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.2011年8月;10(8):M111.008128。
doi:10.1074/mcp。M111.008128。 Epub 2011年5月18日。

人类腹主动脉瘤细胞外基质组成和重塑:蛋白质组学方法

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人类腹主动脉瘤细胞外基质组成和重塑:蛋白质组学方法

阿萨纳西奥斯·迪丹杰洛斯等。 分子细胞蛋白质组学. 2011年8月.

摘要

腹主动脉瘤(AAA)的特征是主动脉细胞外基质(ECM)的病理重塑。然而,除了特征明确的弹性溶解和胶原酶溶解外,对其他ECM蛋白的变化知之甚少。先前关于AAA的蛋白质组学研究集中在细胞变化上,而没有强调ECM。在本研究中,使用基于溶解性的亚分馏方法从动脉瘤和对照主动脉中选择性提取ECM蛋白及其降解产物,并通过凝胶液相色谱串联质谱和无标签定量分析。蛋白质组学分析显示AAA的ECM发生了新的变化,包括XII型胶原、血小板反应蛋白2、主动脉羧肽酶样蛋白、骨膜炎素、纤维连接蛋白和tenascin的表达增加和降解。蛋白质组学也证实了巨噬细胞金属弹性蛋白酶(MMP-12)的积累。用重组MMP-12孵育对照主动脉组织导致这些糖蛋白的广泛裂解,其中大多数是MMP-12的新底物。总之,我们的蛋白质组学方法首次对AAA中的ECM进行了详细分析,并确定了与MMP-12活性相关的病理性ECM重塑标记物。

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图1。
图1。
临床标本的特征。AAA的代表部分(A类)和控制主动脉(B类)用苏木精和伊红以及单核细胞/巨噬细胞标记物CD68抗体染色(C). 免疫反应呈棕色,细胞核用迈耶苏木精复染。比例尺,5x:100μm和20x:25μm。在AAA的细胞提取物(0.08%SDS)中,平滑肌肌动蛋白(SMA)与CD68呈负相关。
图2。
图2。
蛋白质组学工作流程。该方法基于血管蛋白质组的三步亚分馏(A类)丰富ECM及其相关蛋白质和降解产物。首先,将样本提取为0.5氯化钠。该缓冲液溶解与ECM弱结合的蛋白质或蛋白质片段,包括新合成的ECM蛋白质和降解产物。此外,还提取了MMPs等分泌性蛋白酶。其次,用0.08%的十二烷基硫酸钠对标本进行脱细胞处理,以耗尽细胞蛋白质。最后,用4胍溶解紧密相互作用的交联基质。第二阶段(B类)通过将健康组织与重组酶孵育,进一步研究已鉴定的基质金属蛋白酶,以确定新的蛋白水解靶点并表征其在疾病中的蛋白水解活性。
图3。
图3。
细胞外蛋白的溶解度差异。 A类,维恩图显示了用0.5提取的ECM和相关蛋白质的数量氯化钠或4胍。每个提取物都有唯一识别的蛋白质的SwissProt输入代码。表一和表二列出了所有标识。B类,在0.5中与对照主动脉(CON)相比,AAA样品中氯化钠提取物的ECM蛋白光谱计数显著增加。已识别光谱的总数相似。C,在4中胍提取物对ECM蛋白的光谱计数和总光谱数在对照组和AAA组之间均无显著差异。数值为平均值±S.E***第页0.001.使用双尾、非配对进行统计分析t吨测试。
图4。
图4。
细胞外蛋白的层次聚类。树状图显示了0.5氯化钠提取物(A类)和在4中胍提取物(B类). “R”表示使用RePlay设备为每个临床样本获得的技术复制。如图所示,对光谱计数差异进行彩色编码。
图5。
图5。
ECM重塑标记物的验证。光谱计数(左边胶原XII、tenascin、血小板反应蛋白2、纤维连接蛋白和ACLP(别名:脂肪细胞增强结合蛋白1;AEBP-1)在0.5与对照组相比,AAA的氯化钠提取物。数值为平均值±S.E***第页0.001, **第页0.01, **第页0.05,纳秒不重要使用双尾非配对进行统计分析t吨测试。免疫印迹(中间的小组)证实了AAA中这些ECM蛋白的水平增加以及片段化。免疫印迹法也证实了AAA中eSOD的丢失以及MMP-12和TIMP-1的积累。箭头表示全长蛋白质的预期分子量。除骨膜炎和MMP-12外,两者之间存在高度相关性(Spearman相关性第页0.8磅0.05)通过光谱计数和蛋白质印迹测定蛋白质丰度(正确的面板)。
图6。
图6。
新型MMP-12靶点。 A类,彩色热图显示了0中6种糖蛋白的识别光谱数量。5对照和AAA样品中的NaCl提取物及其SDS-PAGE后的分子量分布。B类,将一个正常主动脉标本切割成三个相等的块,并用50pMMP-9,50便士MMP-12,或在37°C的MMP反应缓冲液中未经处理(CON)24小时。通过免疫印迹法分析产生的上清液中的胶原蛋白XII、tenascin、血小板反应蛋白2(TSP2)、纤维连接蛋白、ACLP和骨膜炎素。箭头表示MMP-12处理产生的蛋白水解片段。C将10μg人纯化纤维连接蛋白和10μg重组人骨膜蛋白和TSP2在37°C的普通MMP反应缓冲液中培养16小时或补充50 pMMP-12(+MMP-12)。蛋白质混合物通过一维SDS-PAGE分离,并在0.05%w/v Coomasie G-250,5%v/v冰醋酸溶液中染色,以监测底物降解。
图7。
图7。
ACLP和MMP-12的免疫组织化学染色。连续的AAA组织连续切片用ACLP抗体染色(A类B类)或MMP-12(C). ACLP发现于两个具有剩余弹性层的亚细胞区域(A类)以及有结缔组织破坏迹象的介质无定形炎症区域(B类). MMP-12主要存在于炎症区域(). 用二氨基联苯胺(DAB)产生辣根过氧化物酶结合二级抗体,显示出棕色,表明免疫染色阳性。阴性对照用同型对照抗体孵育(E类F类). 用迈尔苏木精对细胞核进行复染。放大20倍。比例尺:25μm。

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