研究论文\(\def\h填{\hskip5em}\def\hfil{\hski p3em}\def\eqno#1{\hfil{#1}}\)

期刊徽标结构
生物学
国际标准编号:2059-7983

电子冷冻显微镜中数据集的合并方法

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英国剑桥CB2 0QH剑桥生物医学校区Francis Crick Avenue分子生物学MRC实验室
*通信电子邮件:acasanal@mrc-lmb.cam.ac.uk

(2019年3月24日收到; 2019年7月23日接受; 2019年8月23日在线)

最近的发展使得电子冷冻显微镜(cryo-EM)成为一种有用的工具结构测定生物大分子。对于含有固有柔韧性、异质性或优选取向,通常需要使用多种条件和显微镜收集大量低温电子显微镜数据。在这种情况下,合并低温电子显微镜数据集是有利的,因为它可以获得改进的三维重建。由于数据集并非总是以相同的像素大小收集,因此合并数据可能是一项挑战。在这里,描述了两种组合低温EM数据的方法。两者都涉及从独立数据集计算缩放因子。还估计了比例因子误差对数据合并结果的影响。这里描述的方法为希望结合来自同一类型显微镜和检测器的数据集的低温电子显微镜用户提供了指导。

1.简介

在过去的十年里,电子冷冻显微镜(cryo-EM)已经成为一种强有力的工具,能够以足够的分辨率解析生物标本的三维结构,从而提出从头开始原子模型(Kühlbrandt,2014【Kühlbrandt,W.(2014),《科学》,3431443-1444。】; Smith&Rubinstein,2014年[Smith,M.T.J.和Rubinstein,J.L.(2014),《科学》,第345、617-619页。]; 等。, 2017【Cheng,Y.、Glaeser,R.M.和Nogales,E.(2017)。细胞,1711229-1231。】). 这主要是通过发展直接电子探测器(巴塔利亚等。, 2009【Battaglia,M.、Contarato,D.、Denes,P.、Doering,D.、Giubilato,P.,Kim,T.S.、Mattiazzo,S.、Radmilovic,V.和Zalusky,S.(2009)。《Nucl.Instrum.Methods Phys.Res.A》,598,642-649。】; Faruqi&McMullan,2011年【Faruqi,A.R.和McMullan,G.(2011),《生物物理学评论》第44期,第357-390页。】; 等。,2013年[李,X.,郑,S.Q.,Egami,K.,Agard,D.A.&Cheng,Y.(2013).结构生物学杂志.184,251-260.]; 麦克马伦等。, 2014[McMullan,G.,Faruqi,A.R.,Clare,D.和Henderson,R.(2014)。超显微镜,147156-163。])以及图像处理算法的改进(Scheres&Carazo,2009[Scheres,S.H.W.和Carazo,J.-M.(2009)。晶体学报,D65,672-678。]; Scheres,2012年【Scheres,S.H.W.(2012),《结构生物学杂志》,第180、519-530页。】). 这些进展的结果是,在电子显微镜数据库(EMDB;https://www.ebi.ac.uk/pdbe/emdb/statistics_mol_wt.html/,https://www.ebi.ac.uk/pdbe/emdb/statistics_min_res.html/).

可以对少量生物样品进行低温EM(微升至飞升范围;Russo&Passmore,2016【Russo,C.J.&Passmore,L.A.(2016),《当前操作结构生物学》37,81-89。】; 阿什蒂亚尼等。, 2018【Ashtiani,D.,Venugopal,H.,Belousoff,M.,Spicer,B.,Mak,J.,Neild,A.&de Marco,A.(2018),《生物结构杂志》203,94-101。】; Noble,魏等。, 2018[Noble,A.J.、Wei,H.、Dandey,V.P.、Zhang,Z.、Tan,Y.Z.、Potter,C.S.和Carragher,B.(2018)。《自然方法》,第15期,第793-795页。])在相对较短的时间内(从几小时到几天;基马尼乌斯等。, 2016【Kimanius,D.、Forsberg,B.O.、Scheres,S.H.W.和Lindahl,E.(2016)。Elife,5,19。】; Cianfrocco公司等。, 2018【Cianfrocco,M.A.,Lahiri,I.,DiMaio,F.&Leschziner,A.E.(2018),《结构生物学杂志》203,230-235。】). 用于低温电子显微镜的合适样品是均匀的,并均匀地分布在整个支撑孔的随机方向上。然而,许多生物标本是具有内在灵活性、构象异质性或采用首选定向在玻璃化的冰层中(诺盖尔斯等。, 2016[Nogales,E.,Louder,R.K.和He,Y.(2016)。当前操作。结构生物学。40120-127。]; 普拉什卡等。, 2017[Praschka,C.,Lin,P.-C&Nagai,K.(2017)。《自然》(伦敦),546,617-621。]). 通过优化样品的生化制备,改变支撑格栅的类型和化学性质,可以减少此类问题(Meyerson等。, 2014【Meyerson,J.R.、Rao,P.、Kumar,J.、Chittori,S.、Banerjee,S.,Pierson,J.,Mayer,M.L.和Subramaniam,S.(2014)。科学报告4,7084。】; Russo&Passmore,2014年【Russo,C.J.&Passmore,L.A.(2014),《科学》,3461377-1380。】; 波兰德等。, 2017【Boland,A.,Martin,T.G.,Zhang,Z.,Yang,J.,Bai,X.-C.,Chang,L.,Scheres,S.H.W.&Barford,D.(2017)。《自然结构分子生物学》24,414-418。】; 线路接口单元等。, 2019[刘,N.,张,J.,陈,Y.,刘,C.,张,X.,Xu,K.,Wen,J.、Luo,Z.,Chen,S.,Gao,P.,Jia,K.、Liu,Z.、Peng,H.&Wang,H.W.(2019).美国化学学会期刊141,4016-4025。])使用不同的清洁剂(Takizawa等。, 2017【Takizawa,Y.,Binshtein,E.,Erwin,A.L.,Pyburn,T.M.,Mittendorf,K.F.&Ohi,M.D.(2017),《蛋白质科学》26,69-81。】; 德鲁莱特等。, 2018【Drulyte,I.,Johnson,R.M.,Hesketh,E.L.,Hurdis,D.L.,Scarff,C.A.,Porav,S.A.,Ranson,N.A.,Muench,S.P.&Thompson,R.F.(2018),《结晶学报》第74期,第560-571页。】; 等。, 2019[Chen,J.,Noble,A.J.,Kang,J.Y.和Darst,S.A.(2019).J.Struct.Biol.X.,100005.]). 所有这些都可能导致在各种条件下收集数据的必要性。对于低浓度样品,或者当固有的异质性或首选粒子取向难以消除时,收集大量低温电子显微镜数据是一个有效的选择。例如,具有罕见视图的粒子数量可能会在大型数据集中得到丰富,因为分布和方向在很大程度上取决于冰的厚度(Casañal等。, 2017【Casañal,A.,Kumar,A.,Hill,C.H.,Easter,A.D.,Emsley,P.,Degliesposti,G.,Gordiyenko,Y.,Santhanam,B.,Wolf,J.,Wiederhold,K.,Dornan,G.L.,Skehel,M.,Robinson,C.V.&Passmore,L.A.(2017),《科学》,358,1056-1059。】; 诺布尔,丹迪等。, 2018[Noble,A.J.、Dandey,V.P.、Wei,H.、Braschi,J.、Chase,J.,Acharya,P.、Tan,Y.Z.、Z.、Kim,L.Y.、Scapin,G.、Rapp,M.、Eng,E.T.、Rice,W.J.、Cheng,A.、Negro,C.J.、Shapiro,L.、Kwong,P.D.、Jeruzalmi,D.、des Georges,A.、Potter,C.S.和Carragher,B.(2018)。Elife,7,e34257]). 此外,大数据集可以进行广泛的分类,以计算分离不同状态下的粒子亚群(费尔南德斯等。,2013年【Fernández,I.S.,Bai,X.-C.,Hussain,T.,Kelley,A.C.,Lorsch,J.R.,Ramakrishnan,V.&Scheres,S.H.W.(2013),《科学》,342,1240585。】; 乌尔纳维希乌斯等。, 2015【Urnavicius,L.,Zhang,K.,Diamant,A.G.,Motz,C.,Schlager,M.A.,Yu,M.,Patel,N.A.,Robinson,C.V.&Carter,A.P.(2015),《科学》,347,1441-1446。】; 马佐夫等。, 2017【Matzov,D.,Aibara,S.,Basu,A.,Zimmerman,E.,Bashan,A.,Yap,M.-N.F.,Amunts,A.&Yonath,A.E.(2017),《自然通讯》第8期,第723页。】; 威尔金森等。, 2018【Wilkinson,M.E.,Lin,P.-C.,Plaschka,C.&Nagai,K.(2018),《生物物理年鉴》47,175-199。】; 查伦顿等。, 2019【Charenton,C.、Wilkinson,M.E.和Nagai,K.(2019),《科学》,364,362-367。】; 等。, 2019【Guo,H.,Suzuki,T.&Rubinstein,J.L.(2019)。Elife,8,e43128。】).

在收集和处理如此大的低温电子显微镜数据集时,存在许多实际限制。研究所或低温电子显微镜设施内缺乏充足的显微镜时间,这意味着用户通常会在其所在研究所内或世界各地的专用低温电子显微镜设备中使用不同的显微镜收集多个数据集(Casañal等。, 2017【Casañal,A.、Kumar,A.、Hill,C.H.、Easter,A.D.、Emsley,P.、Degliesposti,G.、Gordiyenko,Y.、Santhanam,B.、Wolf,J.、Wiederhold,K.、Dornan,G.L.、Skehel,M.、Robinson,C.V.和Passmore,L.A.(2017)。科学,3581056-1059。】; 曼尼等。, 2018【Menny,A.、Serna,M.、Boyd,C.M.、Gardner,S.、Joseph,A.P.、Morgan,B.P.、Topf,M.,Brooks,N.J.和Bubeck,D.(2018),《自然通讯》第9期,第5316页。】; 菲卡等。, 2019[Fica,S.M.、Oubridge,C.、Wilkinson,M.E.、Newman,A.J.和Nagai,K.(2019年)。《科学》,第363、710-714页。]). 此外,当显微镜正在维修或升级时(例如,加入新的探测器或能量过滤器),或者当需要改变数据收集的放大倍数时(例如,提高分辨率或每张图像的粒子数),用户可能会以不同的像素大小进行收集。缺乏一种简化的程序来组合像素大小不同的低温电子显微镜数据,这对结构测定在单粒子项目中。在这里,我们描述了两种简单的方法来组合低温电子显微镜数据集(图1[链接]和2[链接]). 我们提出了两个案例研究。在第一个实验中,数据集是使用两个不同的Titan Krios显微镜收集的,它们具有相似的放大倍数。在第二个实验中,在同一台Titan Krios显微镜上以不同的放大倍数进行数据采集。

[图1]
图1
冷冻电子显微镜数据缩放的两种方法的示意图概述。在方法1中,在提取颗粒之前缩放显微照片(粉红色箭头)(蓝色箭头)。在方法2中,提取粒子,然后缩放,如果需要,可以使用可选的裁剪步骤。
[图2]
图2
数据融合过程的流程图。这两种方法的第一步是获得独立的三维重建,以计算数据集之间的比例因子。方法1在显微照片级别重新缩放数据,方法2使用提取的粒子。必须重新进行CTF估计(方法1)或将缩放因子应用于散焦值以重新计算CTF(方法2)。合并两个数据集中的粒子后(中的“Join”作业RELION公司),可以使用标准程序进行进一步处理。星号(*)表示在哪里提供脚本来执行流程中的不同步骤:1*,确定相对像素大小.py; 2*,重新缩放文章.py; 3*,scale_ctf.sh(缩放系数); 4*,箱标尺.py.

2.程序

2.1、。一般注意事项

在组合数据集之前,必须考虑两个主要因素。首先,需要准确地确定数据集之间的相对像素大小(每像素)。必须重新缩放一个数据集以匹配另一个(参考),以便粒子可以与同一3D参考对齐。这一过程的成功将取决于相对像素大小的估计精度。其次,应该精确地确定参考数据集的绝对像素大小。对于散焦测定、对比度传递函数(CTF)校正和地图解释,需要准确了解绝对像素大小(Wade,1992)【韦德·R·H(Wade,R.H.)(1992)。超微显微镜,46,145-156。】; 等。, 2015【Cheng,Y.,Grigorieff,N.,Penczek,P.A.&Walz,T.(2015)。细胞,161,438-449。】). 由于同一类型的不同显微镜之间在光学器件和检测器位置上的微小差异,精确的绝对像素大小经常偏离标称像素大小。理想情况下,可以在数据采集之前或期间确定两个数据集的绝对像素大小。这可以使用交叉光栅光栅(低倍率区)、二氧化钛(中等倍率区等。, 2015【Cheng,Y.,Grigorieff,N.,Penczek,P.A.&Walz,T.(2015)。细胞,161,438-449。】). UltraAufoil网格特别有用,因为网格上黄金的反射可以用于在与数据采集相同的成像条件下校准像素大小(Russo&Passmore,2014【Russo,C.J.&Passmore,L.A.(2014),《科学》,3461377-1380。】; 等。, 2015【Cheng,Y.,Grigorieff,N.,Penczek,P.A.&Walz,T.(2015)。细胞,161,438-449。】). 如果在数据处理之前准确地确定了像素大小,则可以重新缩放不同的显微照片集,使其具有相同的像素大小,并将数据集视为一个整体。

然而,在许多情况下,用户依赖设施提供的标称像素大小,可能无法在显微镜会话结束后确定确切的像素大小,或者绝对像素大小可能测量不准确。为此,我们提出了一种经验方法来确定一个数据集相对于参考数据集标称像素大小的像素大小。即使精确的像素大小已知,也可以使用此方法确认数据集之间的相对像素大小。

2.2. 通过互相关确定数据集之间的比例因子

原则上,通过互相关确定数据集之间的比例因子很简单。所需要的只是每个数据集的独立3D重建。通过将不同相对像素大小的贴图相互关联,可以确定其缩放因子。为了说明这一概念(并随后演示方法1;第2.3.1节[链接]),裂解和多聚腺苷酸化因子(CPF)聚合酶模块的两个不同数据集酿酒酵母使用,以1.40的标称像素大小收集每像素的奥数(数据集I,MRC-LMB的Krios 2)和1.36每像素奥数[数据集II,金刚石光源(DLS)电子生物成像中心(eBIC)](卡萨纳尔等。, 2017【Casañal,A.,Kumar,A.,Hill,C.H.,Easter,A.D.,Emsley,P.,Degliesposti,G.,Gordiyenko,Y.,Santhanam,B.,Wolf,J.,Wiederhold,K.,Dornan,G.L.,Skehel,M.,Robinson,C.V.&Passmore,L.A.(2017),《科学》,358,1056-1059。】). 为了计算相对像素大小并缩放数据,具有较大像素大小的数据集的像素大小(1.40每像素奥;参考文献;本例中的数据集I)应保持不变,同时更改第二个数据集(1.36)的相对像素大小每像素奥;数据集II)。

2.2.1. 从每个数据集获取3D重建

RELION公司,单个数据集的处理包括运动校正、CTF估计、粒子拾取、提取、几个分类步骤和精炼(Scheres,2012年【Scheres,S.H.W.(2012),《结构生物学杂志》,第180、519-530页。】; Fernandez-Leiro和Scheres,2017年【Fernandez-Leiro,R.&Scheres,S.H.W.(2017),《结晶学报》第73期,第496-502页。】). 可以进行更广泛的处理,包括贝叶斯抛光和CTF精炼(齐瓦诺夫等。, 2018[Zivanov,J.、Nakane,T.、Forsberg,B.O.、Kimanius,D.、Hagen,W.J.、Lindahl,E.&Scheres,S.H.W.(2018)。Elife,7,163。], 2019[Zivanov,J.,Nakane,T.&Scheres,S.H.W.(2019年),IUCrJ,6,5-17.]). 然而,在重新缩放数据集之前,通常不需要这些附加步骤(图2[链接]). 然而,需要获得单个数据集的高分辨率三维重建,因为地图的分辨率与缩放因子的精度直接相关。在大多数情况下,4-5分辨率足够了。如果存在较大的灵活区域,则可以通过掩蔽来改进地图的比较。

2.2.2. 计算并优化3D地图之间的比例因子

建议使用实空间相关性来比较独立计算的地图的体积。例如,可以使用以下方法确定实际空间中的互相关奇梅拉(佩特森等。2004年【Pettersen,E.F.,Goddard,T.D.,Huang,C.C.,Couch,G.S.,Greenblatt,D.M.,Meng,E.C.&Ferrin,T.E.(2004),《计算化学杂志》第25期,第1605-1612页。】),其中可以使用“Fit in Map”命令实现地图的叠加和拟合[图3[链接]()]. 此工具提供相关系数在指示拟合质量的贴图之间。Volume Viewer工具可用于使用实际空间插值调整目标地图的像素大小[数据集II,地图2,图3[链接]()]通过在“功能”、“坐标”中输入调整后的体素大小。

[图3]
图3
数据集之间的缩放因子。()由于标称像素大小的差异,从数据集I(黄色)和数据集II(青色)获得的独立3D地图的体积大小不同。此类映射在中的叠加奇梅拉显示了当缩放map 2(青色)的像素大小以适应map 1(黄色)的像素尺寸时,重建之间的相关性提高。(b条)映射1和映射2之间的傅立叶壳层相关性(FSC),在缩放之前和之后。相关性增加到1.28每像素奥。

此外,我们还提供了一个Python脚本(https://www.python.org)调用确定相对像素大小.py(补充脚本1)使用释放图像处理程序(Scheres,2012年【Scheres,S.H.W.(2012),《结构生物学杂志》,第180、519-530页。】)和傅里叶壳相关性(FSC;Harauz和van Heel,1986[Harauz,G.和van Heel,M.(1986)。Optik,73,146-156。])以确定目标地图的最佳像素大小。输出是FSC保持不变的像素大小范围。此脚本使用文件地图1.mrc地图2.mrc以及它们相应的像素大小作为输入,将map 2重新缩放为一组像素大小,并通过FSC测量两个感兴趣的3D体之间的互相关。可以通过在命令行中键入以下文本来运行脚本:

python determine_rerelative_pixel_size.py--ref_map map1.mrc--angpix_ref_map1.40--map map2.mrc--angpix_map_nominal 1.36

结果如下:

最佳:1.282范围:1.274-1.29

可以获得的精度取决于几个因素。如果使用脚本释放图像处理程序,一个限制是重新缩放,因为释放图像处理程序在中使用填充/裁剪倒易空间。这取决于盒子的大小,这意味着精确度与盒子的大小成反比。对于100像素的方框大小,精度将为像素大小的2%(0.02对于像素大小为1的?每像素)。对于200像素的方框大小,它将是像素大小的1%。在我们的测试中,我们观察到,使用奇梅拉而不是将FSC测量与地图缩放结合使用。因此,脚本确定的像素大小和范围将作为下一次拟合的起点和边界奇梅拉。可以使用计算范围内的任何像素值来适应奇梅拉直到互相关得到优化(“Fit to Map”)[图3[链接]()]. 初始和最终地图的互相关也可以使用FSC绘制RELION公司:

relion_image_handler--i map1.mrc--fsc map2_rescaled.mrc--angpix 1.40>fsc.star

当找到最佳比例因子时,地图之间的相关性增加[图3[链接](b条)]. 在我们的特定示例中,相对像素大小减少了约6%(实际为1.28每像素奥;标称值,1.36每像素的奥数),计算出的比例因子为0.914(实际为1.28每像素奥;参考,1.40?每像素)。

应注意,要在RELION公司成功地,要比较的地图的原点需要相同。原因是,重缩放后,重缩放地图的原点将发生偏移。可以使用奇梅拉`“适应地图”选项与vop重采样命令。首先,重新采样的地图需要如上所述进行叠加,以使其坐标与要与之进行比较的地图的坐标相匹配。其次,通过使用vop重采样命令,可以保存具有新坐标的新地图(网格#1上的vop重采样#0,其中#0是地图2_重新缩放.mrc而#1是地图1.mrc)并用于FSC计算。

2.3. 合并数据集

有不同的方法可以组合具有不同像素大小的低温电子显微镜数据集。可以重新缩放原始显微照片(方法1)或重新缩放提取的粒子(方法2)(图1[链接]和2[链接]). 每种方法在处理上都有各自的优缺点。例如,方法1涉及重缩放显微照片后重新处理数据集,而在方法2中,重缩放是在粒子级别执行的,用户不必重新处理原始电影。另一方面,与方法2相比,方法1在合并后需要较少的文件操作。无论哪种情况,最终结果都应该相似。对于这两种方法,由于在合并数据之前,很少的2D视图可能会与广泛的2D分类一起丢失,因此建议合并未分类的粒子。

2.3.1. 方法1

在本例中,使用与上述相同的CPF数据集,需要大规模数据采集(4227部电影)来克服首选方向(补充图S1)。由于显微镜时间有限,我们选择使用独立显微镜收集数据。初始数据处理RELION公司2.0(Fernandez-Leiro&Scheres,2017年【Fernandez-Leiro,R.&Scheres,S.H.W.(2017),《结晶学报》第73期,第496-502页。】)生成了分辨率约为4.00的3D地图每个显微镜上的。发布的结构(EMDB-3908)是通过结合333获得的550个颗粒和126个分别来自数据集I和数据集II的617个粒子。在合并和进一步处理数据后,我们以3.50的速度获得了最终的3D重建总共77°的分辨率917个颗粒(占总颗粒的17%),贡献40个数据集I中的518个粒子(3.73?)和37数据集II中的399个粒子(3.61(图4)[链接]和补充图S1)。

[图4]
图4
使用方法1合并来自酵母的CPF聚合酶模块的数据集。()连接数据前后显示了CPF聚合酶模块的重建。合并数据集后,最终3D结构(EMDB-3908)的全局和局部分辨率提高。来自数据集I和II的贴图表示每个数据集对最终结构的粒子贡献。使用确定局部分辨率RELION公司用于仅从数据集I和II重建粒子的3D重建(以最终/缩放像素大小,1.40每像素的奥数),并使用1.28的相对像素大小缩放数据集II后合并数据集每像素奥。根据黄金标准给出决议(b条)金标准细化的傅里叶壳相关图。(c(c))数据集I和II以及组合数据集的密度示例。与单个数据集相比,最终的3D结构显示主链和侧链中更精细的细节,如绿色箭头所示。

(i)重新缩放显微照片。原始显微照片可以使用重新缩放释放图像处理程序为此,可以使用先前确定的相对像素大小(1.28以将数据集II的显微照片重新缩放为最终所需的像素大小(1.40?每像素)。在命令行中键入:

relion_image_handler--i old_mics_dataset2.mrc--o重新缩放_mics_dataset2.mrc--angpix 1.28--重新缩放angpix 1.40

可以对平均显微照片进行重新缩放(.mrc文件)和电影(.mrcs文件). 请注意,要执行稍后的抛光步骤(建议),需要重新缩放电影。重缩放平均显微照片和电影的优点是,不需要再次执行计算密集的运动校正步骤。

(ii)重新运行CTF估算。需要使用新的真实像素大小(1.40)重新计算缩放显微照片的CTF参数?每像素)。标称像素尺寸的不准确会影响散焦和对比度传递函数(CTF)估计值(朱等。, 1997[朱,J.,彭泽克,P.A.,施罗德,R.&弗兰克,J.(1997),《结构生物学杂志》118197-219。]). 由于CTF会在图像中引起分辨率相关的振幅调制和相位反转,因此准确估计CTF参数对于确定3D结构至关重要,尤其是在相移变得更为相关的高分辨率下(Mindell&Grigorieff,2003【Mindell,J.A.和Grigorieff,N.(2003),《结构生物学杂志》第142期,第334-347页。】; 等。, 2015【Cheng,Y.,Grigorieff,N.,Penczek,P.A.&Walz,T.(2015)。细胞,161,438-449。】). 在新重新缩放的数据集上运行CTF估计在计算上是廉价的,并且它将保证CTF的准确性。在这一步之后,可以将数据集视为以相同的放大率和像素大小记录在同一显微镜上。可以像以前一样执行粒子拾取、提取、2D分类和进一步的数据处理。无需计算新的盒子大小,可以使用中的“Join STAR files”作业合并数据集RELION公司(图2[链接]; Fernandez-Leiro&Scheres,2017年【Fernandez-Leiro,R.&Scheres,S.H.W.(2017),《结晶学报》第73期,第496-502页。】).

(iii)通过重新缩放先前拾取的粒子的坐标来节省时间。通过重新缩放初始处理中已拾取或提取的粒子的坐标,可以节省处理或手动拾取时间。由于显微照片的缩放,坐标将发生变化。此外,放大倍数和显微照片的路径需要在STAR文件中更新。我们提供了第二个Python脚本,名为重新缩放文章.py(补充脚本2)从颗粒.星形/data.star(数据星)文件并根据像素大小进行更正。它使用的列是_rln显微镜名称,_rln坐标X,_rln坐标,_rln原始X,_rln原始Y,_rln认证_rln检测器像素大小。脚本的输入是用于RELION公司运行,计算出相对像素大小和目标/重缩放像素大小。它还允许更改STAR文件中显微照片的名称(例如重新缩放的MRC文件所在的新路径)。输出文件已准备好导入到RELION公司(“Import”),且易于使用。

python rescale_particles.py--i dataset2.star--o dataset2_rescale.star--pix_nominal 1.36--pix_relative 1.28-pix_target 1.40--mrc_name_path MRCS_dataset2/

使用这种方法,我们成功地组合了200个CPF的kDa聚合酶模块,在3.50时获得改进的3D重建奥分辨率。最终的地图显示了局部分辨率和密度质量的整体改善(图4[链接]; 卡萨纳尔等。, 2017【Casañal,A.,Kumar,A.,Hill,C.H.,Easter,A.D.,Emsley,P.,Degliesposti,G.,Gordiyenko,Y.,Santhanam,B.,Wolf,J.,Wiederhold,K.,Dornan,G.L.,Skehel,M.,Robinson,C.V.&Passmore,L.A.(2017),《科学》,358,1056-1059。】).
2.3.2. 方法2

方法2与方法1的不同之处在于,在从显微照片中提取时,不缩放显微照片,而是缩放颗粒(图1[链接]和2[链接]). 利用外显子连接反应后立即捕获的酵母催化后剪接体的结构证明了这种方法(威尔金森等。, 2017[Wilkinson,M.E.,Fica,S.M.,Galej,W.P.,Norman,C.M.,Newman,A.J.&Nagai,K.(2017)。科学,358,1283-1288。]). 发布的结构(EMDB-3979)是从48个数据集中获得的1.120收集617个颗粒每像素的奥数为3.73奥分辨率。随后,第二个数据集42在0.900时收集了566个颗粒每像素奥,精确到3.89分辨率(补充图S1和S2)。这两个数据集都是在MRC-LMB的Krios 1上收集的。原始数据集(较大的像素大小)被称为“数据集I”,在本例中使用了未抛光的粒子,精确到4.02分辨率(图5[链接]). 数据集II的相对像素大小使用奇梅拉,如上所述,它与数据集I的互相关峰值为0.880每像素奥(图6[链接]).

[图5]
图5
使用方法2合并酵母后催化(P复合物)剪接体的数据集。()合并数据集后,最终3D结构的全局和局部分辨率提高。使用确定局部分辨率RELION公司用于仅从数据集I和II(最终/缩放像素大小)以及使用0.880的相对像素大小缩放数据集II后组合数据集进行粒子的三维重建每像素奥。根据黄金标准给出决议(b条)数据集I和II以及组合数据集的密度示例。
[图6]
图6
缩放效果。()根据数据集I和数据集II计算的3D重建之间的相关性(1.120?每像素),使用数据集II的各种像素大小。使用以下公式计算相关性奇梅拉如文中所述。(b条)金标准FSC用于仅数据集I(浅灰色)、仅数据集II(黑色)和通过组合文本中描述的数据(红色)进行剪接体重建。其他曲线来自使用所示像素大小到1.120的错误缩放数据集IIÅ,然后与数据集I合并,进行细化和后处理。这些曲线的颜色与(). 根据黄金标准给出决议。

(i)重新计算CTF离焦值在本例中,数据集II最初使用0.900像素大小进行处理(包括CTF估计)每像素的奥数,这是数据采集放大时报告的标称像素大小。确定相对像素大小(0.880考虑到新的像素大小,需要重新估计CTF参数。或者,由于拟合的离焦值取决于像素大小的平方,因此可以将这些值乘以(0.880/0.900)2:

awk `NF<5{打印$0}/mrc/{$3=$3*(0.880/0.900)**2;$4=$4*(0.8800/0.900

在这个例子中,$3$4请参阅STAR文件的第3列和第4列,它们通常对应于_rl焦点U_rln聚焦V,$10$11参见第10列和第11列,对应于_rln认证_rln检测器像素大小和0.880/0.900需要替换为相对(新)像素大小和标称(旧)像素大小之间的正确比率。通过查看RELION公司STAR文件。使用提供的bash脚本也可以实现类似的功能scale_ctf.sh(缩放系数)(补充脚本3),它额外应用了一个小常数修正,以在一定程度上解释CTF方程中的高阶项。它按如下方式运行(粗体表示用户输入):

scale_ctf.sh显微照片_ctf.star
启动apix:0.900
新api:0.880
将球差读取为2700000A
加速度电压读数为300,将使用0.0197 A的电子波长
散焦比例为0.956049,加上恒定校正-14.602555
写出microphs_ctf_newapix.star

除了离焦值之外,像素大小的误差也会影响球差(Cs)项。虽然离焦与波数的平方成正比,但Cs与波数四次方成正比。因此,离焦项在较低分辨率下占主导地位,但在较高分辨率下,Cs变得重要。Cs可以缩放[例如对于2.7的Csmm,新的Cs为2.7×(0.900/0.880)4]并在STAR文件中进行了修改。使用CtfRefine公司可以保持Cs不变,只细化散焦值。然后,配合变得准确。

(ii)重新提取和缩放颗粒.英寸RELION公司缩放粒子的一种方便方法是在“粒子提取”作业类型期间。在此作业中,可以选择以特定的方框大小提取并将此方框缩放为另一个方框大小。(如果磁盘上不再有显微照片或希望缩放抛光颗粒,也可以使用重新处理). 一个限制是,框大小必须是偶数。在给定的示例中,数据集II从0.880重新缩放Å/像素至1.120每像素的奥数,最终方框大小为420像素(数据集I的方框大小)。要直接缩放到420像素的方框,必须提取方框大小为420×1.120/0.880=534.5像素的图像,这是不可能的。一种可能性是用一个534像素的方框进行提取,并将其缩放到420像素,使缩放后的像素大小为534/420×0.880=1.119,这可能足够准确(见下文)。或者,我们提供一个Python脚本箱标尺.py(补充脚本4),它可以找到一对非常接近所需比率的偶数框大小。其运行方式如下(粗体表示用户输入):

箱标尺.py
要搜索的最小框大小是多少?420
要搜索的最大框大小是多少?600
您的起始像素大小是多少?0.880
你想要多少答案?1
从560像素框开始,缩放到440像素框
这将给出0.78571的缩放因子,而理想的像素大小比为0.78571,误差为0.000%。

此脚本显示,以方框大小560提取并缩放到方框大小440将使所需的缩放系数达到0%的错误。可以在中执行此操作RELION公司通过使用运行数据.star文件生成自精炼提供粒子坐标(“精细粒子STAR文件”字段),并使用显微照片ctf_newapix.star方法2步骤1中生成的文件,以提供具有正确CTF参数的显微照片(“显微照片STAR文件”字段)`“粒子盒大小”需要指定为560像素,“重缩放粒子”为“是”,“重调整大小”为440像素。关键:来自RELION公司v.3以上(Zivanov等。, 2018[Zivanov,J.、Nakane,T.、Forsberg,B.O.、Kimanius,D.、Hagen,W.J.、Lindahl,E.&Scheres,S.H.W.(2018)。Elife,7,163。]),如果是运行数据.star文件用于提取,默认情况下CTF参数取自此文件。添加--使用ctf_in_mic标记为“Additional arguments”以确保CTF参数取自显微照片ctf_newapix.star。手动指定用于粒子归一化的背景圆的直径,就像我们提取的长方体大小为420一样。例如,默认直径是缩放前长方体大小的75%。这里,背景圆的新直径应为400像素=0.75×420×1.120/0.880。

(iii)将粒子裁剪为正确的长方体大小。粒子现在处于正确的比例,但框大小为440(数据集II),需要与框大小为420的粒子合并(数据集I)。您可以使用重新处理如下所示:

relion_preprocess--操作提取/job043/particles_star--窗口420--操作输出数据集2_particles_scaled_window420

这将写出一堆粒子数据集2_particles_scaled_window420.mrcs和相应的STAR文件数据集2_particles_scaled_window420.star。现在可以使用中的“Join STAR files”作业将此STAR文件与数据集I STAR文件合并RELION公司.

在这个例子中,结合数据集得到了3.70的重建结果?分辨率,与单独重建的任一数据集相比,局部分辨率和密度质量显著提高(图5[链接]). 使用CTF进行进一步处理后精炼和贝叶斯抛光RELION公司3.0(齐瓦诺夫等。, 2018[Zivanov,J.、Nakane,T.、Forsberg,B.O.、Kimanius,D.、Hagen,W.J.、Lindahl,E.&Scheres,S.H.W.(2018)。Elife,7,163。]),我们能够将分辨率提高到3.30?,与公布的重建相比有了显著改进(补充图S2)。

注:要将此方法与贝叶斯抛光集成,请对数据集II进行抛光,在“附加参数”下提供以下附加标志:--窗口560——刻度440

因此,将以正确的尺寸生产抛光颗粒,但盒子尺寸为440。这些可以按如下方式裁剪:

relion_preprocess--operate_on Polish/job043/shiny.star--window 420--operate_out数据集2_particles_shiny_scaled

输出将是粒子堆栈数据集2_particles_shiny_scaled.mrcs和STAR文件数据集2_particles_shiny_scaled.star,可以与数据集I联接。

3.像素大小对分辨率的影响

由于几个原因,可能无法精确计算正确的比例因子。例如,单个地图的分辨率可能不够高,无法在对齐地图时出现离散的相关峰值奇梅拉,或者提供正确比例因子的方框大小的方便比率可能不可用。我们测试了需要确定比例因子的准确性(图6[链接]). 我们使用不同的起始像素大小缩放拼接体示例中的数据集II:正确的0.880每像素奥,几乎正确的0.884每像素奥,不正确的0.940每像素Ω,两个相近的尺寸分别为0.860和0.900每像素的奥数[图6[链接]()]. 对于每种情况,我们使用Gctf公司(张,2016【张凯(2016).《结构生物学杂志》193,1-12.】)并使用560像素的方框进行提取,可缩放到不同的方框大小(例如440像素,0.880每像素奥,0.940为470像素?每像素)并裁剪为420像素。之后精细化,我们使用相同的掩模来确定分辨率[图6[链接](b条)]. 我们发现使用0.884每像素的奥数重建结果几乎与正确的0.880相同每像素奥。0.860或0.900每像素的奥数仅使分辨率略有降低,而0.940每像素的奥数重建的分辨率比任何一个单独的起始数据集都低[图6[链接](b条)]. 该分析表明,从合并数据集重建后获得的分辨率对比例因子误差相对宽容,至少在3.70?1–2的分辨率范围MDa颗粒:0.5–2%的误差是可接受的,而7%的误差是不可接受的。原则上,当分析更大的复杂结构或更高分辨率的结构时,应要求更高的精度(尽管这两个因素也应有助于更准确地确定标度因子)。

4.结论

在冷冻电镜中,蛋白质样品通常需要广泛的生化优化,包括样品制备和玻璃化。为了获得有助于深入了解特定生物问题的结构信息,研究人员通常会获取大型数据集或从不同的准备中收集数据。因此,合并不同显微镜或不同成像条件下记录的数据集成为一项重要任务。在本报告中,我们描述了两种方法(缩放显微照片或粒子),以成功地组合在不同像素大小收集的低温电子显微镜数据。我们还展示了像素大小确定中的错误如何与分辨率相关,并提供了精确确定像素大小的脚本。在我们的示例中,来自同一类型显微镜(Titan Krios)和探测器(K2配备GIF能量过滤器)的数据集已经合并,从而提高了分辨率。这种方法可以进一步扩展到使用不同类型的显微镜和探测器获取低温电子显微镜数据集的其他情况。当组合使用不同探测器收集的数据时,每个探测器都会有一个特定的MTF文件。不同的MTF文件在最终的3D重建中可能会产生最小的影响,但需要进一步分析以报告其在近奈奎斯特分辨率下的影响。需要注意的是,向现有数据集添加更多数据并不总是提高3D重建质量的手段。例如,当数据质量限制分辨率时,其他粒子将产生边际效应。为了决定进一步的数据收集是否有用,一个好的策略是逐个合并现有的数据集(从最好的开始)。这将确定组合更多质量类似的粒子是否会提高3D重建的质量。为了估计提高分辨率所需的粒子数量(质量相似),可以使用Rosenthal和Henderson图(Rosenthal&Henderson,2003)【Rosenthal,P.B.&Henderson,R.(2003),《分子生物学杂志》333721-745。】; 齐瓦诺夫等。, 2018[Zivanov,J.、Nakane,T.、Forsberg,B.O.、Kimanius,D.、Hagen,W.J.、Lindahl,E.&Scheres,S.H.W.(2018)。Elife,7,163。]). 在我们的示例中,添加大约50%的粒子有助于将3D重建的分辨率从3.61提高到3.50对于CPF的聚合酶模块,增加100%以上的颗粒,分辨率从3.89提高到3.70用于催化后(P复合物)剪接体。重要的是,提高数据质量也将提高3D重建的分辨率(Naydenova&Russo,2017)[Naydenova,K.&Russo,C.J.(2017),《自然通讯》第8期,第629页。]). 例如,使用中的新工具校正光束倾斜RELION公司3.0(齐瓦诺夫等。, 2018[Zivanov,J.、Nakane,T.、Forsberg,B.O.、Kimanius,D.、Hagen,W.J.、Lindahl,E.&Scheres,S.H.W.(2018)。Elife,7,163。])与与数据集II合并相比,数据集I中聚合酶模块的分辨率提高更大。

我们预计,随着更具挑战性的低温环境监测项目在一次数据收集会议不够的情况下得到解决,合并数据集在未来将变得更加相关。这项工作有助于使合并数据集成为一项常规工作。

5.相关文献

本文的支持信息中引用了以下参考文献:Scheres(2014【Scheres,S.H.W.(2014)。Elife,3,e03665。】)、张(2016)【张凯(2016).《结构生物学杂志》193,1-12.】)和Zheng等。(2017年[Zheng,S.Q.,Palovcak,E.,Armache,J.-P.,Verba,K.A.,Cheng,Y.&Agard,D.A.(2017).自然方法,14,331-332.]).

支持信息


脚注

这些作者做出了同等的贡献。

致谢

我们感谢Thomas G.Martin和Takanori Nakane在脚本编写方面的帮助,感谢Shabih Shakel的有益讨论,感谢Lori A.Passmore和Kiyoshi Nagai监督有关切割和多腺苷酸化因子及剪接体的工作,感谢Loli A.Passmere、Sjors H.W.Scheres、Takanori-Nakane、,拉斐尔·费尔南德斯·莱罗(Rafael Fernández-Leiro)和安德烈亚斯·博兰德(Andreas Boland)对手稿的建议和批判性阅读。我们感谢Jake Grimmet和Toby Darling在高性能计算方面的帮助。CPF聚合酶模块和P复合物剪接数据集的原始显微照片胶片和粒子坐标已分别存放在EMPL-EBI的EMPIAR数据库中,登记号为EMPIAR-10299和EMPIAR-100298。3.30的低温电磁图P络合物的光学分辨率重建已沉积在电子显微镜数据库,注册号EMDB-10140。脚本可以在支持信息和github中找到(https://github.com/maxewilkinson/CryoEM-scripts网站).

资金筹措信息

这项工作得到了欧洲分子生物学组织长期研究金ALTF66-2015的支持,该研究金由欧洲委员会(LTFCOFUND2013,GA-2013-609409)通过玛丽·居里行动(AC)、盖茨·剑桥(AK)、剑桥-卢瑟福纪念博士奖学金(MEW)、,欧盟地平线2020研究与创新计划(ERC拨款725685)(发给Lori A.Passmore)、医学研究委员会(MC_U105184330和MC_U105 192715)和欧洲研究委员会高级拨款(AdG-693087-SPLICE3D)(发给Kiyoshi Nagai)。

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生物学
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