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.2007年1月;81(1):150-8.
doi:10.1128/JVI.01514-06。 Epub 2006年10月18日。

新城疫病毒减毒活疫苗完全保护鸡和小鼠免受同源和异源H5N1禽流感病毒的致命攻击

附属公司

基于新城疫病毒的减毒活疫苗可完全保护鸡和小鼠免受同源和异源H5N1禽流感病毒的致命攻击

金鹰阁等人。 J维罗尔. 2007年1月.

摘要

H5N1高致病性禽流感病毒(HPAIV)继续传播,对动物和人类健康构成严重威胁。目前的流感疫苗策略存在局限性,无法有效用于现场动物的广泛接种。然而,新城疫病毒(NDV)疫苗株已成功用于为大量动物接种疫苗。在本研究中,我们使用反向遗传学构建了一种表达H5亚型禽流感病毒(AIV)血凝素(HA)的NDV。将来自HPAIV野鸟分离物a/Bar-headed goose/3/2005(H5N1)的野生型和突变HA开放阅读框(ORF)插入LaSota NDV疫苗株的P和M基因之间的基因间区域。稳定表达野生型和突变HA基因的重组病毒在1日龄鸡脑内接种后被发现是无害的。在鸡体内单剂量的重组病毒可诱导NDV和AIV H5特异性抗体,并完全保护鸡免受致命剂量的快速NDV和同源及异源H5N1 HPAIV的攻击。此外,用基于NDV的重组疫苗免疫的BALB/c小鼠产生H5 AIV特异性抗体,并完全免受同源和异源致命病毒的攻击。我们的结果表明,重组NDV适合作为家禽NDV和AIV感染的双价减毒活疫苗。重组新冠病毒疫苗也可能在高危人群中具有潜在用途,以控制致命禽流感的大流行传播。

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数字

图1。
图1。
H5 HA基因重组NDV的制备与鉴定。(A) 在P和M基因(I)和插入PmeI位点的野生型H5 AIV HA基因(II)或突变的H5 AIV-HA基因(III)之间引入PmeI位置的rLa基因组示意图。(B) H5禽流感病毒HA蛋白表达的免疫荧光分析。汇合的BHK-21细胞以0.2的MOI感染rLa(I)、rLa-H5w(II)或rLa-H5m(III)。用鸡抗NDV抗血清(a,d,g)、鸡抗H5禽流感病毒抗血清(b,e,h)或非感染(NI)SPF鸡血清(c,f,i)固定并探测感染细胞,然后用异硫氰酸荧光素结合的兔抗鸡IgG(Sigma)孵育。用徕卡DMIRE2荧光显微镜(徕卡)分析细胞。(C) 表达AIV H5的NDV重组子的Western blot分析。感染rLa、rLa-H5w或rLa-H5m的细胞裂解液与H5 HA基因DNA免疫(I)或鸡抗NDV抗血清(II)产生的鸡H5 AIV HA特异性抗血清孵育。与过氧化物酶偶联二级抗体孵育后,用3,3′-二氨基联苯试剂观察结合情况。标记蛋白的位置显示在左侧,AIV血凝素的未分离型(HA0)和加工型(HA1和HA2)显示在右侧。
图2。
图2。
重组病毒在胚胎卵中的生长特性。获救的NDV rLa(⋄),rLa-H5w(▵), 或rLa-H5m(○) (0.1 ml 100 EID50)将其接种到10天龄胚胎蛋的尿囊腔中,在接种后24、48、72和96 h的时间点采集每组6个蛋的尿囊液,并汇总用于EID的测定50鸡蛋;所示数据来自三个重复序列。
图3。
图3。
H5N1病毒血凝素基因的系统发育关系。这棵树包括2003年至2005年在东南亚国家分离的禽流感病毒和2005年至2006年在中东、欧洲和非洲分离的病毒。系统发育树是由CLUSTALX软件包(1.81版)的PHYLIP程序使用邻接算法并基于1000的bootstrap值生成的。强调了用于重组疫苗生产的HA基因供体病毒,本研究中使用的挑战性病毒用斜体标记。CK,鸡肉;DK、鸭子;GS,鹅;MD,野鸭;有限公司,疣鼻天鹅; CC的情况下,大天鹅; 远景:大天鹅。
图4。
图4。
重组病毒rLa-H5w在SPF鸡体内诱导的HI抗体持续时间。将10只1周龄Leghorn SPF白鸡眼接种6电子数据交换50将拯救的重组病毒rLa-H5w置于50μl中。每周收集血清,检测NDV(⋄)和H5N1禽流感病毒的HI抗体(○). 数据表示为平均值±标准偏差。
图5:。
图5:。
接种不同H5N1病毒的小鼠经鼻致命攻击后的结果。(A) 接种rLa的小鼠的体重减轻和(B)存活率(·,▪) 或rLa-H5w(▵, □) 并接受1000 MLD鼻腔接种50流感病毒BHG/QH/05(▵, ▴) 或DK/FJ/02(□, ▪) 第二次免疫后两周。平均重量损失表示为原始重量的百分比。

中的注释

  • 注意以新城疫病毒为基础的减毒活疫苗。
    韩国忠,刘XP,李世生。 Han GZ等。 《维罗尔杂志》。2008年7月;82(13):6782。doi:10.128/JVI.00370-08。 《维罗尔杂志》。2008 PMID:18544791 免费PMC文章。 没有可用的摘要。

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