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.2008年7月;7(7):1949-60.
doi:10.1158/1535-7163.MCT-07-2046。

头颈癌细胞对硼替佐米的敏感性差异与蛋白酶体、核因子-κB和激活蛋白-1相关机制有关

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头颈癌细胞对硼替佐米的敏感性差异与蛋白酶体、核因子-κB和激活蛋白-1相关机制有关

钟晨等。 摩尔癌症治疗. 2008年7月.

摘要

头颈部鳞状细胞癌(HNSCC)表现出转录因子核因子-κB(NF-kappaB)和激活蛋白-1(AP-1)的结构性激活,这些转录因子受蛋白酶体调节并促进对细胞死亡的抵抗。HNSCC对蛋白酶体抑制剂硼替佐米在体外、小鼠异种移植物和体内患者肿瘤中表现出不同的敏感性,其机制尚不清楚。为了解决这个问题,使用3-(4,5-二甲基噻唑-2-基)-2,5-二苯基四唑溴化物测定法测定了九个HNSCC细胞株对硼替佐米的敏感性,并在硼替佐米特异性敏感的HNSCC株中检测了敏感性与硼替佐敏对生物过程的影响之间的潜在关系。在小鼠异种移植物模型中,最敏感的细胞系(UM-SCC-11B)在体外以10(-9)mol/L的浓度经历细胞死亡,并在最大耐受剂量的硼替佐米下经历肿瘤消退。UM-SCC-11A和UM-SCC.11B细胞之间的敏感性差异与蛋白酶体活性抑制程度、泛素化蛋白降解以及NF-kappaB和AP-1活化程度的差异有关。低浓度硼替佐米瞬时增加UM-SCC-11A细胞中的NF-kappaB和持续AP-1激活。硼替佐米与c-Jun NH(2)末端激酶和p38激酶途径抑制剂联合使用时,UM-SCC-11A的AP-1报告活性和细胞密度受到抑制。因此,对硼替佐米的不同敏感性对应于对蛋白酶体、NF-κB和AP-1活性的不同影响。抑制c-Jun NH(2)末端激酶和p38通路可阻断AP-1活性并增强抗肿瘤作用。这些发现揭示了硼替佐米敏感性和耐药性的分子机制,目前正在开发用于HNSCC患者临床试验的生物标记物。

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数字

图1
图1。UM-SCC细胞系和培养的正常人角质形成细胞对硼替佐米的敏感性在体外
(A) 9个UM-SCC细胞系和人类正常角质形成细胞在5X10处进行电镀96孔微孔板中每孔四倍的细胞数。第二天,细胞暴露于不同浓度的硼替佐米(第0天)。在处理后的第一天、第二天和第三天用MTT试剂标记细胞四小时,第二天测量标记细胞的光密度。这些数据是重复实验的一个代表,显示了由四倍计算的平均值+标准偏差。IC50显示的是使用第2天的数据计算得出的。(B) 从培养的UM-SCC细胞中获取核提取物,并使用TransAM NF-κB结合试剂盒(每个孔中含有10μg核提取物)测量NF-kb p65结合活性。数据表示三倍的平均值加标准偏差。(C) 采用台盼蓝法检测硼替佐米对UM-SCC-11A和-11B细胞的细胞毒性作用。将UM-SCC-11A(左面板)和-11B细胞(右面板)分三次置于T-25烧瓶中,并于10时用硼替佐米处理–9和10–8M 48小时后。在每个时间点,收集附着和分离的细胞,用台盼蓝染色并计数。计算并呈现活细胞总数。
图2
图2。硼替佐米在人UM-SCC肿瘤异种移植模型中的抗肿瘤活性
(A) 以1.5x10的剂量皮下注射UM-SCC-11A和-11B细胞7免疫缺陷BALB/c SCID小鼠侧翼的细胞/小鼠。当平均肿瘤体积达到~0.3 cm时在每个荷瘤组中,在星期一、星期三和星期五的日程表上腹腔注射硼替佐米(2.0 mg/kg/剂量),每个剂量的时间用箭头表示。测量肿瘤,计算肿瘤体积,并将其表示为平均值+SE。用于复合递送的载体为无菌PBS中的DMSO。(B)在硼替佐米治疗24小时后采集UM-SCC-11B异种移植模型的肿瘤,并在冰冻切片上进行H&E和TUNEL染色。对照组(左侧)和硼替佐米治疗的肿瘤(右侧)的照片在放大200倍的光学显微镜下拍摄。
图3
图3。硼替佐米诱导UM-SCC-11A和-11B细胞周期阻滞和凋亡
用不同浓度的硼替佐米处理UM-SCC-11A(A)和-11B细胞(B),并在处理后12、24和96小时收获。105收集细胞并用碘化丙啶染色,用cycleTEST-Plus DNA试剂盒进行细胞凋亡和细胞周期分析。用流式细胞仪测定每个样品中10000个细胞的荧光强度。
图4
图4。硼替佐米对UM-SCC-11A和-11B细胞NF-κB和AP-1报告活性的影响
UM-SCC-11A和-11B瞬时转染NF-κB(A-D)或AP-1(E,F)荧光素酶报告载体。转染后,细胞在10–8M代表不同的时间点。收集细胞裂解物并使用Tropix Dual-Light报告分析系统分析荧光素酶活性。将每个值调整为对照值,并表示为平均荧光素酶活性±三倍标准偏差。对于阳性对照组,细胞还与带有NF-κB荧光素酶报告子结构的DN IκBα突变质粒共转染,并用2000U/ml人重组TNF-α处理24小时(C和D)。
图5
图5。硼替佐米对UM-SCC 11A和11B细胞蛋白酶体活性和蛋白质泛素化的抑制作用不同
用不同浓度的硼替佐米处理UM-SCC-11A(A)和-11B(B)细胞,处理后4h收集细胞裂解液。测定蛋白酶体活性,计算数据,并将其表示为三倍体的平均值+标准偏差。用硼替佐米在10–8M,并且在不同的时间点收获细胞裂解物。蛋白泛素化用抗泛素抗体(C)进行Western blot分析。
图6
图6。化学JNK抑制剂SP600125显著抑制AP-1报告活性,并与硼替佐米协同抑制UM-SCC-11A细胞增殖
(A) 将UM-SCC-11A细胞置于24孔板中过夜,并转染AP-1和LacZ报告体。转染后,用10μM的SP600125或SB203580处理细胞4小时,然后用10–8M硼替佐米24小时。如前所述,采集细胞并测量报告活性。(B) 将UM-SCC-11A细胞放置在96孔板中过夜,并在硼替佐米治疗前4小时添加化学抑制剂。然后在处理后的第一天、第三天和第五天用MTT试剂标记细胞4小时,第二天测量标记细胞的光密度。

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引用人

工具书类

    1. 阿加瓦尔BB。核因子-κB:内在的敌人。癌细胞。2004;6:203–8.-公共医学
    1. Shaulian Karin M.AP-1是细胞生命和死亡的调节器。自然细胞生物学。2002;4:E131–6。-公共医学
    1. Eferl R、Wagner EF。AP-1:肿瘤发生中的一把双刃剑。《自然反击癌症》。2003;3:859–68.-公共医学
    1. Van Waes C.核因子-κB在癌症的发展、预防和治疗中的作用。临床癌症研究2007;13:1076–82.-公共医学
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