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国际标准编号:2053-230X

Tim50(164–361)的结构表明Tim50接收线粒体前序列的机制

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美国阿拉巴马州伯明翰市阿拉巴马大学细胞、发育和综合生物学系(CDIB),邮编35294
*通信电子邮件:bdsha@uab.edu

S.Wakatsuki编辑,美国斯坦福大学(2014年10月1日收到; 2015年7月7日接受; 在线2015年8月25日)

线粒体前蛋白通过外膜(TOM)复合体的转定位酶转运。然后,Tim50和Tim23通过跨内膜的膜间空间(IMS)转移带有N末端靶向预序列的前蛋白。这个晶体结构Tim50[Tim50(164–361)]IMS域的奥分辨率。这里晶体结构2.67时Tim50(164–361)的报道了在不同条件下结晶的奥分辨率。与先前确定的Tim50(164–361)结构相比,突出部分发生了显著的构象变化β-Tim50的发夹和附近的螺旋A2。这些发现表明,Tim50的IMS结构域在假定的前序列结合沟中表现出显著的结构可塑性,这可能在Tim50作为与前序列和多种其他蛋白相互作用的TIM复合体中的受体蛋白的功能中发挥重要作用。更有趣的是,晶体填充表明,来自相邻单体的螺旋A1对接到假定的Tim50(164–361)预序列结合槽中,这可能模拟Tim50和预序列复合体的情况。Tim50可以通过利用凸出物的内侧识别和绑定预序列螺旋β-发夹通过疏水相互作用。因此β-Tim50发夹可能在接收预先序列和招募Tim23用于随后的蛋白质易位中发挥关键作用。

关键词: 时间50前蛋白转运IMS域.

1.简介

线粒体含有大量蛋白质。然而,线粒体只能自行合成少数蛋白质(西克曼等。, 2003【Sickmann,A.,Reinders,J.,Wagner,Y.,Joppich,C.,Zahedi,R.,Meyer,H.E.,Schönfisch,B.,Perschil,I.,Chacinska,A.,Guiard,B.,Rehling,P.,Pfanner,N.&Meisinger,C.(2003),美国国家科学院学报,10013207-13212。】; 灰色等。, 1999[Gray,M.W.,Burger,G.&Lang,B.F.(1999),《科学》,第283期,第1476-1481页。])。大多数线粒体蛋白质在细胞溶质中被翻译,并通过一种多蛋白复合体运输到线粒体:外膜复合体的转位酶(TOM)和内膜复合体(TIM)的转位酶(Neupert&Herrmann,2007)【Neupert,W.&Herrmann,J.M.(2007),《生物化学年鉴》76,723-749。】)。超过一半的线粒体前蛋白是通过形成带正电的N末端前序列合成的两性恋的将前蛋白靶向线粒体的螺旋。前蛋白通过外膜(TOM)复合体的一般转定位酶和内膜(TIM23)复合体(Abe)的前序列转定位酶导入等。, 2000【Abe,Y.,Shodai,T.,Muto,T.、Mihara,K.、Torii,H.、Nishikawa,S.、Endo,T.和Kohda,D.(2000)。细胞,100551-560。】; 查辛斯卡等。, 2009【Chacinska,A.,Koehler,C.M.,Milenkovic,D.,Lithgow,T.&Pfanner,N.(2009)。细胞,138,628-644。】; Wu&Sha,2006年[Wu,Y.&Sha,B.(2006),《自然结构分子生物学》,第13期,第589-593页。]; 阿尔德等。, 2008[Alder,N.N.,Jensen,R.E.&Johnson,A.E.(2008)。细胞,134,439-450。]; 沃尔格特尔等。, 2009【Vögtle,F.N.,Wortelkamp,S.,Zahedi,R.P.,Becker,D.,Leidhold,C.,Gevaert,K.,Kellermann,J.,Voos,W.,Sickmann,A.,Pfanner,N.&Meisinger,C.(2009)。细胞,139,428-439。】)。经过TOM复合体后,带有N末端靶向预序列的前蛋白被Tim50(TIM23复合体的重要成员)在膜间空间(IMS;盖斯勒等。2002年[Geissler,A.,Chacinska,A.,Truscott,K.N.,Wiedemann,N.,Brandner,K.,Sickmann,A.,Meyer,H.E.,Meisinger,C.,Pfanner,N.&Rehling,P.(2002).细胞,111,507-518.]; 山本等。2002年[山本,H.,Esaki,M.,Kanamori,T.,Tamura,Y.,西川,S.&Endo,T.(2002).细胞,111,519-528.]; 莫克拉尼亚克等。, 2003【Mokranjac,D.、Paschen,S.A.、Kozany,C.、Prokisch,H.、Hoppins,S.C.、Nargang,F.E.、Neupert,W.和Hell,K.(2003)。EMBO J.22,816-825。】; 拉赫曼等。2014年[Rahman,B.、Kawano,S.、Yunoki-Esaki,K.、Anzai,T.和Endo,T.(2014)。联邦公报第588、678-684页。])。在TIM23复合体内,TIM23蛋白的C末端半部分形成穿过线粒体内膜的跨膜通道。Tim50的IMS域与Tim23的N末端IMS域相互作用,将前蛋白传递给Tim23(Schulz等。, 2011【Schulz,C.、Lytovchenko,O.、Melin,J.、Chacinska,A.、Guiard,B.、Neumann,P.、Ficner,R.、Jahn,O.,Schmidt,B.和Rehling,P.(2011)《细胞生物学杂志》195、643-656。】)。Tim50还起到枢纽蛋白的作用,与其他TIM23复合物成员如Tim21相互作用,调节TIM23跨膜通道的打开和关闭(Chacinska等。, 2005【Chacinska,A.,Lind,M.,Frazier,A.E.,Dudek,J.,Meisinger,C.,Geissler,A.,Sickmann,A.,Meyer,H.E.,Truscott,K.N.,Guiard,B.,Pfanner,N.&Rehling,P.(2005)。细胞,120,817-829。】; 梅内克等。, 2006[Meinecke,M.,Wagner,R.,Kovermann,P.,Guiard,B.,Mick,D.U.,Hutu,D.P.,Voos,W.,Truscott,K.N.,Chacinska,A.,Pfanner,N.&Rehling,P.(2006),《科学》,第3121523-1526页。]; 利托夫琴科等。, 2013【Lytovchenko,O.,Melin,J.,Schulz,C.,Kilisch,M.,Hutu,D.P.&Rehling,P.(2013),EMBO J.32,886-898.】).

Tim50的IMS结构域包含一个抗胰蛋白酶的核心结构域,其中包含164–361个残基。这个晶体结构Tim50(164–361)的分辨率已确定为1.83奥(钱)等。, 2011[钱,X,盖伯特,M,Höpker,J,严,M,李,J,魏德曼,N,范德拉恩,M,普凡纳,N&沙,B(2011),《分子生物学杂志》411,513-519。])。这个晶体结构Tim50(164–361)中包含一个大槽,作为预设序列的假定绑定位置,并有一个凸起β-发夹。已经证明β-发夹对于Tim50和Tim23的相互作用至关重要,这表明这两种重要的Tim23蛋白在前蛋白输入中具有协同作用。据报道,N末端靶向预序列构成了一个两性恋的螺旋线(Abe等。, 2000【Abe,Y.,Shodai,T.,Muto,T.、Mihara,K.、Torii,H.、Nishikawa,S.、Endo,T.和Kohda,D.(2000)。细胞,100551-560。】)。Tim50(164–361)结构中鉴定的推定序列前结合槽足够大,可以容纳α-由预序列形成的螺旋线。然而,目前尚不清楚前蛋白受体Tim50如何在分子水平上与前序列螺旋相互作用。

Tim50作为膜间空间的前蛋白受体,能够与大量不同的前序列相互作用。为了适应不同的预序列,Tim50可能在假定的预序列绑定槽处表现出构象灵活性。本研究提供了结构证据,表明Tim50的假定预序列结合槽具有显著的塑性,可以与不同的预序列相互作用。有趣的是,新解决的Tim50(164–361)结构中的晶体堆积提供了信息,以揭示Tim50的IMS域具体识别预序列螺旋并与之交互作用的机制。

2.方法

酿酒酵母Tim50(164–361)按照钱的描述进行表达和纯化等。(2011[钱,X,盖伯特,M,Höpker,J,严,M,李,J,魏德曼,N,范德拉恩,M,普凡纳,N&沙,B(2011),《分子生物学杂志》411,513-519。])。使用悬滴蒸汽扩散法在条件100下生长晶体M(M)MES pH 6.0,1.6M(M)硫酸镁4(表1[链接])。晶体为针状,尺寸为0.1×0.1×0.5mm.数据收集自在含有20%甘油的母液中冷却的晶体。晶体将X射线衍射到2.67APS处SER-CAT波束线上的光学分辨率(表2[链接])。这些新获得的晶体没有以前产生的晶体衍射(钱等。, 2011[钱,X,盖伯特,M,Höpker,J,严,M,李,J,魏德曼,N,范德拉恩,M,普凡纳,N&沙,B(2011),《分子生物学杂志》411,513-519。]),可能是因为在非对称单元在新获得的晶体中。数据处理中使用了100幅振荡为1°的衍射数据图像。衍射数据使用香港(HKL)-3000(次要等。, 2006[米诺·W·米诺、辛布罗夫斯基·M·米诺(Cymborowski)、奥特温诺夫斯基(Otwinowski),Z·&赫鲁斯茨(Chruszcz),M·(2006),《水晶学报》D62,859-866.])。Tim50(164–361)结构的原子坐标(PDB条目3夸尔; 等。, 2011[钱,X,盖伯特,M,Höpker,J,严,M,李,J,魏德曼,N,范德拉恩,M,普凡纳,N&沙,B(2011),《分子生物学杂志》411,513-519。])被用作分子置换方法中的搜索模型,使用相位器(麦考伊等。2007年【McCoy,A.J.,Grosse-Kunstleve,R.W.,Adams,P.D.,Winn,M.D.,Storoni,L.C.&Read,R.J.(2007),《应用结晶杂志》,第40期,第658-674页。】)。模型由手动构建库特(埃姆斯利和考坦,2004年【Emsley,P.&Cowtan,K.(2004),《水晶学报》,D60,2126-2132。】).精炼使用REFMAC公司(Vagin&Teplyakov,2010年【Vagin,A.和Teplyakov,A.(2010),《水晶学报》,D66,22-25。】)来自中央对手方清算所4套房(优胜者等。, 2011[Winn,M.D.等人(2011),《晶体学报》,第67卷,第235-242页。])。坐标和结构因子已存放在PDB中,并带有登录代码4平方英尺.

表1
Tim50的结晶条件(164–361)

方法 悬滴蒸汽扩散
板材类型 汉普顿研究公司VDX 24孔板
温度(K) 293
蛋白质浓度(mg毫升−1) 15
蛋白质溶液的缓冲液成分 10M(M)Tris pH值7.5150M(M)氯化钠
储层溶液的组成 1M(M)硫酸镁,100M(M)Tris pH 7.5,5%甘油
体积和落差 2 + 2微升
储液罐容积(ml) 1

表2
数据收集和结构测定Tim50(164–361)

括号中的值表示最高分辨率外壳。

数据收集  
衍射光源 APS光束线22-ID
温度(K) 100
探测器 MAR CCD,300毫米
晶体到探测器的距离(mm) 220
每张图像的旋转范围(°) 1
总旋转范围(°) 100
每张图像的曝光时间(s) 2
“空间”组 41212
晶胞参数(Å,°) =b条= 164.29,c(c)=150.53,α=β=γ= 90.00
波长(Ω) 0.9500
分辨率(Ω) 38.52–2.67 (2.77–2.672)
R(右)sym(对称)R(右)合并 0.088 (0.36)
 〈/σ()〉 28.48 (2.66)
完整性(%) 99.79 (99.00)
多重性 7.7 (3.2)
收集的反射次数 58660 (5739)
可能的独特反射数 58798
精炼
分辨率(Ω) 2.67
R(右)工作/R(右)自由的 0.1866 (0.2704)/0.2394 (0.3274)
原子数
  蛋白质 9305
   109
B类因子(λ2)
  蛋白质 66.10
   74.5
R.m.s.偏差
  粘结长度(Ω) 0.009
  结合角(°) 1.38

3.结果和讨论

在本研究中,我们描述了晶体结构酵母Tim50(164–361),这与我们之前报道的情况有显著不同(钱等。, 2011[钱,X,盖伯特,M,Höpker,J,严,M,李,J,魏德曼,N,范德拉恩,M,普凡纳,N&沙,B(2011),《分子生物学杂志》411,513-519。])。结构数据支持这样一种观点,即Tim50假定的前序列结合沟可能具有显著的结构灵活性,可以识别线粒体生物发生的各种前蛋白并与之相互作用。数据还说明了Tim50可以专门识别并与两性恋的预排序螺旋。

这个晶体结构属于酿酒酵母本研究中测定的Tim50(164–361)命名为Tim50_new晶体结构前面描述的Tim50(164–361)中的一个被称为Tim50_old(Qian等。, 2011[钱,X,盖伯特,M,Höpker,J,严,M,李,J,魏德曼,N,范德拉恩,M,普凡纳,N&沙,B(2011),《分子生物学杂志》411,513-519。])。Tim50_new的结构测定为2.67使用Tim50_old作为搜索模型的分子置换法的奥数分辨率(表1[链接]和2[链接])。在Tim50_new结构中,残基177–356的电子密度可见。在Tim50_new中,Tim50 IMS结构域分子形成一个单体,由五个α-螺旋(A1–A5)和九个β-绞线(B1–B9)(图1[链接])。该结构的核心由平行线构成β-由B1、B4、B5、B8和B9形成的板材。A类β-从Tim50分子表面突出约15的发夹?由B2和B3以及B2和B2之间的短回路形成(图1[链接])。靠近突出部分β-发夹,Tim50_new包含一个大槽,该槽被假设为预序列绑定位置(图1[链接])。一个中有六个单体非对称单元Tim50_new,而在非对称单元时间50_old。

[图1]
图1
Tim50_new的晶体结构。()Tim50_new结构在功能区表示中显示为立体视图。分子的N端和C端被标记。二级结构A1、A2、B2和B3已标记。假定的预顺序绑定槽用箭头表示。图中所示的Tim50分子是单体E类在中非对称单元Tim50_new,属于I组(b条)。Tim50_new结构如所示表面电位代表。Tim50_new分子的取向与()。适用于表面电位如下图所示。本文中的数字都是使用PyMOL公司.

当将Tim50_new结构与Tim50_old结构进行比较时,大多数分子重叠得很好。然而,突出部分发生了显著的构象变化β-由B2和B3以及附近的螺旋A2形成的发夹(图2[链接])。Tim50_new的主体,不包括突出部分β-发夹和螺旋A2可以与Tim50_old中的对应物很好地重叠,根平方偏差(r.m.s.d)为0.550ω表示主链原子。相反,突出物的尖端β-发夹偏离分子主体4.5与Tim50_old结构中的Å相比,Tim50_new结构中的Å(图2[链接])。同时,附近的螺旋线A2移动约5朝向凸出物的方向β-发夹(图2[链接])。此外,Tim50_new中的螺旋A2比Tim50_old中的多2圈。因为突出β-发夹和螺旋A2构成Tim50假定的预序列结合槽的一侧,Tim50_new中的构象变化可能会显著改变槽的物理性质。这些结构观察表明,Tim50的IMS结构域在假定的前序列结合沟中表现出显著的结构可塑性,这可能在Tim50作为与各种前序列相互作用的TIM23复合体中的受体蛋白的功能中发挥重要作用。Tim50假定的预序列绑定槽有能力调整其自身构造,以适应不同尺寸、疏水性和其他物理性质的预序列,这是合理的。

[图2]
图2
突出的部分β-发夹和附近的螺旋A2在Tim50分子中表现出结构可塑性。()金中的Tim50_新结构与银中的Tim 50_旧结构重叠。该图中的Tim50分子从图1中的方向绕水平轴旋转约90°。1[链接]。图中假定的预序列绑定槽面向读取器。标记了次级结构A2、B2和B3。Tim50的N端和C端被标记。此处显示的Tim50_new结构是单体E类在中非对称单元,属于I组(b条)基团I和II的Tim50_新单体的结构重叠。I组单体E类为金和II类单体A类为青色。二级结构A2、B2和B3已标记。Tim50的N端和C端被标记。图中的Tim50分子与()。假定的预序列绑定槽已标记。

通过比较一个单体结构中的六种单体结构,可以进一步说明Tim50假定的预序结合槽的结构塑性非对称单元Tim50_new的。一个单体中的六个单体非对称单元Tim50_new的称为分子A类——F类当仔细检查六个分子的结构时,我们发现这六个分子可以分为两组。分子B类,C类E类在整个结构中都有非常相似的结构,属于I组。另一方面,分子A类,D类F类在突出部分采用不同的构造β-发夹和螺旋A2来自第一组,属于第二组。当第一组构件的结构与第二组构件重叠时,很明显,两组构件之间的结构主体非常相似。然而,突出的β-发夹和螺旋A2显示了两组成员之间的显著差异(图2[链接]b条)。凸起主链原子的平方根偏差(r.m.s.d)β-发夹和螺旋A2为~2当I族和II族单体叠加时,表明推定的序列前结合槽内发生了显著的构象变化。突出的部分β-Tim50_new和Tim50_old中第一组和第二组成员的发夹和螺旋A2显示出三种不同的构象。因此,我们通过比较Tim50_new和Tim50_old结构以及比较非对称单元Tim50_new的研究表明,Tim50的IMS域在假定的预序列结合槽周围表现出显著的结构塑性。突出的部分β-Tim50 IMS域内的发夹和螺旋A2可以采用多种构象,而Tim50主体(164–361)保持一种稳定构象。

有趣的是β-发夹和螺旋A2在相同的结晶条件下,即使在结构上也表现出不同的构象。为了进一步了解Tim50_new的I族和II族成员采用不同构象的机制,我们检查了由晶体堆积产生的I族成员和II类成员的相邻分子。我们推断Tim50(164–361)的邻近环境可能在Tim50的构象中起着重要作用。令人惊讶的是,对于基团I和基团II的成员,假定的预序列结合槽被相邻单体的二级结构占据。对于I组成员,来自相邻单体的螺旋A1对接到假定的序列前结合槽中,而对于II组成员,来自相邻单体的N-末端富含脯氨酸的环插入假定的序列前结合槽中(图3[链接])。与此形成鲜明对比的是,当我们检查Tim50_old结构中的晶体封装时,假定的预序列绑定槽实际上是空的(数据未显示)。因此,Tim50_old很可能代表Tim50 IMS域的无序列前构象,而Tim50_new对应于Tim50的IMS域序列前结合构象。第一组和第二组成员之间的结构差异非对称单元Tim50的新结构表明,Tim50 IMS域的假定预序列绑定槽可能采用不同的构象来适应各种预序列。

[图3]
图3
Tim50_new分子的预设序列结合槽被晶体堆积产生的相邻分子的二级结构占据。()相邻分子(单体)的螺旋A1A类)对接在假定的单体预序结合槽中E类Tim50_新结构的主要原因是疏水相互作用。单体E类Tim50_new属于I组,以金色显示。相邻分子的螺旋A1以浅蓝色显示,并标记为A1′。单体的二级结构A2、B2和B3E类已标记。标记A1′的残基Tyr223、Tyr277和Gln230,B2和B3的残基Trp207和Trp213,A2的残基Asn240和Tyr244,这些残基参与相互作用。虚线表示A1的Gln230和A2的Asn240之间的氢键。(b条)相邻分子的N末端富含脯氨酸的环被插入到假定的单体预序列结合槽中A类Tim50_新结构的疏水相互作用。单体A类Tim50_new结构属于II组,以青色显示。相邻分子的N末端富含脯氨酸的环以绿色显示。标记参与相互作用的N-末端富含脯氨酸环的残基Pro187和Tyr188、B2和B3的残基Trp207和Trp213以及A2的残基Tyr244。

对于Tim50_new的I族成员,通过晶体堆积产生的相邻分子的螺旋A1占据了假定的预序列结合槽(图3[链接])。相邻分子的螺旋A1位于凸出物之间β-发夹和螺旋A2,并沿着Tim50(164–361)的假定预序列绑定槽的长尺寸延伸。相邻分子的螺旋A1主要对接在假定的预序列结合槽中通过疏水相互作用。来自邻近分子螺旋A1的Tyr223从突起处与Trp207和Trp213进行广泛的疏水相互作用β-发夹。Trp207和Trp213位于β-发夹并沿相反方向摆动以容纳来自相邻分子的Tyr223。此外,来自邻近分子螺旋A1的Tyr227使疏水相互作用来自螺旋A2的Tyr244。来自相邻分子螺旋A1的Gln230与来自螺旋A2的Asn240形成氢键。I组单体的假定预序列结合槽与相邻单体的螺旋A1之间的相互作用代表了这两个单体之间的唯一接触。

据报道,N末端线粒体靶向前序列形成一个两性恋的螺旋与TOM复合体中的Tom20受体相互作用以启动蛋白质移位(Abe等。, 2000【Abe,Y.,Shodai,T.,Muto,T.、Mihara,K.、Torii,H.、Nishikawa,S.、Endo,T.和Kohda,D.(2000)。细胞,100551-560。】)。前序列和Tom20受体之间的结合是通过疏水相互作用介导的。我们认为,来自邻近分子的螺旋A1可能会模拟前序列,与膜间空间内TIM23复合体中的Tim50受体相互作用。与预序列和Tom20之间的结合性质类似,Tim50也与预序列螺旋的疏水侧相互作用。

对于Tim50_new的II族成员,前序列结合囊被相邻单体的N末端富含脯氨酸的环所占据(图3[链接]b条)。富含脯氨酸的环形成一个急转弯,主要通过疏水相互作用与假定的预序列结合沟相互作用。富含脯氨酸环的Pro187和Tyr188从突起处与Trp207和Trp213进行疏水性相互作用β-螺旋A2的发夹和Tyr244(图3[链接]b条).

我们的数据表明β-发夹和附近的螺旋A2在识别线粒体前蛋白的前序列并与之相互作用中起着重要作用。大的疏水残基Trp207和Trp213都位于突出物的内侧(朝向假定的预序列结合槽)β-发夹,使这一侧β-发夹相当疏水。据报道β-发夹代表Tim50分子表面最大的保守区(Qian等。, 2011[钱,X,盖伯特,M,Höpker,J,严,M,李,J,魏德曼,N,范德拉恩,M,普凡纳,N&沙,B(2011),《分子生物学杂志》411,513-519。])。Tim50的序列比对表明,Trp207和Trp213在不同物种(Qian等。, 2011[钱,X,盖伯特,M,Höpker,J,严,M,李,J,魏德曼,N,范德拉恩,M,普凡纳,N&沙,B(2011),《分子生物学杂志》411,513-519。])。很可能突出物的内侧β-Tim50 IMS结构域的发夹负责通过疏水相互作用识别前序螺旋。凸出物的结构塑性β-发夹和附近的螺旋A2可能有助于Tim50调节不同大小的预序列。

结构和诱变分析表明,Tim50的保守残基Arg214和Lys217可能与Tim23的IMS结构域(Qian等。, 2011[钱,X,盖伯特,M,Höpker,J,严,M,李,J,魏德曼,N,范德拉恩,M,普凡纳,N&沙,B(2011),《分子生物学杂志》411,513-519。])。有趣的是,残留物Arg214和Lys217位于突出物的外侧(背对假定的预序结合槽)β-发夹。因此β-发夹可能在Tim50的功能中发挥关键作用。这个的内侧β-发夹负责识别前序螺旋的疏水表面,而β-发夹参与招募Tim23进行后续蛋白质转运。此外,突出的β-Tim50的发夹具有显著的结构灵活性,有助于其绑定到Tim23的预序列和IMS域。有趣的是,核磁共振波谱分析表明Tim23的IMS结构域本质上也是柔性的(de la Cruz等。, 2010【Cruz,L.de la,Bajah,R.,Becker,S.&Zweckstetter,M.(2010),《蛋白质科学》第19期,第2045-2054页。】)。Tim23的IMS域在Tim50的前序列结合位点附近与Tim50相互作用,导致假设Tim50和Tim23形成复合前序列结合囊。这也使得预蛋白从Tim50转移到Tim23更加方便。

以前曾报道过使用晶体包装作为正确预测蛋白质-肽相互作用位点的工具(Sha等。, 2000[Sha,B.,Lee,S.&Cyr,D.M.(2000),结构,8799-807。])。在本研究中,由于晶体堆积,Tim50的假定预序列结合槽被螺旋A1和相邻单体的N末端富含脯氨酸环占据。这种结合主要是通过疏水相互作用介导的,并可能在突起处产生构象变化β-发夹和附近的螺旋A2。我们认为来自相邻单体的螺旋A1可能会模拟预序列螺旋,对接到假定的Tim50预序列结合槽中通过疏水相互作用。数据表明,前蛋白受体Tim50在假定的序列前结合沟内,特别是在突起处,具有显著的结构可塑性β-发夹和附近的螺旋A2,以接收预序列。作为比较,在TOM复合物的前蛋白受体Tom70中也观察到结构可塑性(Li等。, 2009[李J.,钱X.,胡J.&沙B.(2009).生物化学杂志.284,23852-23859.], 2010【李J.、崔W.和沙B.(2010),《结晶学报》第66期,第985-989页。】).

支持信息


致谢

我们感谢APS SER-CAT光束线的科学家在数据收集方面的帮助。这项工作得到了美国国立卫生研究院的资助(R01 GM080261)。

工具书类

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