:HIV感染期间,程序性死亡-1诱导的单核细胞产生的白细胞介素-10损害CD4+T细胞的活化。

病毒血症患者单核细胞产生IL-10是由PD-1–PD-L1相互作用特异性诱导的。()通过流式细胞术检测PBMC感染病毒或健康受试者单核细胞中IL-10的表达(n个=11)在有或无10μg ml的条件下培养40 h−1阻断PD-L1抗体。潜伏期结束前16小时,5μg ml−1添加了莫能新。(b条)CD16表达PD-1和IL-10的代表性流式细胞术图和CD16+单核细胞亚群(n个= 11). Gates是根据用抗IL-10藻红蛋白结合抗体的同型对照抗体获得的背景荧光来定义的,如c(c)(c(c))在PD-L1封闭抗体存在下孵育后,单核细胞产生IL-10,如流式细胞术所测。由于受试者之间产生的IL-10水平不同,结果显示,与未经处理的细胞相比,表达IL-10的细胞百分比减少了一倍。后者产生的IL-10归一化为1*P(P)≤0.01和**P(P)≤ 0.001.

Elias A Said等,《国家医学》;16(4):452-459.
5
图5

图5。来源:程序性死亡-1诱导的单核细胞产生白细胞介素-10在HIV感染期间损害CD4+T细胞激活。

PD-1触发单核细胞产生IL-10抑制CD4+T细胞增殖和细胞因子产生。()流式细胞仪图显示CD4+CFSE标记PBMC时T细胞增殖(n个=3)用5 ng ml培养−1SEB、CMV或HIV gag肽(50 ng ml−1每肽),存在或不存在10μg ml−1PD-1抗体、IL-10R阻断抗体或两者兼而有之。(b条)PBMC中测定的抗原特异性增殖,如在存在经PD-1抗体处理的分离单核细胞的情况下。(c(c))PBMC中测定的抗原特异性增殖如b条,但单核细胞用PD-1抗体处理12小时(n个= 6). (d日)CD4细胞增殖+健康受试者的T细胞(n个=3)用涂有CD3抗体、CD28抗体和PD-L1特异性或同种对照抗体的珠培养24小时,有无5 ng ml−1IL-10或PD-1刺激的单核细胞上清液。1、无刺激;2,与IL-10一起孵育;3、CD3特异性抗体(抗CD3)、CD28特异性抗体和同种对照抗体刺激;4、抗CD3、抗CD28和PD-L1刺激;5、抗CD3、抗CD28、同型控制和IL-10刺激;6、抗CD3、抗CD28、PD-L1和IL-10刺激;7、用抗CD3、抗CD28、同型对照和非刺激性单核细胞上清液(NSMS)刺激;8、抗CD3、抗CD28、PD-L1和NSMS刺激;9、用抗CD3、抗CD28、同型对照和PD-1刺激的单核细胞上清液(PSMS)刺激;10、在存在IL-10R抗体的情况下,用抗CD3、抗CD28、同型对照和PSMS刺激;11,用抗CD3、抗CD28、PD-L1和PSMS刺激;12,在存在IL-10R抗体的情况下,用抗CD3、抗CD28、PD-L1和PSMS刺激*P(P)< 0.05, **P(P)<0.005和***P(P)< 0.0005. 误差线代表s.d。

Elias A Said等,《国家医学》;16(4):452-459.
6
图3

图3。来源:程序性死亡-1诱导的单核细胞产生白细胞介素-10在HIV感染期间损害CD4+T细胞激活。

特定PD-1触发诱导单核细胞产生IL-10。(a–c)用10μg ml的单核细胞孵育24小时后通过ELISA测定的IL-10浓度−1PD-1抗体,多克隆山羊IgG(n个= 7; ())、HLA-I抗体或HLA-II抗体(b条)有无5或10μg ml−1多粘菌素-B((c(c))n个= 3). (d日)流式细胞仪图显示用10μg ml培养的单核细胞中IL-10的表达−1PD-1抗体或1μg ml−1LPS;5微克毫升−11或18小时后添加莫能菌素(n个= 3). (e、 (f))用10μg ml培养24小时的单核细胞分泌IL-10−1PD-1抗体0、3、6、24和48小时(e(电子))或具有一定浓度的PD-1抗体((f));n个=各3)。()CD16孵育24小时后通过流式细胞术和ELISA测定IL-10的表达和CD16+单核细胞10μg/ml−1PD-1抗体。用于流式细胞术分析,5μg ml−1刺激后18h加入或不加入莫能菌素。细胞浓度为1×106每毫升细胞数(小时)IL-10的表达,在单核细胞与表达PD-L1(存在或不存在PD-L1抗体)、表达PD-L2或表达Mock(空载体)的Cos-7细胞以1:4的比例孵育48小时后,通过流式细胞术和ELISA测定。与Cos细胞孵育24小时后是否添加莫能菌素(n个= 4). 由于受试者的可变性,ELISA结果表示为用Cos-Mock细胞培养的单核细胞产生IL-10的倍数增加。()单核细胞分泌IL-10(n个=3)在75 pg ml的条件下培养−1脂多糖,0.5μg ml−1PD-1抗体或LPS和PD-1抗体。误差线代表s.d*P(P)< 0.05.

Elias A Said等,《国家医学》;16(4):452-459.

显示设置:

每页的项目数

补充内容

最近的活动

您的浏览活动为空。

活动录制已关闭。

重新打开录制

查看更多。。。
支持中心