研究交流\(\def\h填{\hskip5em}\def\hfil{\hski p3em}\def\eqno#1{\hfil{#1}}\)

期刊徽标结构生物学
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国际标准编号:2053-230X

埃博拉病毒核蛋白-RNA复合物的冷冻电镜结构

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美国加州拉霍拉斯克里普斯研究所综合结构与计算生物学系,邮编:92037b条斯克里普斯研究所免疫学和微生物学系,美国加利福尼亚州拉霍亚92037
*通信电子邮件:erica@scripps.edu,andrew@screpps.edu公司

韩国成均馆大学医学院K.K.Kim编辑(2019年2月13日收到; 于2019年4月1日接受; 2019年4月24日在线)

埃博拉病毒是一种新出现的病毒,能够在人类中引起致命疾病。病毒基因组的复制、转录和包装是由病毒核衣壳进行的。核衣壳是病毒核蛋白、RNA和其他几种病毒蛋白的复合物。核蛋白形成大的、RNA结合的螺旋丝,并充当其他病毒蛋白的支架。3.1版这里展示的核蛋白–RNA螺旋丝的奥氏分辨率单粒子冷冻电子显微镜结构类似于以前以较低分辨率测定的结构,同时提供了蛋白质–蛋白质和蛋白质–RNA相互作用的改进的分子细节。本文所述结构的更高分辨率将有助于以核衣壳为靶点的新型特异性埃博拉病毒治疗药物的设计和表征。

1.简介

埃博拉病毒能够引起一种表现为严重出血热的疾病,病死率高达90%(1976年扎伊尔埃博拉出血热, 1978[扎伊尔埃博拉出血热,1976年(1978年)。公牛。世界卫生组织。56,271-293。]). 虽然疫情一般在地理上是孤立的,但2014-2015年的疫情造成了28起以上疫情000例并在国家之间传播(赫西等。, 2015【Hersey,S.、Martel,L.D.、Jambai,A.、Keita,S.,Yoti,Z.、Meyer,E.、Seeman,S.和Bennett,S.以及Ratto,J.、Morgan,O.、Akyeampong,M.A.、Sainvil,S.与Worrell,M.C.、Fitter,D.和Arnold,K.E.(2015)。MMWR Morb.Mortal.Wkly Rep.64,981-984。】). 埃博拉病毒是一种非片段化的负义RNA病毒,其RNA基因组在病毒的整个生命周期中都被病毒核蛋白(NP)包裹。这种蛋白-RNA复合物作为额外病毒蛋白的支架,包括病毒聚合酶,以进行病毒转录和复制。RNA、核蛋白和这些额外的病毒蛋白的复合物形成核衣壳,是埃博拉病毒的结构组成部分。全长埃博拉病毒核蛋白长度为739个氨基酸。然而,N末端450氨基酸(NP 1–450)对于蛋白质来说是必要的和足够的齐聚和RNA结合(渡边等。,2006年[渡边,S.、野田佳彦和川冈,Y.(2006),J.Virol.80,3743-3751.]),并且该蛋白质的N末端区域在病毒粒子中形成类似NP的螺旋丝(Bharat等。, 2012[Barat,T.A.M.,Noda,T.,Riches,J.D.,Kraehling,V.,Kolesnikova,L.,Becker,S.,Kawaoka,Y.和Briggs,J.A.G.(2012)。美国国家科学院院刊,1094275-4280。]).

NP的行列式齐聚和RNA结合一直是一些结构研究的重点。晶体结构和氢/氘交换质谱法已经表明NP的N末端区域具有一个折叠的核,其两侧是无序区域(Kirchdoerfer等。, 2015【Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.&Saphire,E.O.(2015),《细胞报告》第12期,第140-149页。】; 等。, 2015【梁·D·W、博雷克·D、卢特拉·P、宾宁·J·M、阿南帕德玛·M、刘·G、哈维·I·B、苏·Z、恩德利希·弗雷泽·A、潘·J、沙布曼·R·S、邱·W、戴维·R·A、奥特温诺夫斯基·Z、巴斯勒·C·F和阿马拉辛格·G·K(2015)。细胞报告11,376-389。】). NP的折叠核具有N端和C端叶,主要是α-螺旋结构。埃博拉病毒NP的有效晶体结构均使用单体NP(Dong等。, 2015[Dong,S.,Yang,P.,Li,G.,Liu,B.,Wang,W.,Liu; 柯奇多尔等。, 2015【Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.&Saphire,E.O.(2015),《细胞报告》第12期,第140-149页。】; 等。, 2015【梁·D·W、博雷克·D、卢特拉·P、宾宁·J·M、阿南帕德玛·M、刘·G、哈维·I·B、苏·Z、恩德利希·弗雷泽·A、潘·J、沙布曼·R·S、邱·W、戴维·R·A、奥特温诺夫斯基·Z、巴斯勒·C·F和阿马拉辛格·G·K(2015)。细胞报告11,376-389。】). 在其中两个结构中,NP与病毒蛋白35(VP35;Kirchdoerfer)的肽结合等。, 2015【Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.&Saphire,E.O.(2015),《细胞报告》第12期,第140-149页。】; 等。, 2015【梁·D·W、博雷克·D、卢特拉·P、宾宁·J·M、阿南帕德玛·M、刘·G、哈维·I·B、苏·Z、恩德利希·弗雷泽·A、潘·J、沙布曼·R·S、邱·W、戴维·R·A、奥特温诺夫斯基·Z、巴斯勒·C·F和阿马拉辛格·G·K(2015)。细胞报告11,376-389。】). VP35肽的结合被认为对维持NP的单体状态和防止宿主RNA过早和非特异性包被很重要(Kirchdoerfer等。, 2015[Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.和Saphire,E.O.(2015)。细胞。众议员12140-149。]; 等。, 2015【梁·D·W、博雷克·D、卢特拉·P、宾宁·J·M、阿南帕德玛·M、刘·G、哈维·I·B、苏·Z、恩德利希·弗雷泽·A、潘·J、沙布曼·R·S、邱·W、戴维·R·A、奥特温诺夫斯基·Z、巴斯勒·C·F和阿马拉辛格·G·K(2015)。细胞报告11,376-389。】; 莱拉等。, 2011【Leyrat,C.,Yabukarski,F.,Tarbouriech,N.,Ribeiro,E.A.Jr,Jensen,M.R.,Blackledge,M.,Ruigrok,R.W.&Jamin,M.(2011),公共科学图书馆·病理学7,e1002248。】).

去除VP35肽后,NP齐聚成线性聚合物能够封装RNA。齐聚作用NP的N端和C端蛋白区域介导到两个折叠的NP 1–450核心(Kirchdoerfer等。, 2015【Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.&Saphire,E.O.(2015),《细胞报告》第12期,第140-149页。】; 等。, 2015【梁·D·W、博雷克·D、卢特拉·P、宾宁·J·M、阿南帕德玛·M、刘·G、哈维·I·B、苏·Z、恩德利希·弗雷泽·A、潘·J、沙布曼·R·S、邱·W、戴维·R·A、奥特温诺夫斯基·Z、巴斯勒·C·F和阿马拉辛格·G·K(2015)。细胞报告11,376-389。】). 这个齐聚NP引起两个叶之间的构象变化,为RNA创造高亲和力结合位点(Kirchdoerfer等。, 2015【Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.&Saphire,E.O.(2015),《细胞报告》第12期,第140-149页。】; 杉田等。,2018年【Sugita,Y.、Matsunami,H.、Kawaoka,Y.和Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。】). 埃博拉病毒核衣壳和埃博拉流感病毒NP 1–450的冷冻电子断层扫描(Cryo-ET)研究证明了NP丝的左手螺旋性质,以及NP的第一个结构证据齐聚调节NP单体之间接触的区域(Wan等。, 2017【Wan,W.,Kolesnikova,L.,Clarke,M.,Koehler,A.,Noda,T.,Becker,S.&Briggs,J.A.G.(2017),《自然》(伦敦),551,394-397。】). 然而,这项早期低温-ET工作的有限分辨率使人们无法清楚地阐明NP之间以及与RNA之间的分子相互作用。最近使用单粒子低温电子显微镜(cryo-EM)对NP 1–450进行的研究确定,该螺旋丝的结构为3.6分辨率(Sugita等。,2018年【Sugita,Y.、Matsunami,H.、Kawaoka,Y.和Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。】). 这种结构揭示了单体、伴侣NP和寡聚体、RNA-bound NP之间的分子相互作用和构象变化。这里,我们使用单粒子低温电子显微镜以3.1的改进分辨率测定了NP 1–450螺旋的结构Å.

2.材料和方法

2.1. NP螺旋丝的表达

NP细丝的制备方法与之前描述的方法类似(Bharat等。, 2012[巴拉特,T.A.M.,野田佳彦,里奇斯,J.D.,克莱林,V.,科莱斯尼科娃,L.,贝克尔,S.,川冈,Y.和布里格斯,J.A.G.(2012),美国国家科学院院刊,109,4275-4280.]). 0.5将mg NP 1–450 pDisplay质粒稀释至20ml Opti-MEM,然后通过0.22过滤µm过滤器。在该溶液中添加1.5mg聚乙烯亚胺(PEI)在5中ml Opti-MEM。允许DNA–PEI复合物孵育20min,然后添加到1l 293F细胞,1.1×106细胞毫升−1生长在293Freestyle培养基中我挡住了烧瓶。转染细胞在37°C和8%CO下培养2在130转速最小值−1对于48小时。

2.2。NP螺旋丝的提纯

细胞在1000℃离心收集用于15分钟,然后在8分钟内再次悬浮毫升25M(M)三氯化氢,150M(M)氯化钠,1M(M)氯化钙,5M(M) β-巯基乙醇。然后通过添加10毫升25M(M)Tris–HCl pH 7.4,150M(M)氯化钠,1M(M)氯化钙,0.2%Igepal CA-630,5M(M) β-巯基乙醇。在3200℃离心澄清裂解液对于20最小值。

通过将清除的裂解物装载到5的双缓冲垫上,分离NP螺旋丝ml 20%蔗糖和5ml 90%蔗糖。蔗糖垫在超离心机中使用贝克曼SW28转子在28000转速最小值−1对于3h.蔗糖垫通过底部穿刺破碎,并手动收集~1的馏分ml进行SDS–PAGE分析。将含有NP 1–450的组分透析至500毫升25M(M)Tris–盐酸,150M(M)氯化钠,1M(M)氯化钙,5M(M) β-巯基乙醇使用1MDa分子量切断透析管过夜,只需更换一次缓冲液即可去除蔗糖。然后将ml透析蛋白加载到两个不连续的氯化铯梯度中的一个梯度上,该梯度包含24个毫升25%(w个/v(v))氯化铯和10毫升60%(w个/v(v))氯化铯。氯化铯梯度在28时在SW28转子中旋转000转速最小值−1用于4h.在底管穿刺后手动分馏梯度,并在隔夜透析含有NP 1–450的组分以去除氯化铯之前用SDS–PAGE分析组分。

NP 1–450通过粒化透析蛋白(~3)进行浓缩ml)至400使用Beckman TLA100.3转子在48000转速最小值−1对于1h.颗粒在400年重新悬浮25微升M(M)Tris–HCl pH 7.4,150M(M)氯化钠,1M(M)氯化钙,5M(M) β-巯基乙醇。测量再悬浮样品的紫外吸收率得出A类280第3.8页,带有A类260/A类280比率为1.8。

2.3. 低温电子显微镜数据采集和预处理

将UltraAuFoil R 1.2/1.3 Au 300网格(Quantifoil)等离子清洗7次带有Ar/O的s2气体混合物。4将µl样品吸附在网格上,并将网格吸附4使用试管机器人IV(Thermo Fisher),然后将其放入液态乙烷中冷冻。数据收集使用Leginon公司(苏洛威等。, 2005[Suloway,C.、Pulokas,J.、Fellmann,D.、Cheng,A.、Guerra,F.、Quispe,J.,Stagg,S.、Potter,C.S.和Carragher,B.(2005),《结构生物学杂志》151、41-60。])塔洛斯·阿奇提卡(Herzik等。, 2017【Herzik,M.A.Jr,Wu,M.&Lander,G.C.(2017),《自然方法》,第14期,第1075-1078页。】)(赛默飞世尔)在200kV和K2 Summit探测器(Gatan)处于计数模式,放大倍数为43478,剂量率为5.06每秒每像素e,采集20013的ms帧s暴露,总剂量为49.7e(电子)Å−2。框架对齐使用运动Corr2(郑等。, 2017[Zheng,S.Q.,Palovcak,E.,Armache,J.-P.,Verba,K.A.,Cheng,Y.&Agard,D.A.(2017).自然方法,14,331-332.]). 使用Gctf公司(张,2016【张凯(2016).《结构生物学杂志》193,1-12.】)和估计分辨率低于5的图像删除了“”。

2.4. 数据处理和细化

手动拾取丝状物,并使用360像素的盒子大小和1.15像素的大小从丝状物中提取颗粒每像素Ω,盒间距离为100奥(He&Scheres,2017年【He,S.&Scheres,S.H.W.(2017),《结构生物学杂志》198,163-176。】). 由此产生的颗粒堆积在RELION公司2.1(基马尼乌斯等。, 2016【Kimanius,D.,Forsberg,B.O.,Scheres,S.H.W.和Lindahl,E.(2016)。Elife,5,e18722。】)将排列不良的颗粒排除在后续处理之外。三维精炼由使用reli_helix_toolbox(直升机工具箱)(He&Scheres,2017年【He,S.&Scheres,S.H.W.(2017),《结构生物学杂志》198,163-176。】)根据埃博拉病毒核衣壳(Bharat等。, 2012[巴拉特,T.A.M.,野田佳彦,里奇斯,J.D.,克莱林,V.,科莱斯尼科娃,L.,贝克尔,S.,川冈,Y.和布里格斯,J.A.G.(2012),美国国家科学院院刊,109,4275-4280.]; 等。, 2017【Wan,W.,Kolesnikova,L.,Clarke,M.,Koehler,A.,Noda,T.,Becker,S.&Briggs,J.A.G.(2017),《自然》(伦敦),551,394-397。】). 相同的螺旋参数用作3D的起始螺旋参数精炼这些参数可以在细化过程中进行优化。

原子坐标被内置到密度中,用于计算非对称单元螺旋线的使用库特(埃姆斯利等。, 2010【Emsley,P.、Lohkamp,B.、Scott,W.G.和Cowtan,K.(2010),《水晶学报》D66、486-501。】)和单体埃博拉病毒NP结构,PDB入口4升(柯奇多尔等。, 2015【Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.&Saphire,E.O.(2015),《细胞报告》第12期,第140-149页。】),作为起始模型。之前发布的3.6带PDB代码的奥数分辨率模型5z9瓦用于比较(Sugita等。,2018年【Sugita,Y.、Matsunami,H.、Kawaoka,Y.和Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。】). 坐标根据地图使用Rosetta放松(地脉等。, 2015[DiMaio,F.、Song,Y.、Li,X.、Brunner,M.J.、Xu,C.、Conticello,V.、Egelman,E.、Marlovits,T.、Cheng,Y.和Baker,D.(2015)。自然方法,12361-365。]). 最终坐标使用摩尔概率(威廉姆斯等。,2018年【Williams,C.J.,Head,J.J.,Moriarty,N.W.,Prisant,M.G.,Videau,L.L.,Deis,L.N.,Verma,V.,Keedy,D.A.,Hintze,B.J.,Chen,V.B.,Jain,S.,Lewis,S.M.,Arendall,W.B.,Snoeyink,J.,Adams,P.D.,Lovell,S.C.,Richardson,J.S.&Richardsen,J.S(2018),《蛋白质科学》27,293-315.】)和EM振铃器(巴拉德等。, 2015【Barad,B.A.,Echols,N.,Wang,R.Y.-R.,Cheng,Y.,DiMaio,F.,Adams,P.D.&Fraser,J.S.(2015)。《自然方法》,第12943-946页。】). 数据收集和处理以及模型重新定义统计数据如表1所示[链接].

表1
数据收集和协调模型重新定义统计

数据和重建统计
EMDB代码 EMD-0522
显微镜 Talos Actica公司
电压(kV) 200
探测器 Gatan K2峰会
剂量率(e/像素/秒) 5.06
暴露 13
剂量(eÅ−2) 49.7
框架 65
离焦范围(µm) 0.6–2.0
丝状物 2143
粒子 24609
B类系数(Ω2) −94
分辨率(Ω) 3.1
坐标模型细化
PDB代码 6螺母
残留物数量
  氨基酸 379
  核苷酸类 6
R.m.s.d.,债券(Au) 0.016
R.m.s.d.,角度(°) 1.35
拉马钱德兰统计
  支持(%) 99.2
  允许(%) 0.8
  异常值(%) 0
旋转器异常值(%) 0.3
冲撞得分 2.89
摩尔概率分数 1.08
电子林格分数 3.15

3.结果

NP螺旋丝在对齐的剂量加权显微照片电影中具有倒钩状外观(图1[链接]). 粒子的二维排列揭示了具有明显二级结构特征的类别。精细的3D粒子方向显示了垂直于螺旋轴的视图的优势,正如在原始显微照片中选取的螺旋丝方向所预期的那样(图2[链接]). 最终映射的精细螺旋参数为−14.71°扭曲和2.84每个NP原聚体的上升。重建后的地图分辨率为3.1使用金标准傅里叶-壳层相关截止值0.143进行估算。局部分辨率估计显示分辨率范围为3.0–3.8奥(图2[链接]),NP折叠核心显示最高分辨率,而外围表面暴露区域重建为较低分辨率,可能表明局部迁移或构象复形。

[图1]
图1
通过二维对齐进行图像采集和处理。()对原始显微照片电影进行校准和剂量加权。比例尺为100纳米。(b条)拾取粒子的二维对齐显示了粒子的螺旋性质,并有二级结构的证据。
[图2]
图2
粒子角度分布和贴图分辨率。()精细粒子取向的角分布表明垂直于灯丝轴的视图(红色)占主导地位。(b条)傅里叶壳层相关图显示分辨率为3.1使用金色标准FSC截止值0.143,如虚线所示。NP螺旋丝的局部分辨率(c(c))和一个孤立的NP原聚体(d日)估计为RELION公司(库库克尔比尔等。2014年[Kucukelbir,A.、Sigworth,F.J.和Tagare,H.D.(2014)。《自然方法》,第11期,第63-65页。])表明NP的高分辨率折叠核具有低分辨率外围区域。

地图的高分辨率使建筑和精炼埃博拉病毒NP与RNA结合的原子模型。大多数氨基酸的侧链密度很明显,我们观察到6种氨基酸的密度核苷酸RNA,类似于先前的研究(Sugita等。,2018年【Sugita,Y.、Matsunami,H.、Kawaoka,Y.和Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。】; 图3[链接]). 由于NP被认为与RNA结合而没有序列特异性,RNA核苷酸在地图上看到的表示界的平均值核苷酸。我们将这种密度建模为六个腺苷残基的聚合物,因为正如预期的那样,这些残基都不进行序列特异性接触。

[图3]
图3
模型与重建密度的拟合。NP–RNA螺旋丝的立体视图()结合RNA(b条)N端子齐聚手臂和(c(c))C端子齐聚螺旋线。

此处显示的坐标模型与之前发布的3.6很好地重叠与RNA结合的NP(Sugita等。,2018年【Sugita,Y.、Matsunami,H.、Kawaoka,Y.和Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。】; 图4[链接]). 在之前发布的地图和此处显示的地图之间,似乎存在2.2%的各向同性拉伸。我们将此归因于之前收集的数据的像素大小校准中的问题。然而,这种影响很小,不太可能影响之前研究得出的结论。未来的抗病毒药物开发工作可能受益于记录此类校准问题,以产生更准确的模型。

[图4]
图4
()3.1的立体视图这里给出的分辨率模型(深绿色)与之前发布的3.6叠加?分辨率蛋白质模型(浅绿色;PDB入口5z9瓦; 杉田等。,2018年【Sugita,Y.、Matsunami,H.、Kawaoka,Y.和Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。】). 此处所示模型中的结合RNA显示为棒状。3.1的比较这里显示的分辨率密度(b条)使用3.6Sugita的光学分辨率密度等。(2018【Sugita,Y.、Matsunami,H.、Kawaoka,Y.和Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。】) (c(c))显示了中高分辨率数据的RNA碱基的更清晰定义(b条).

NP与RNA的相互作用主要由静电相互作用介导,其中Lys160、Arg174、Arg298、His310和Arg401直接与RNA主干带负电荷的磷酸盐相互作用(图5[链接]). 其他残留物Val178、Leu245、Leu331和Val334为疏水填料创造了表面核苷酸碱基。启动-启动NP相互作用似乎最小。螺旋线匝间间隙大(图5[链接]b条)提示由带电荷的氨基酸在匝间介导的柔性或构象异构的侧链相互作用,这之前被假设为赋予NP丝柔性(Sugita等。,2018年【Sugita,Y.、Matsunami,H.、Kawaoka,Y.和Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。】).齐聚作用NP的折叠是由侧对侧相互作用以及NP折叠核心两侧的N-和C-末端区域介导的(图5[链接]c(c)). 侧对侧NP相互作用由盐桥和疏水相互作用的混合物介导(图5[链接]d日). N端子齐聚该区域是一个螺旋,通过短连接体连接到NP的折叠核心。该螺旋将Ile24埋入邻近NP的疏水囊中,并与VP35伴侣肽(Kirchdoerfer等。, 2015【Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.&Saphire,E.O.(2015),《细胞报告》第12期,第140-149页。】; 等。, 2015【梁·D·W、博雷克·D、卢特拉·P、宾宁·J·M、阿南帕德玛·M、刘·G、哈维·I·B、苏·Z、恩德利希·弗雷泽·A、潘·J、沙布曼·R·S、邱·W、戴维·R·A、奥特温诺夫斯基·Z、巴斯勒·C·F和阿马拉辛格·G·K(2015)。细胞报告11,376-389。】)图5[链接]e(电子)). C端子齐聚区域折叠成一对螺旋,这些螺旋叠加在相邻NP的等效螺旋上,主要使用疏水残基(图5[链接](f)). 这些螺旋的形成创造了一个平台,将折叠NP核的C末端叶的疏水表面放置在该平台上,支持NP核中寡聚化诱导的NP构象变化模型,以创建RNA-结合位点。

[图5]
图5
蛋白质–参与NP齐聚和RNA结合的蛋白质界面。()RNA在折叠核心的NP N端和C端叶之间结合,由几个基本氨基酸以及核苷酸碱基堆积的疏水表面的形成介导。(b条)NP之间的导通-匝间相互作用最小,螺旋匝间存在较大间隙。(c(c)(f))NP-蛋白质-蛋白质相互作用在相互作用中扩散(d日),N端子齐聚地区(e(电子))和C端子齐聚地区((f)).

4.讨论

与其他非片段负义RNA病毒的核蛋白类似,埃博拉病毒核蛋白开始其生命,由VP35以单体形式伴随,然后转变为与病毒RNA结合的寡聚形式。这里,我们展示了寡聚RNA结合埃博拉毒核蛋白的高分辨率低温电子显微镜结构。从伴侣单体到寡聚体、RNA-结合形式的转变涉及广泛蛋白质-蛋白质界面的破坏和形成,这些界面与构象变化相耦合。从伴侣单体中去除VP35肽是这些变化的先决条件(Kirchdoerfer等。, 2015【Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.&Saphire,E.O.(2015),《细胞报告》第12期,第140-149页。】),尽管VP35是如何删除的体内尚不清楚,可能涉及其他细胞或病毒因子,如病毒聚合酶L。从NP中去除VP35后,NP N末端齐聚传入单体的区域和侧面NP能够与相邻的NP相互作用。C末端的后续折叠齐聚螺旋创造了一个疏水平台,通过其C端叶结合传入的NP。NP的C端螺旋的这种相互作用−1带有NP的C端叶导致NP的C端叶移动朝向N末端叶,形成RNA-结合位点。以这种方式将单体NP添加到生长的低聚物中,可以使病毒RNA在5′至3′方向上被包裹,这一机制有助于病毒RNA的共复制包裹。与该模型相关的一个未知问题是,如何逆转这一过程,使病毒RNA暴露于RNA合成,因为核苷酸碱基当用NP包埋时,不能作为聚合酶模板。

3.1这里介绍的分辨率结构概括了之前发布的3.6中观察到的特征奥分辨率结构(Sugita等。,2018年【Sugita,Y.、Matsunami,H.、Kawaoka,Y.和Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。】)包括蛋白质与蛋白质和蛋白质与RNA的相互作用。改进的分辨率提供了蛋白质侧链和核苷酸碱基,阐明NP原生质体和RNA之间的分子接触。埃博拉病毒仍然是世界卫生安全的新威胁。应对这一威胁的关键是发现和评估新的治疗方法。与RNA结合的埃博拉病毒NP的高分辨率结构将更好地描述以病毒核衣壳组装为靶点的潜在抗病毒药物。

致谢

我们非常感谢Mark Herzik和Bill Anderson在显微镜校准和数据收集方面的帮助。特别感谢Sebastian Raemisch在使用Rosetta放松。我们也感谢查尔斯·鲍曼的计算支持。

资金筹措信息

这项工作由NIH/NIAID向RNK拨款AI123498,向EOS和ABW拨款AI118016。

工具书类

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