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比较研究
.2008年12月;36(21):e141。
doi:10.1093/nar/gkn705。 Epub 2008年10月15日。

基于深度序列的表达分析表明,在五种微阵列平台上,在稳健性、分辨率和实验室间可移植性方面取得了重大进展

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比较研究

基于深度序列的表达分析表明,在五种微阵列平台上,在稳健性、分辨率和实验室间可移植性方面取得了重大进展

Peter A C’t Hoen(彼得·A·C’t霍恩)等。 核酸研究. 2008年12月.

摘要

采用Solexa/Illumina深度测序技术和五种不同的微阵列平台比较野生型小鼠和deltaC-doublecortin-like激酶转基因小鼠的海马表达谱。通过Illumina的数字基因表达分析,我们获得了每个样本约240万个序列标签,其丰度跨越四个数量级。即使在实验室中,结果也具有高度的重复性。使用专用贝叶斯模型,我们发现3179个转录本的差异表达,估计错误发现率为8.5%。这是一个比微阵列更高的数字。深度测序和微阵列发现的差异表达转录物重叠对Affymetrix最为显著。深度测序观察到的表达变化大于微阵列或定量PCR观察到的变化。相关过程,如钙调素依赖性蛋白激酶活性和沿微管的囊泡转运,被发现受深测序影响,但不受微阵列影响。尽管微阵列无法检测到,但51%的基因发现了反义转录,47%的基因出现了选择性多聚腺苷酸化。我们的结论是,深度测序在表达谱数据的稳健性、可比性和丰富性方面取得了重大进展,有望推动协作、比较和综合基因组学研究。

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数字

图1。
图1。
标签的分类和丰富性。不同类别(八个样本的平均值)上独特标签(黑条)和单个读取(计数;开条)的分布(占总数的百分比):高置信转录物(标准)、低置信转录物[非标准]、线粒体RNA(丝裂原)、核糖体RNA(核糖)、,没有转录证据的基因组区域(仅基因组)、重复基因组区域(重复)和基因组中没有点击的标签。
图2。
图2。
规范标签的火山图。对于每个标签,转基因小鼠与野生型小鼠的表达水平之比(2对数刻度,x个-轴)相对于贝叶斯错误率绘制(10对数刻度,-轴)。水平线表示应用的显著性阈值,3179个差异表达标签位于该线之上。图中显示,转基因小鼠和野生型小鼠(图的最左侧和右侧)之间平均差异最大的标签并不都显著(由于组内变异较大)。最显著的标记(图的顶部)通常在转基因和野生型之间显示出较小的表达差异,但由于相对较高的表达水平,因此测量非常准确,因此显示出较低的组内变异。
图3。
图3。
绝对表达水平(DGE)和微阵列信号强度之间的相关性。标记丰度的相关性(平方根转换;x个-轴)和强度[如(9)所述标准化]在五个微阵列平台上(-轴)用于匹配ENSEMBL转录本,用于野生型样本1。图表中显示了皮尔逊相关性。ABI:应用生物系统;AFF:Affymetrix;ILL:照明;AGL:安捷伦;LGTC:家庭盆栽长寡核苷酸阵列。
图4。
图4。
评估DGE的精度和准确性。(A)来自野生型和转基因池的样品在三个不同的通道中进行测序。我们计算了转基因和野生型样品(技术复制品)之间的三个可能的独立对数比率。为了测量精度,我们确定了这些技术复制品之间的成对差异。这些差异的分布绘制为密度函数(黑线)。这也适用于安捷伦(红色)和家庭盆栽(蓝色)微阵列上测定的野生型与转基因比率的三个技术复制。我们通过随机选择21886个特征来平衡每个平台的观测数量。(B)作为准确性的测量,我们将DGE获得的转基因小鼠与野生型小鼠的表达记录比率进行了关联(x个-轴)相对于qPCR获得的结果(-轴)。所有数据和引物序列都可以在补充表3.

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引用人

工具书类

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