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.2009年7月;20(7):1544-55.
doi:10.1681/ASN.2008080843。 Epub 2009年5月14日。

IRF-1促进缺血性急性肾损伤后早期炎症反应

附属机构

IRF-1促进缺血性急性肾损伤后早期炎症反应

王燕霞等。 J Am Soc肾病. 2009年7月.

摘要

急性肾缺血引起炎症反应,可能加剧急性肾损伤,但白细胞募集的初始信号的调控尚不清楚。在这里,我们发现IFN调节因子1(IRF-1)是在体内外缺血损伤期间释放的一个关键的早期促炎信号。再灌注后15分钟内,S3段近端肾小管细胞产生IRF-1,这是一种激活促炎基因的转录因子。IRF-1转基因敲除可改善急性缺血后肾功能损害、形态学损伤和炎症。骨髓嵌合体实验确定,最大缺血性损伤需要白细胞和抗辐射肾细胞表达IRF-1,后者通过原位杂交和免疫组织化学鉴定为外髓质中的S3近端小管细胞。在体外,缺血/再灌注损伤期间产生的活性氧刺激S3近端肾小管细胞系中IRF-1的表达。总之,这些数据表明,活性氧物种激活IRF-1基因是促进缺血性肾损伤后炎症的早期信号。

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数字

图1。
图1。
根据肾功能测定,IRF-1转基因敲除可改善24小时缺血AKI。(A) 肾功能测量为血清肌酐。(B) 肾功能测量为BUN。误差条是平均值的标准误差。P(P)比较野生型和基因敲除小鼠的t检验值。
图2。
图2。
IRF-1转基因敲除可改善24小时缺血AKI-结构损伤和炎症。(A) 结构损伤的形态测量。请参阅“简明方法”一节,了解伤害分数的定义。(B) 炎症。以非特异性酯酶标记的中性粒细胞和巨噬细胞。请参阅简明方法部分。
图3。
图3。
IRF-1转基因敲除可改善缺血性AKI。(A) 苏木精和曙红(H&E)。IRF-1(+/+)肾脏再灌注24小时AKI的病理学。注意坏死小管,其中几个由“N”(B)H&E表示。再灌注24小时IRF-1(−/−)肾脏AKI的病理学。许多小管失去了刷状边界;几个这样的小管用“E”表示。罕见的坏死小管用N表示
图4。
图4。
缺血IRF-1(+/+)肾脏的最大损伤面积外髓质缺血IRF-1(−/−)肾脏的最大损伤区域:24小时后前者炎症加重。(A)IRF(+/+)肾脏。H&E和酯酶染色将中性粒细胞和巨噬细胞染成红色。“N”表示几个坏死小管。箭头显示A(B)IRF-1(−/−)肾脏中的两个红色酯酶阳性白细胞。A.“N”中的染色标志着几个坏死的小管。
图5。
图5。
缺血野生型肾脏IRF-1 mRNA丰度早期增加。(A) 核糖核酸酶保护试验。显示了在不同再灌注时间对整个缺血肾脏总RNA的代表性RNase保护分析。(B) A.(C)凝胶的密度测定七个实验的密度测定(n个=指定时间点的实验次数)*P(P)< 0.05控件。
图6。
图6。
在野生型缺血肾脏中,IRF-1 mRNA的表达不晚于IFN-γ、TNF-α和IL-6基因。在指定的再灌注时间,通过RNase保护试验测定细胞因子和IRF-1 mRNA。
图7。
图7。
最大缺血性AKI需要放射抗性和放射敏感性肾细胞中的野生型IRF-1。(A) 嵌合小鼠基因组PCR。外周血(P.blood)和尾部的基因组PCR证实嵌合小鼠的成功创建。在嵌合体小鼠中,类名和符号与B(B)AKI的类名和标志相匹配。注意,最大AKI需要IRF-1对放射敏感性和放射抗性细胞均有效。(C) 统计。单因素方差分析和Student Newman-Keuls方法对第1组(放射敏感性和放射抗性肾细胞中的IRF-1)和其他组之间的成对比较显示,前者的损伤显著增加。
图8。
图8。
IRF-1型就地缺血野生型肾脏杂交。(A) 缺血反义。这张切片是在再灌注1小时时拍摄的,是用反义S探测缺血肾脏的低倍暗场图35-标记IRF-1 mRNA。白色箭头表示缺血肾脏外髓质中IRF-1的mRNA表达。(B) 非缺血反义。这是一个同样被反义S染色的非缺血肾脏的低倍暗场图35-标记IRF-1 mRNA。(C)缺血感觉。这是用控制感S探测到的缺血肾脏的低倍暗场视图35-标记IRF-1 mRNA。(D)高功率缺血反义。这是一张用反义S探测的缺血肾脏的高倍亮场显微照片35-标记IRF-1 mRNA。黑色箭头指向许多银色颗粒中的一些,代表管状细胞的mRNA表达。
图9。
图9。
野生型缺血肾脏的IRF-1免疫组织学。(A) 肾缺血。这是再灌注4小时时缺血肾脏的黑白显微照片。肾脏用兔抗IRF-1抗体染色,然后用Cy3山羊抗兔抗体染色。白色箭头指向髓质外侧许多IRF-1阳性小管中的几个。(B) 非缺血性肾脏。这是一张IRF-1免疫染色的非缺血肾脏的黑白显微照片。注意没有IRF。放大倍数,×25。
图10。
图10。
野生型缺血肾脏的抗IRF-1免疫组织学。(A) 外髓质缺血小管上的IRF-1。红色荧光显示抗IRF-1抗体染色。100倍。(B) 用兔IgG对照对缺血小管无染色。放大倍数,×100。
图11。
图11。
抗IRF-1和莲花染色将IRF-1定位于外髓质S3近端小管。(A) IRF-1和近端小管双重染色。绿色荧光表明用莲花凝集素染色。红色荧光显示抗IRF-1抗体染色。白色箭头显示了四个同时染有绿色和红色的小管。(B)外髓质缺血近端小管上的IRF-1。绿色和红色荧光染色如A所示。注意两个小管上的管腔绿色和基底侧红色染色。放大倍数:×100(单位:A);×650英寸B。
图12。
图12。
活性氧诱导S3近端肾小管细胞表达IRF-1在体外(A)活性氧刺激S3近端小管细胞产生IRF-1蛋白的时间进程。S3近端小管细胞在活性氧(2.5 mM次黄嘌呤和0.005 U/ml黄嘌呤-氧化酶)中培养。用Western blot分析细胞总蛋白提取物。这个轴是折叠诱导,由以下等式定义:折叠诱导=(IRFX)/(IRFC),其中IRFX=(IRF-1密度实验)除以(β-actin密度实验),IRFC=(无活性氧的IRF-1浓度控制)除以(无活性碳的β-acton密度控制)*P(P)<0.05,ROS处理的细胞控制(n个=5)。(B) 不同剂量的ROS刺激后IRF-1蛋白的产生。S3细胞受到以下数量增加的次黄嘌呤和黄嘌呤·氧化酶的刺激:0.25 mM次黄嘌纷/0.0005 U/ml黄嘌呤-氧化酶;0.83 mM次黄嘌呤/0.0017 U/ml黄嘌呤·氧化酶;2.5 mM次黄嘌呤/0.005 U/ml黄嘌呤·氧化酶;5 mM次黄嘌呤/0.01 U/ml黄嘌呤-氧化酶;和7.5mM次黄嘌呤/0.15U/ml黄嘌呤氧化酶。“Con”仅为中等。显示了两个实验中的一个。(C) 热激活的黄嘌呤氧化酶不刺激IRF-1蛋白的产生。S3细胞暴露于2.5 mM次黄嘌呤和0.005 U/ml活性或0.005 U/ml热失活黄嘌呤·氧化酶(加热ROS;n个=4)**P(P)ROS<0.01con和ROS加热ROS)。(D) ROS刺激S3细胞IRF-1 mRNA表达的时间进程。S3细胞与活性氧(2.5 mM次黄嘌呤和0.005 U/ml黄嘌呤氧化酶)孵育*P(P)< 0.05控制(n个= 3). (E) 不同剂量ROS刺激后IRF-1 mRNA丰度。S3细胞受到与B相同数量的次黄嘌呤和黄嘌呤氧化酶的刺激(n个= 2). 相对值由GAPDH或β-actin标准化,对照组被指定为任意值1(n个= 4). *P(P)< 0.05, **P(P)< 0.01控件。

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