跳到主页内容
美国国旗

美国政府的官方网站

Dot政府

gov意味着它是官方的。
联邦政府网站通常以.gov或.mil结尾。之前分享敏感信息,确保你在联邦政府政府网站。

Https系统

该站点是安全的。
这个https(https)://确保您连接到官方网站,并且您提供的任何信息都是加密的并安全传输。

访问密钥 NCBI主页 MyNCBI主页 主要内容 主导航
.2023年6月19日;8(1):236.
doi:10.1038/s41392-023-01438-z。

可溶性CD4可有效防止脓毒症发病时常驻巨噬细胞TLR过度激活

附属公司

可溶性CD4可有效防止败血症发作时驻留巨噬细胞的TLR过度激活

张盛元等。 信号传输目标热. .

摘要

T淋巴细胞减少症发生在脓毒症的早期,是对全身炎症的反应,通常与脓毒症感染的发病率和死亡率有关。我们之前已经证明,需要足够数量的T细胞来抑制Toll样受体(TLR)介导的炎症反应。然而,根本机制仍未解决。在此,我们公布CD4+T细胞与巨噬细胞的MHC II结合,下调TLR促炎信号。我们进一步表明,CD4的CD4分子之间的直接接触+在LPS和盲肠结扎穿孔(CLP)脓毒症中,T细胞或CD4(可溶性CD4,sCD4)的外结构域和常驻巨噬细胞的MHC II对于防止TLR4过度激活是必要的和足够的。脂多糖脓毒症发作后sCD4血清浓度升高,表明其对炎症过度具有代偿性抑制作用。sCD4参与使MHC II的细胞质域能够招募并激活STING和SHP2,从而抑制TLR4炎症所需的IRAK1/Erk和TRAF6/NF-κB激活。此外,sCD4通过破坏促进MHC-II内吞的MHC-II-TLR4筏结构域,破坏TLR4的促炎性质膜锚定。最后,sCD4/MHCII逆转信号特异性干扰TLR4而非TNFR过度炎症,并且独立于CD4的CD40配体的抑制信号+巨噬细胞上的细胞。因此,足够量的可溶性CD4蛋白可以通过改变MHC II-TLR信号复合物来防止巨噬细胞过度炎症激活,这可能有助于形成预防性治疗脓毒症的新范式。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明没有相互竞争的利益。

数字

图1
图1
T细胞中的膜结合CD4控制TLR4炎症。存活率(b条)CD4细胞+指定器官中的T细胞计数,以及(d日)12 h后测定血清TNF和IL-6i.p公司.液化石油气(n个 = 7–8).c(c)CLP后测量存活率(n个 = 7–16).电子外周血CD4绝对数+T细胞((f))对新冠肺炎患者BALF中的指示细胞因子进行了测定(n个 = 15). 生存率和TNF/IL-6水平按照(c(c))除了CD4+T细胞()预先完成(GK1.5)2天,或(小时)注射LPS前,向裸鼠补充7天。k个用GK1.5抗体或同种IgG预处理的hACE2小鼠感染SARS-CoV-2 7天。TNF和IL-6 mRNA的折叠变化归一化为肌动蛋白通过qPCR和(j个k个)第7天左肺叶的代表性切片和病理学评分(各感兴趣区域的放大倍数)。SARS-CoV-2病毒(功率因数校正单元1 × 102盒子里;功率因数校正单元1 × 105圆形)。,在不存在或存在LPS(100 ng/mL)的情况下,用LPS孵育16小时后,测量BMDM上清液中的TNF和IL-6()指定来源的T细胞(巨噬细胞:T细胞=1:1),或()原始CD4+具有所示阻断CD4单克隆抗体的T细胞(RM4-5;GK1.5)。n个与HeLa或TZM-B1细胞共培养的THP-1细胞经LPS处理3 h后上清液中的TNF和IL-6。显示平均值±SD;n个 = 在需要的地方使用3-11只小鼠;统计数据(ns,P(P)>0.05*P(P) < 0.05; **P(P) < 0.01; ***P(P) < 0.001):对数库(Mantel-Cox)测试(,c(c),(左),小时(左)),未付款t吨测试(b条,d日(f),(右),小时(右),,k个),采用Dunnett分析的单因素方差分析(,,n个)
图2
图2
CD4细胞+T促进单核细胞分化,抑制巨噬细胞过度炎症。c(c),电子裸鼠或用CD4重组的裸鼠+治疗T细胞i.p公司LPS持续3小时,然后进行指示分析。的单元格数()赖氨酸6C你好单核细胞(b条)骨髓中的祖细胞(HSC、GMP、CMP、MEP)和(c(c))活化单核细胞(CD64+)对所示器官进行流式细胞术分析。d日与CD4共同培养的骨髓源性单核细胞体外分化后指示细胞类型的比例+T细胞,用于LPS治疗的指定时间。的单元格数(电子)浸润的单核细胞来源的巨噬细胞或()常驻巨噬细胞和((f),小时)它们的激活状态(CD86+).LPS在从脾脏分类的指示细胞类型中诱导TNF mRNA表达。显示平均值±SD;n个 = 指示使用3-5只小鼠;统计学(ns,P(P) > 0.05; *P(P) < 0.05; **P(P) < 0.01; ***P(P)<0.001):未付款t吨测试
图3
图3
sCD4蛋白有效抑制TLR炎症。小鼠血清sCD4的ELISA测定(n个 = 10) 在指定的时间内收到LPS。LPS刺激BMDM后16小时,用50 nM的(b条)sCD4、(c(c))sCD4的不同外结构域,或(d日)sCD4,但LPS被polyI:C(100μg/mL)、CpG-ODN(0.03μM)或VSV(MOI=5)的激动剂取代。电子存活率和((f))WT小鼠注射sCD4(10 mg/kg)后指定时间的血清TNF和IL-6水平(n个 = 10) 或PBS(n个 = 11) LPS激发前12小时。sCD4预处理hACE2小鼠感染SARS-CoV-2 4天后体重的变化().小时qPCR和IL-6 mRNA在肺中的表达()第4天左肺叶的代表性切片和病理学评分(各感兴趣区域的放大倍数)。显示平均值±SD;n个 = 在指定位置使用3-5只小鼠;统计数据(ns,第页 > 0.05; *P(P) < 0.05; **P(P) < 0.01; ***P(P) < 0.001):对数库(Mantel-Cox)测试(电子),未配对t吨测试(d日,(f),),带有Dunnett分析的单因素方差分析(b条,c(c))
图4
图4
sCD4通过巨噬细胞中的MHC II下调TLR4炎症。,b条除MHC II外,TNF/IL-6测量如图1I所示-/-BMDM与()相等数量的CD4+T细胞,或(b条)25 nM sCD4蛋白质。c(c)存活率和(d日)LPS后24小时血清TNF/IL-6i.p公司.注射wt窝鼠或MHC II−/−用单剂量sCD4(10 mg/kg)预处理小鼠。术后上清液中的TNF/IL-6(电子)MHC二期−/−用25 nM sCD40L预处理BMDM,或((f))CD40型−/−LPS刺激前使用25 nM sCD4的BMDM细胞。荷瘤小鼠的存活率和血清TNF/IL-6(小时)巨噬细胞消融(ΔMΦ)或(j个)用MHCII重组的ΔMΦ小鼠+/+或MHCII−/−巨噬细胞,之前接受10 mg/kg sCD4或PBSi.p公司LPS刺激。k个用LPS或LPS加上25 nM sCD4刺激腹腔巨噬细胞瞬时过度表达MHCII亚单位或细胞质尾部突变体(ΔCT)后12 h上清液中的TNF/IL-6。显示平均值±SD;n个 = 在指定的地方使用3–10只小鼠;统计数据(ns,P(P) > 0.05; *P(P)<0.05**P(P) < 0.01; ***P(P) < 0.001):对数库(Mantel-Cox)测试(c(c),,(左),j个(左)),未付款t吨测试(b条,d日,电子(f),小时,(右),j个(右),k个)
图5
图5
SHP2和STING介导的CD4/MHC II与TLR信号的串扰。BMDM细胞与(b条,d日电子)100 ng/mL LPS或(c(c))在有或无25 nM sCD4的情况下,在指定时间内保持5 ng/mL TNF。d日所示蛋白质的蛋白质印迹。电子在pm细胞中SHP2和TRAF6相互免疫共沉淀。(f)除SHP2外,上清液中的TNF/IL-6如图3B所示进行测量−/−使用BMDM。面板中的西方斑点(b条)除了SHP2−/−使用BMDM。上海第二大酒店飞行/飞行巨噬细胞作为对照。小时存活率和()在术后指定时间测定血清TNF/IL-6i.p公司巨噬细胞特异性SHP2中的LPS−/−接受sCD4(10 mg/kg)的小鼠。j个存活率和(k个)LPS注射STING后12h血清TNF/IL-6水平−/−老鼠。STING分离的BMDM经LPS处理4h后上清液中的TNF/IL-6−/−或在不存在或存在sCD4(25nM)的情况下的wt小鼠。显示平均值±标准差;n个 = 在指定位置使用3-6只小鼠;统计数据(ns,P(P) > 0.05; *P(P) < 0.05):未准备t吨测试((f),,k个,),对数秩(Mantel-Cox)检验(小时,j个)
图6
图6
sCD4干扰MHCII/TLR4筏,减少LPS/TLR4炎性膜的限制。Duolink分析用于量化()指示的线对(红色),或(b条)STING和SHP2(绿色)之间,结合BMDM中MHC II(红色)的免疫荧光染色。三部分共定位用黄色表示。用DAPI对细胞核进行反染色。皮尔逊系数表明了同位化的程度。棒材=5μm。c(c)腹腔巨噬细胞经LPS或LPS加sCD4治疗30分钟后,在存在指定的内吞抑制剂的情况下,上清液中的TNF和IL-6。两个独立重复的平均值。在添加了指示抑制剂的每个条件下,使用了三个重复井。d日MHC II-SHP2相互作用的双环点和(电子)细胞表面MHC II的流式细胞术分析。棒材=5μm。巨噬细胞(5 x 106)用LPS/sCD4治疗1h((f))分离内胚体,对所示蛋白(星号)进行免疫印迹分析,或()对EEA1(早期内体)、LAMP1(溶酶体)、RAB4(循环内体)和RCAS1(高尔基体)进行免疫荧光染色后,量化每个细胞的细胞器数量。小时用GFP标记的MHC II Aβ或MHC II BΔCT转染RAW264.7细胞后,用LysoTracker定量溶酶体大小。随机选择几个视野,每10秒采集一次图像,持续20分钟LPS或LPS加sCD4治疗。显示平均值±SD;n个 = 在指定位置使用3-4只小鼠;统计数据(ns,P(P) > 0.05; *P(P) < 0.05**P(P)<0.01; ***P(P) < 0.001;): 未付款t吨测试

类似文章

引用人

参考文献

    1. Kawai T、Akira S.Toll样受体及其与其他先天性受体在感染和免疫中的相互作用。豁免权。2011;34:637–650. doi:10.1016/j.immuni.2011.05.006。-内政部-公共医学
    1. Janeway CA,Jr.,Medzhitov R.Innate免疫识别。每年。免疫学评论。2002;20:197–216. doi:10.1146/annurev.immuniol.20.083001.084359。-内政部-公共医学
    1. 赵杰等。新生儿超先天性反应导致感染后发病率和死亡率增加。程序。美国国家科学院。科学。美国2008年;105:7528–7533. doi:10.1073/pnas.0800152105。-内政部-项目管理咨询公司-公共医学
    1. Medzhitov R,Janeway CA,Jr.先天免疫:非克隆识别系统的优点。单元格。1997;91:295–298. doi:10.1016/S0092-8674(00)80412-2。-内政部-公共医学
    1. Foster SL,Hargreaves DC,Medzhitov R.通过TLR诱导的染色质修饰对炎症进行基因特异性控制。自然。2007;447:972–978. doi:10.1038/nature05836。-内政部-公共医学

出版物类型