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.2009年7月;50(1):185-97.
doi:10.1002/hep.22952。

CCR2促进小鼠肝纤维化

附属公司

CCR2促进小鼠肝纤维化

Ekihiro Seki先生等。 肝病学. 2009年7月.

摘要

趋化因子和趋化因子受体有助于肝星状细胞(HSCs)和枯否细胞(Kupffer cells)的迁移,这两种细胞是纤维化发生的关键类型。在此,我们研究了单核细胞趋化蛋白(MCP)-1、MCP-2和MCP-3受体CCR2在肝纤维化中的作用。胆管结扎(BDL)后,肝脏CCR2、MCP-1、MCP-2和MCP-3信使RNA表达增加。Kupffer细胞和HSC都表达CCR2,但肝细胞不表达CCR2。通过胶原蛋白沉积、α-平滑肌肌动蛋白表达和肝羟脯氨酸含量评估,BDL-和CCl(4)诱导的CCR2(-/-)小鼠纤维化明显减轻。我们通过氯膦酸盐、辐射和骨髓(BM)移植的组合产生了CCR2嵌合小鼠,使库普弗细胞(而不是HSC)与BM细胞完全重建。含有野生型BM的嵌合小鼠显示巨噬细胞募集增加,而含有CCR2(-/-)BM的嵌合小鼠在BDL后5天显示巨噬细胞募集减少。尽管骨髓中表达的CCR2增强了损伤早期巨噬细胞的募集,但慢性纤维化模型中的纤维化反应需要在包括HSC在内的常驻肝细胞上表达CCR2,而不是骨髓上。体外实验表明,CCR2(-/-)或其下游介体p47phox(-/--)缺陷的HSC对MCP-1、MCP-2和MCP-3没有表现出细胞外信号调节激酶和AKT磷酸化、趋化性或活性氧生成。

结论:我们的结果表明,CCR2促进HSC趋化和肝纤维化的发展。

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数字

图1
图1。肝纤维化中CCR2和CCR2配体的表达增加
在BDL(n=6)或12次重复CCl后对小鼠的肝脏进行分析4在指定的时间点进行治疗(n=6)。(A、B)在BDL后测量CCR2、MCP-1、MCP-2和MCP-3的肝脏mRNA水平(A)或CCl4治疗(B)通过qPCR。(中-英)CCR2表达(绿色)通过与结蛋白(红色,C类),F4/80(红色,D类)和泛细胞角蛋白(红色,E类)共聚焦显微镜观察。箭头表示CCR2-阳性细胞和结蛋白-(C)或F4/80阳性细胞(D)。虚线表示肝内胆管(E)。(F)采用RT-PCR方法检测枯否细胞、HSC和肝细胞CCR2 mRNA的表达。β-actin mRNA起到了内部控制作用。
图2
图2。CCR2中肝纤维化的减少-/-BDL后的小鼠
重量(n=6)和CCR2-/-(n=6)只小鼠接受BDL。(A)在BDL后21天,通过天狼星红染色和定量评估纤维性胶原沉积。(B)测定肝脏羟脯氨酸含量。(C、D)免疫组织化学(C)和免疫印迹(D)检测α-SMA的表达。(E)在WT(n=5)和CCR2中测量肝脏α1(I)、α-SMA、TGFβ1和TIMP-1的mRNA水平-/-(n=5)BDL后5天,通过qPCR。*胆管结扎CCR2组p<0.05-/-小鼠与胆管结扎的WT小鼠。原始放大倍数为×100(A,C)。
图3
图3。CCR2减轻肝脏炎症和巨噬细胞浸润-/-BDL后的小鼠
(A、B)肝脏TNFα、MCP-1、RANTES、MIP-1β、IL-1β和IL-6 mRNA水平(A)和CD68(B)以WT(n=5)和CCR2进行测量-/-qPCR检测BDL后5天(n=5)。(C)BDL后21天用免疫组织化学方法检测F4/80的巨噬细胞浸润。(D)用免疫组织化学方法检测4-羟基壬醛。(E)测定BDL后5或21天的血清ALT、ALP和T-Bil水平。*胆道结扎CCR2 p<0.05-/-小鼠与胆管结扎的WT小鼠。原始放大倍数为×200(C,D)。
图4
图4。CCR2缺乏抑制CCl后肝纤维化4治疗
重量(n=6)和CCR2-/-(n=6)小鼠注射了12次CCl4(0.5微升/克)。(A、B)12次注射CCl后,通过天狼星红染色(A)和定量(B)评估纤维胶原沉积4.(C)测定肝脏羟脯氨酸含量。(D、E)免疫组织化学法检测α-SMA的表达(D)和western印迹(E).(F)注射CCl 12次后血清ALT水平4已测量。*:CCl组p<0.054-经处理的CCR2-/-小鼠与CCl4-治疗WT小鼠。原始放大倍数为×100(A,D)。
图5
图5。BDL后早期巨噬细胞浸润需要骨髓源性细胞上的CCR2
通过移植WT或CCR2产生嵌合小鼠-/-BM注入辐照和氯膦酸盐处理的WT小鼠或CCR2-/-小鼠(每组4-5只)。然后将嵌合小鼠接种BDL 5天。(A)WT小鼠脾细胞中CCR2 mRNA水平较低,而CCR2中CCR2的mRNA水平正常,证实了BMT的成功-/-移植WT-BM的小鼠。(B)用qPCR检测嵌合小鼠肝脏促炎细胞因子(TNF-α、MCP-1、RANTES和MIP-1β)mRNA水平。(C、D)用免疫组织化学方法检测F4/80的巨噬细胞浸润(C)和CD68的qPCR(D).(E)测定BDL后5天嵌合体小鼠的血清ALT水平。原始放大倍数为×200(C).*p<0.05,**p<0.01。
图6
图6。BDL后受体源性细胞(而非骨髓源性细胞)介导CCR2依赖性纤维生成效应
(A-F)通过移植CCR2产生嵌合小鼠-/-BM注入辐照和氯膦酸盐处理的WT小鼠(n=6)或CCR2-/-小鼠(n=6)和反之亦然(每组6人)。BMT后3个月,对小鼠进行BDL,在BDL后21天判断肝纤维化。(A-B)天狼星红染色评估嵌合体小鼠的肝纤维化(A,左),定量(A,右)和羟脯氨酸测量(B).(C)免疫组化显示α-SMA表达(C,上部)和western印迹(C,下部)。(D)用免疫组织化学方法检测F4/80的巨噬细胞浸润。(E)用免疫组织化学方法检测4-羟基壬烯酸的积累。(F)测定BDL后21天嵌合体小鼠的血清ALT水平。原始放大倍数为×100(A、C)和×200(D、E).*p<0.05,**p<0.01。
图6
图6。BDL后受体源性细胞(而非骨髓源性细胞)介导CCR2依赖性纤维生成效应
(A-F)通过移植CCR2产生嵌合小鼠-/-BM注入辐照和氯膦酸盐处理的WT小鼠(n=6)或CCR2-/-小鼠(n=6)和反之亦然(每组6人)。BMT后3个月,对小鼠进行BDL,在BDL后21天判断肝纤维化。(A-B)天狼星红染色评估嵌合体小鼠的肝纤维化(A,左),定量(A,右)和羟脯氨酸测量(B).(C)免疫组化显示α-SMA表达(C,上部)和western印迹(C,下部)。(D)用免疫组织化学方法检测F4/80的巨噬细胞浸润。(E)用免疫组织化学方法检测4-羟基壬烯酸的积累。(F)测定BDL后21天嵌合体小鼠的血清ALT水平。原始放大倍数为×100(A、C)和×200(D、E).*p<0.05,**p<0.01。
图7
图7。受体细胞上的CCR2对CCl至关重要4-诱导性肝纤维化
(A-F)通过移植CCR2产生嵌合小鼠-/-BM注入辐照和氯膦酸盐处理的WT小鼠(n=5)或CCR2-/-小鼠(n=5)和反之亦然(每组5人)。CCl 12注射液诱导肝纤维化4.(A、B)天狼星红染色评估嵌合小鼠的肝纤维化(A),定量(B) ,羟脯氨酸含量的测定(C).(D、E)免疫组织化学法检测α-SMA的表达(D)和western印迹(E).(F)嵌合小鼠12次注射CCl后血清ALT水平4测量BDL后。原始放大倍数为×100(A、D).*p<0.05,**p<0.01。
图8
图8。CCR2依赖性NADPH氧化酶依赖性ROS的产生和HSC对MCP-1、MCP-2和MCP-3的趋化性
(A-F)与WT、CCR2隔离的HSC-/-和p47phox-/-用MCP-1、MCP-2和MCP-3刺激小鼠。(A)在WT和CCR2中测定磷酸化AKT(Ser473上)、总AKT、磷酸化ERK和总ERK-/-免疫印迹法检测HSC。(B)将含有MCP-1、MCP-2或MCP-3(50ng/ml)的无血清培养基置于下室。与WT或CCR2隔离的HSC-/-小鼠被放在上面的房间里。刺激24小时后统计HSC向下腔的迁移。(C)在WT或CCR2中检测胶原α1(I)、αSMA、TIMP-1、IL-6和PCNA的mRNA表达-/-qPCR刺激24小时后HSC。(D)来自WT、CCR2的小鼠HSC-/-和p47phox-/-小鼠被DCFDA(8μM)负载20分钟,并与MCP-1、MCP-2和MCP-3(100ng/ml)孵育,测量荧光强度30分钟。(E)在WT和p47phox中测定磷酸化AKT(Ser473上)、总AKT、磷酸化ERK和ERK2-/-免疫印迹法检测HSC。(F)将含有MCP-1、MCP-2或MCP-3(50ng/ml)的无血清培养基置于下室。从WT或p47phox分离的HSC-/-将小鼠置于上腔,进行或不进行DPI(10μM)预处理30分钟。刺激24小时后统计HSC向下腔的迁移。*:p<0.05。

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