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.2002年4月2日;21(7):1764-74.
doi:10.1093/emboj/21.7.1764。

体内Paf1复合物在物理和功能上与转录延伸因子相关

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体内Paf1复合物在物理和功能上与转录延伸因子相关

沙龙·L·斯夸佐等。 欧洲工商管理硕士J. .

摘要

我们正在使用生物化学和遗传学方法研究Rtf1和Spt4-Spt5复合物,它们独立地被RNA聚合酶II牵涉到转录延伸。在这里,我们报告了这些研究的显著趋同。首先,我们纯化了Rtf1及其相关酵母蛋白。将此方法与遗传分析相结合,我们发现Rtf1和Leo1,一种功能未知的蛋白质,是RNA聚合酶II相关Paf1复合物的成员。进一步分析揭示了Paf1复合物成员、Spt4-Spt5和Spt16-Pob3(人类延伸因子FACT的酵母对应物)之间的等位基因特异性遗传相互作用。此外,我们在一个无偏见的基因筛查中独立分离了paf1和leo1突变,以筛选对感冒敏感的spt5突变的抑制因子。Paf1复合物、Spt4-Spt5和Spt16-Pob3之间的物理相互作用支持这些遗传相互作用。最后,我们发现Paf1复合物中的缺陷导致对6-氮杂嘧啶的敏感性和PUR5诱导减少,这些特性通常与转录延伸受损有关。综上所述,这些数据表明,Paf1复合物与Spt4-Spt5和Spt16-Pob3一起在转录延长期发挥作用。

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图1。Rtf1–TAP与Paf1、Cdc73、Ctr9、Leo1、Spt5和Rpb1共同净化。按照材料和方法中的描述,对表达未标记和TAP标记形式的Rtf1的酵母菌株进行平行处理。(A类)从~150 mg蛋白质提取物中提取的纯化蛋白质银染色凝胶。根据并行进行的免疫印迹分析,识别Rtf1、Paf1和Cdc73条带。没有对Ctr9和Leo1(预测质量分别为~125和54kDa)进行类似的分配,因为这些蛋白质的抗体不可用,也因为我们的质谱分析没有切除单个条带。(B类)纯化蛋白的免疫印迹,用针对Rtf1、Paf1、Cdc73和Spt5的抗血清显示。用单克隆抗体8WG16探针检测Rpb1。
无
图2。Rtf1和Leo1是Paf1复合体的成员。(A类)Rtf1与Leo1-HA1和HA1-Paf1共同免疫沉淀。从缺乏HA1标记蛋白(模拟,GHY1102)的菌株(含有HA1标记的Paf1(GHY1147)或Leo1(GHY1141))的提取物和LEO1-HA1 paf1Δ应变(GHY1146)。用HA1抗体结合珠沉淀的蛋白质用1 M KCl洗脱(洗脱)并用SDS-PAGE分离。在1M KCl洗脱后仍与珠结合的蛋白质通过在样品缓冲液(珠)中沸腾而释放。用免疫印迹法观察HA1标记蛋白和Rtf1。(B类)Leo1-HA1与Ctr9-Myc共免疫沉淀。对Leo1-HA1(模拟,GHY1092)和Ctr9-Myc Leo1-HA1菌株(GHY1184)的提取物进行免疫沉淀。(C类)Rtf1与Ctr9-Myc共免疫沉淀。对缺乏myc标签的菌株(模拟,GHY1002)、Ctr9-myc菌株(GHY1184)和paf1ΔCtr9-Myc菌株(GHY1222)。(D类)Paf1、Leo1和Rtf1在凝胶过滤柱上进行共分馏。在Superose 6柱上分离来自Leo1-HA1菌株(GHY1140)和HA1-Paf1菌株(GHK1147)的全细胞提取物,并通过免疫印迹分析洗脱液中的指示组分。每个实验至少进行两次,每个蛋白质的峰洗脱可重复地出现在级分10中。
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图3。Paf1复合物成员共享的突变表型。(A类)具有指定基因型且含有his4-912δlys2-128δ插入物生长在YPD培养基上,复制到补充有组氨酸、赖氨酸、亮氨酸、尿嘧啶和色氨酸(完全)以及SC-his和SC-lys培养板的最小培养基,并在30°C下培养3天。菌株:WT,FY118;rtf1Δ,KY522;paf1Δ,GHY917;cdc73Δ,1083加纳;leo1ΔGHY240;ctr9Δ,1157加纳。(B类)在YPD培养基上培养具有指定基因型的菌株,然后将其复制到缺乏或含有50µg/ml 6AU的SC-ura培养基上。在30°C下生长2天和4天后拍摄照片。菌株:野生型,KY286;rtf1Δ,425缅元;paf1Δ,KY686;cdc73Δ,KY689;leo1Δ,KY690;ctr9Δ,KY695。
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图3。Paf1复合物成员共享的突变表型。(A类)具有指定基因型且含有his4-912δlys2-128δ插入物生长在YPD培养基上,复制到补充有组氨酸、赖氨酸、亮氨酸、尿嘧啶和色氨酸(完全)以及SC-his和SC-lys培养板的最小培养基,并在30°C下培养3天。菌株:WT,FY118;rtf1Δ,KY522;paf1Δ,GHY917;cdc73Δ,1083加纳;leo1ΔGHY240;ctr9Δ,1157加纳。(B类)在YPD培养基上培养具有指定基因型的菌株,然后将其复制到缺乏或含有50µg/ml 6AU的SC-ura培养基上。在30°C下生长2天和4天后拍摄照片。菌株:野生型,KY286;rtf1Δ,425缅元;paf1Δ,KY686;cdc73Δ,KY689;leo1Δ,KY690;ctr9Δ,KY695。
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图4。 rtf1Δpaf1Δ应变有缺陷聚氨酯5归纳。北方分析聚氨酯5对野生型(KY589)制备的总RNA样本进行转录,rtf1Δ(KY453)和paf1Δ(KY687)细胞。菌株生长至~1×107SC-ura培养基中的细胞/ml,然后分裂。将6AU添加到培养物的一半,最终浓度为75µg/ml,两种培养物在30°C下生长指定时间(小时),然后再分离RNA。每条通道含有10微克总RNA聚氨酯5mRNA被剥离并探测轿车1mRNA作为负荷控制。
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图5。抑制标准贯入试验5生长缺陷paf1狮子座1突变。将具有指定基因型的菌株复制到YPD培养基上,并培养2(30℃)或4(15℃)天。菌株:spt5C型,GHY92;野生型,FY653;paf1-49 spt5C,144加纳元;leo1-43 spt5Cs,141加纳。
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图6。转录延伸因子与Paf1复合物相关。(A类)Spt5、Spt16和Pob3与HA1-Paf1和Leo1-HA1共同免疫沉淀。从缺乏HA1表位标签的菌株(模拟,GHY1102)、含有Leo1-HA1(GHY1184)、HA1-Paf1(GHY1147)的菌株和paf1ΔLeo1-HA1菌株(GHY1146)。如图所示,通过免疫印迹法分析免疫沉淀物中的Spt5、Spt16和Pob3。(B类)Spt5与Ctr9共免疫沉淀。对缺乏Myc标签的菌株(模拟,GHY1002)、Ctr9-Myc菌株(GHY1184)和paf1ΔCtr9-Myc菌株(GHY1222)。结合蛋白通过1 M盐洗脱(洗脱)从抗Myc微球中洗脱,然后通过在样品缓冲液(微球)中煮沸小球。如图所示,通过免疫印迹法分析免疫沉淀物中的Spt5和Ctr9,以及抗Myc抗体。(C类)从酵母菌株FY1639制备全细胞提取物,用于Rtf1的免疫沉淀。用抗Spt5、抗Rtf1和抗TBP抗血清检测蛋白质印迹。用所示抗体进行免疫印迹分析20µg等分全细胞提取物、7µg未结合蛋白和五分之三的免疫沉淀样品(珠)。(D类)生长缺陷paf1Δ dst1Δpaf1Δspt16-197双突变体。将具有指定基因型的细胞系列稀释液置于YPD培养基上,并在30°C下培养2天。菌株:野生型,FY653;paf1Δ,GHY917;dst1Δ,GHY285;spt16-197型,GHY1059;paf1Δdst1Δ,GHY1009;paf1Δspt16-197,1228加纳。

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