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.2016年11月;71(11):1020-1029.
doi:10.1136/thoraxjnl-2015-208032。 Epub 2016年6月10日。

肺泡巨噬细胞衍生的微泡介导急性肺损伤

附属公司

肺泡巨噬细胞衍生的微泡介导急性肺损伤

萨努伊·索尼等。 胸部. 2016年11月.

摘要

背景:微泡(MV)是细胞间通讯的重要介质,包装着各种分子物质。它们与各种炎症疾病的病理生理学有关;然而,它们在急性肺损伤(ALI)中的作用尚不清楚。

目标:我们旨在确定肺泡内MV在ALI中的生物活性和功能作用。

方法:将脂多糖(LPS)气管内注入C57BL/6小鼠,并评估支气管肺泡灌洗液(BALF)中的MV群。LPS后1小时分离BALF MVs,评估细胞因子含量,并与小鼠肺上皮(MLE-12)细胞孵育。在单独的实验中,初级肺泡巨噬细胞衍生的MV与MLE-12细胞孵育或气管内滴注到小鼠体内。

结果:肺泡巨噬细胞和上皮细胞在LPS后迅速向肺泡释放MV。1小时时,主要人群为肺泡巨噬细胞衍生,这些MV携带大量肿瘤坏死因子(TNF),但携带少量IL-1β/IL-6。与未经处理的小鼠MV相比,将这些混合MV与MLE-12细胞孵育,可诱导上皮细胞间粘附分子-1(ICAM-1)表达和角朊细胞衍生细胞因子释放(p<0.001)。LPS激发的肺泡巨噬细胞在体外释放的MVs导致MLE-12 ICAM-1表达的类似增加,这是由TNF介导的。当向小鼠气管内注入这些MV时,这些MV诱导BALF中性粒细胞、蛋白和上皮细胞ICAM-1表达增加(p<0.05)。

结论:我们首次证明了急性肺损伤早期不同肺泡内前体细胞产生MV的顺序。我们的研究结果表明,肺泡巨噬细胞衍生的MV携带生物活性TNF,可能在启动ALI中发挥重要作用。

关键词:ARDS;细胞因子生物学;巨噬细胞生物学。

PubMed免责声明

利益冲突声明

利益冲突:未声明。

数字

图1
图1
采集和评估体内产生的微泡(MV)生物活性的协议。20将µg脂多糖(LPS)静脉滴入小鼠体内。采集支气管肺泡灌洗液(BALF)1LPS激发后1小时(或未经处理的小鼠)使用700µL生理盐水,然后离心以去除细胞和较大颗粒(200g、 5个4°C时最小值)。丢弃细胞/大颗粒颗粒,高速离心上清液(20000g、 30个将MV颗粒与小鼠肺上皮细胞(MLE-12)孵育4小时24孔板中放置小时。遵循4培养小时后,用ELISA试剂盒测定细胞上清液中的角质细胞衍生细胞因子(KC),并用流式细胞术检测MLE-12细胞表面ICAM-1的表达。最后清洗和离心步骤后从MV颗粒中分离出来的洗净后上清液也与MLE-12细胞一起培养,以区分MV相关效应与可溶性因子(例如LPS或可溶性BALF炎症介质)诱导的效应。细胞间粘附分子-1;PBS,磷酸盐缓冲盐水。
图2
图2
体外产生的初级肺泡巨噬细胞衍生微泡(MV)的I.t.滴注。收集的初级肺泡巨噬细胞被放置在24孔板中,准备1个1小时µg/mL脂多糖(LPS)达到促炎表型,然后用6mM ATP,40µM钙离子载体(A23187)和1mM外ATP酶抑制剂(ARL67156)2生成MV的小时数。随后收集上清液并离心,以清除细胞/细胞碎片(2005克4°C时最小值)。以高速离心(2000030克在4°C下,隔离MV,MV清洗两次。然后将这些初级肺泡巨噬细胞衍生的MV静脉滴注到未经治疗的幼稚小鼠体内。在最后清洗步骤后分离出的洗涤后上清液也被收集用于静脉滴注,作为对照,以说明尽管清洗步骤仍存在的MV产生的任何可溶性因素。在4之后小时激发,检测急性呼吸窘迫综合征(ARDS)的四个参数:支气管肺泡灌洗液(BALF)蛋白、BALF角质细胞衍生细胞因子(KC)、BALF-中性粒细胞计数和上皮细胞表面ICAM-1表达。细胞间粘附分子-1。
图3
图3
用i.t.脂多糖(LPS)刺激小鼠1或4次,显示支气管肺泡灌洗液(BALF)中微泡(MV)特征的代表性曲线小时。(A) 流式细胞仪图显示了门控策略,以识别1以下事件微米,使用0.88µm胶珠。请注意,图中所示的计数珠的尺寸为6微米。(B) 选通策略1LPS后1小时显示CD11c种群+低于1的事件μm大小,因此被认为是肺泡巨噬细胞衍生的MV。CD11c有明显区别+CD11c事件材料和流式细胞仪产生的背景噪声(光学和电噪声)。(C) 添加0.1%的triton洗涤剂会导致CD11c分解+随着囊泡膜被triton溶解,进一步证实了其MV的性质。CD11c公司+从最终的MV计数中减去对洗涤剂(可能是抗体复合物)有抗性的事件。(D) CD11c公司+这些事件也被发现为F4/80阳性,证实了它们被解释为肺泡巨噬细胞衍生的MV。(E) 确定上皮细胞MV数量的门控策略(EpCAM+1岁以下微米大小)1LPS后小时。(F) CD11b+事件在4小时。(G) 这些CD11b+细胞对Ly6G也呈阳性,因此被归类为中性粒细胞衍生MV。
图4
图4
不同肺泡内前体细胞的微泡(MV)的顺序释放。MV计数表示为对洗涤剂敏感的事件数(即总数减去耐洗涤剂的事件数)<1每µL支气管肺泡灌洗液(BALF)中表达母细胞抗原的μm大小。(A) 显示未经治疗的对照小鼠BALF中肺泡巨噬细胞衍生MV数量的直方图,以及1小时和4静脉注射脂多糖(LPS)后小时。数字峰值为1小时,然后又落下。(B) 上皮细胞MV随着损伤时间的延长而持续增加,4天后达到显著水平小时。(C) 中性粒细胞衍生的MV直到4时才被检测到LPS滴注后小时。N=5-8***p<0.001。数据采用方差分析和Tukey's HSD进行分析,显示为平均值+标准差。方差分析。
图5
图5
体内衍生微泡(MV)的TNF、IL-1β和IL-6含量。(A) 从未经治疗的对照小鼠或1只内毒素(LPS)后1小时。然后用1%吐温洗涤剂处理MVs,通过ELISA试剂盒测量表面和膀胱内细胞因子。在取自对照小鼠的MV粒剂中未检测到可识别的细胞因子。从接受LPS治疗的小鼠获得的MV中含有大量TNF,但IL-1β和IL-6的含量最低。数据显示为平均值+SD,N=5。(B) 从BALF提取的MV 1i.t.LPS后小时。如图所示,肺泡巨噬细胞衍生的MV中有一定比例的TNF染色呈阳性,突出了其促炎表型。
图6
图6
体内衍生微泡(MV)的促炎活性。(A) 不同处理对MLE-12细胞ICAM-1表达的影响(以平均荧光强度(MFI)表示)。从脂多糖(LPS)处理的小鼠的支气管肺泡灌洗液(BALF)中获得的MVs在与MLE-12细胞孵育4小时时引起最大的增加小时。这种效应明显大于对照MVs(从未经治疗的小鼠BALF中获得)、MV-depleted上清液或PBS引起的效应。在高剂量和低剂量LPS后,MLE-12 ICAM-1的表达略有增加,但这些与PBS没有显著差异,与MVs的效应相比明显减少。(B) 不同处理对MLE-12细胞产生角质细胞衍生细胞因子(KC)的影响。同样,从LPS处理小鼠的BALF中获得的MV产生了最大的KC,显著大于对照MV和PBS,并且显著大于MV缺失上清液和LPS。N=5-6**p<0.01,***p<0.001。使用Kruskal-Wallis和Dunn’s对数据进行分析,并通过盒子须图显示中值、IQR和最小/最大值。细胞间粘附分子-1;PBS,磷酸盐缓冲盐水。
图7
图7
体外生成的初级肺泡巨噬细胞衍生微泡(MV)的促炎活性。(A) 流式细胞仪图显示肺泡巨噬细胞(CD11c+和F4/80+)从支气管肺泡灌洗液(BALF)中提取。正如所料,从BALF中回收的细胞几乎全部是肺泡巨噬细胞。因此,该体外系统产生的MV实际上完全来自肺泡巨噬细胞。(B) 这些巨噬细胞要么用脂多糖(LPS)激发,要么在PBS中孵育1小时然后在体外用ATP、A23187和ARL67156刺激产生“炎症”或“非炎症”MV。这些被鉴定为CD11c+低于1的事件μm大小,与体内LPS模型中确定的肺泡巨噬细胞产生的MV一致。(C) 肺泡巨噬细胞衍生的“炎症”MV与MLE-12细胞孵育4小时,与非炎症MV、相关上清液部分(从相同的MV生成制剂中获得)和PBS相比,ICAM-1表达显著增加。MV治疗前向MLE-12细胞应用抗-TNF抗体可消除ICAM-1的增加,证实MVs具有TNF介导的明确生物活性。N=3-5,***p<0.001。使用Tukey的HSD通过方差分析对数据进行分析,并将数据显示为反向变换平均值,变换数据的置信区间为95%(下限、上限)。方差分析;细胞间粘附分子-1;PBS,磷酸盐缓冲盐水。
图8
图8
进行原发性肺泡巨噬细胞源性炎性微泡(MVs)或相关上清液的盲静脉滴注,并检查急性肺损伤(ALI)的多项参数。(A) 与上清液相比,静脉滴注MVs后支气管肺泡灌洗液(BALF)蛋白水平显著升高。(B) BALF中性粒细胞显著增加4肺泡巨噬细胞衍生MV滴注后小时。(C) 接受肺泡巨噬细胞衍生的MVs的小鼠在1型上皮细胞和(D)2型上皮细胞上的ICAM-1表面表达也显著增加。(E) 在被MVs攻击4小时的小鼠中,BALF角质细胞衍生细胞因子(KC)水平趋于增加小时,但未达到统计显著性。N=5,*p<0.05,**p<0.01。参数数据通过配对t检验进行分析,并显示为平均值+SD(D和E),或转换数据(B和C)的95%置信区间(上下限)的后转换平均值。非参数数据(A)通过Wilcoxon秩和检验进行分析,并通过箱须图显示中值、IQR和最小/最大值。细胞间粘附分子-1。

中的注释

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