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.2022年5月25日;13(5):500.
doi:10.1038/s41419-022-04964-w。

紫杉醇结合并激活C5aR1:预防化疗引起的周围神经病变和超敏反应的潜在新治疗靶点

附属公司

紫杉醇结合并激活C5aR1:预防化疗引起的周围神经病变和超敏反应的潜在新治疗靶点

劳拉·布兰多利尼等。 细胞死亡病. .

摘要

化疗诱导的周围神经病变(CIPN)和超敏反应(HSR)是抗肿瘤药物紫杉醇最常见和最具损害性的副作用之一。在这里,我们证明了紫杉醇可以结合并激活补体成分5a受体1(C5aR1),并且这种结合在紫杉醇诱导的CIPN和过敏反应的病因学中至关重要。从我们之前证明白细胞介素(IL)-8在紫杉醇诱导的神经元毒性中的作用的数据开始,我们寻找激活IL-8表达的蛋白质,并通过使用Exscalate平台进行分子对接模拟,我们预测了C5aR1与紫杉醇的高亲和力。通过体外研究,我们证实了C5aR1-β-肾上腺皮质激素结合的特异性和竞争性,并发现它在细胞内触发NFkB/P38通路和c-Fos。在F11神经元细胞和大鼠背根神经节中,C5aR1的抑制可保护其免受紫杉醇诱导的神经病理学效应的影响,而在紫杉醇治疗的小鼠中,这种抑制作用的缺失(敲除小鼠)或抑制C5aR1可显著改善CIPN症状,即冷性和机械性痛觉超敏,并降低爪子的慢性病理状态。最后,我们发现C5aR1的抑制可以抵消紫杉醇诱导的体外巨噬细胞过敏性细胞因子释放,以及小鼠HSR的发病。总之,这些数据确定C5aR1是预防和治疗紫杉醇诱导的CIPN和HSR的关键介质和新的潜在药理靶点。

PubMed免责声明

利益冲突声明

Brandolini L、Novelli R、Giorgio C、Sirico S、Cocciaro P、Ruocco A、Amendola P、Talarico C、Manelfi C、Iaconis D、Beccari A、Aramini A和Allegretti M是意大利DompéFarmaceutici S.P.A.的员工。其他作者声明没有相互竞争的利益。

数字

图1
图1。C5aR1结合位点的紫杉醇结合模式。
C5aR1和紫杉醇之间的配体以绿色线条表示,而蛋白质结构以蓝色表面表示(A类)和卡通(B类). 接触残留物和相关氢键分别用板条和黄色圆点表示。
图2
图2。通过SPR进行紫杉醇和C5aR1结合研究。
(A类)紫杉醇在固定化C5aR1、C5aR2、C5a和C5a des-Arg上的结合(B类)紫杉醇在固定化C5aR1上的剂量依赖性结合。(C类,D类)紫杉醇和C5aR1在固定化C5a和相对IC50上的共注射。(E类,F类)紫杉醇和C5aR1在固定化C5a des-Arg和相对IC50上的共注射。G公司,H(H)紫杉醇和C5aR1共注射在固定化单克隆抗体抗C5aR1和相关IC50上。
图3
图3。Paclitaxel-C5aR1细胞内途径。
NFκB磷酸化和总形式表达的量化(A类),c-6月(B类),c-Fos(C类),第38页地图(D类)和ERK3/MAPK6(E类)用western blot分析评价紫杉醇(PAC)治疗后分化的F11细胞(F类). 用PAC(10 nM)和DF3966A(10µM)处理F11细胞24小时***P(P) < 0.0005; *P(P) < 0.05 vs CTR;+++P(P) < 0.0005 vs紫杉醇。数据为平均值±SEMn个 = 3个不同的实验。
图4
图4。抑制C5aR1可恢复紫杉醇处理的F11细胞的神经元可塑性。
p-皮质素磷酸化和总形式表达的定量(A类),p-FAK(个人传真)(B类),p-JAK2(C类)和p-STAT3(D类)通过western blot分析评估紫杉醇(PAC)或C5a治疗后分化的F11细胞。p-皮质素和p-FAK的表达(E类),p-JAK2和p-STAT3(F类)、TRPV1和TRPV4(G公司)在暴露于紫杉醇的分化的F11细胞中,用C5aR1抑制剂DF3966A处理或不处理。用PAC(10nM)、C5a(50nM)或DF3966A(10µM)或PAC(10 nM)+DF3966A(10µ)处理F11细胞24小时***P(P) < 0.0005**P(P) < 0.005; *P(P) < 0.05 vs CTR;+++P(P) < 0.0005;++P(P) < 0.005;+P(P) < 0.05 vs紫杉醇。数据为平均值±SEMn个 = 3个不同的实验。
图5
图5。C5aR1抑制可抵消paclitaxel诱导的啮齿动物DRG改变。
在基础条件下维持的DRG细胞电生理记录的代表性痕迹(A类)和紫杉醇(10 nM)激发的细胞(PAC)(B类),紫杉醇+DF3966A(1µM)(C类),C5a(100 nM)(D类)或C5a+DF3966A(E类). 紫杉醇单独或联合DF3966A对DRG动作电位放电率的定量评估(F类)和C5a单独或与DF3966A组合使用(G公司). DRG衍生神经元培养7天。细胞处理1分钟30秒(短)或5分钟(长)**P(P) < 0.005和*P(P) < 0.05 vs各自的基础状态;+P(P) < 0.05 vs紫杉醇或C5a。数据为平均值±SEMn个 = 3个不同的实验。
图6
图6。C5aR1是紫杉醇诱导的寒冷和机械性痛觉超敏的关键介质。
显示紫杉醇(PAC)诱导的感冒小鼠爪子撤退反应的时间进程(A类)(双向方差分析,时间效应×治疗F(10285)=21.69;第页 < 0.0001,然后是Bonferroni的多重比较测试)和机械(B类)(双向方差分析,时间效应×治疗F(10285)=17.63;第页 < 0.0001,随后进行Bonferroni多重比较试验)用C5aR1抑制剂DF3966A(30 mg/kg)治疗或不治疗的异常性疼痛。在CIPN诱导期,每隔12小时口服DF3966A,持续14天。在DF3966A治疗后3 h,分别于第1、3、5、7、10和14天评估冷性和机械性痛觉超敏。(C类)C5aR1的实时PCR分析(单向方差分析,治疗效果F(2,27)=6.381;第页 = 0.0054,随后进行Bonferroni多重比较检验)和TNF-α(单因素方差分析,治疗效果F(2,27)=14.79;第页 < 0.0001,然后是Bonferroni的多重比较测试)脊髓中的表达水平(D类)C5aR1(单因素方差分析,治疗效果F(2,27)=3.480;第页 = 0.0452,然后是Bonferroni的多重比较试验),TRPV1(单向方差分析,治疗效果F(2,27)=6.349;第页 = 0.0055,然后是Bonferroni的多重比较试验),TRPV4(单向方差分析,治疗效果F(2,27)=4.050;第页 = 0.0290,然后是Bonferroni的多重比较试验),IL-1β(单向方差分析,治疗效果F(2,27)=13.81;第页 < 0.0001,然后进行Bonferroni多重比较试验)和IL-6(单向方差分析,治疗效果F(2,27)=1.898;第页 = 0.1694,然后进行Bonferroni的多重比较试验)***P(P) < 0.0005和*P(P) < 0.05与相应的假手术组相比;+++P(P) < 0.0005;++P(P) < 0.005和+P(P) < 0.05 vs紫杉醇。数据表示为平均值±SEM;n个 = 每组10人。
图7
图7。C5aR1抑制剂阻断C5a和紫杉醇诱导的小鼠和人类巨噬细胞释放类过敏性细胞因子。
RAW 264.7释放细胞因子的蛋白质组特征(A类,B类)和人类(C类,D类)巨噬细胞被C5a攻击(A类,C类)或紫杉醇(B类,D类)单独或与C5AR1抗体(抗C5AR)、Avacopan或DF3966A联合使用。RAW 264.7和人巨噬细胞用C5a(10 nM)、紫杉醇(PAC)(10 nM)、DF3966A(1μM)或Avacopan(1μM)和C5aR1抗体(1μL)处理24 h。数据为平均值±SEMn个 = 3个不同的实验。
图8
图8。C5aR1抑制剂可防止紫杉醇诱导的小鼠类过敏反应。
载体DF3966A或Avacopan对紫杉醇增加血管通透性的影响(A类)(单因素方差分析,治疗效果F(4,44)=5.121;第页 = 0.0018,然后是Bonferroni的多重比较试验)和血浆外渗(B类)(单因素方差分析,治疗效果F(4,44)=7.258;第页 = 0.0001,然后是Bonferroni的多重比较试验)。血清组胺(单因素方差分析,治疗效果F(3,36)=7.590;第页 = 0.0005,然后是Bonferroni的多重比较测试)(C类)SC5B-9(单因素方差分析,治疗效果F(3,36)=24.74;第页 < 0.0001,然后是Bonferroni的多重比较测试)(D类)接受用载体DF3966A或Avacopan预处理的紫杉醇的小鼠的浓度。紫杉醇以20 mg/kg的剂量静脉注射给药。载体DF3966A(生理盐水)和DF3966A(30 mg/kg,口服)在紫杉醇前3小时给药,而载体Avacopan和Avacopan(30 mg/kg,口服)在紫杉醇前1小时给药***P(P) < 0.0005,**P<0.005和*P(P) < 0.05 vs克雷莫波尔组;+++P(P) < 0.0005;++P(P) < 0.005和+P(P) < 0.05 vs紫杉醇。数据显示为每组10只动物的平均值±SEM。

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