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.2022年3月22日;23(7):3434.
doi:10.3390/ijms23073434。

Burkitt淋巴瘤细胞系中趋化因子受体CCR1的表达与CD10-阴性细胞表型及EBV潜伏基因EBNA2、LMP1和LMP2的共表达有关

附属公司

Burkitt淋巴瘤细胞系中趋化因子受体CCR1的表达与CD10-阴性细胞表型及EBV潜伏基因EBNA2、LMP1和LMP2的共表达有关

劳拉·兹韦尼奇等。 国际分子科学杂志. .

摘要

趋化因子及其受体调节免疫细胞的迁移和癌细胞的传播。CCR1、CCR2、CCR3和CCR5均属于单个蛋白同源簇,对相同的炎性趋化因子产生反应。我们以前报道过CCR1和CCR2B是在体外由EB病毒感染B细胞诱导产生的。EBV几乎存在于所有地方性Burkitt淋巴瘤(BL)病例中;然而,EBV在疾病发病机制中的作用尚不完全清楚。在这里,我们分析了CCR1号机组,中央控制室2,资本充足率3、和CCR5号机组在9个携带EBV和4个EBV阴性BL细胞系中,EBV DNA载量和EBV潜伏基因的表达。我们透露了CCR1号机组在两个CD10-阴性BL细胞系中高mRNA和蛋白水平表达,EBV潜伏基因EBNA2、LMP1和LMP2共同表达。低水平的中央控制室2在三个BL细胞系中发现了转录物。资本充足率3CCR5号机组几乎无法检测到抄本。我们的数据表明,在体内,CCR1可能参与BL细胞的传播和使用限制性EBV基因表达程序选择BL细胞。

关键词:Burkitt淋巴瘤细胞系;CCR1;CCR2;CCR3;CCR5;EBV。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明没有利益冲突。

数字

图1
图1
mRNA表达CCR1号机组-,中央控制室2-以及Burkitt淋巴瘤和淋巴母细胞系中的EBV编码基因。用实时RT-PCR测定mRNA表达水平。显示了归一化为看家基因的mRNA表达值TBP(待定):CCR1号机组中央控制室2(A类); EBV编码基因EBNA2(B)、LMP1(C类)、LMP2A(外显子1/外显子2)和LMP2B(D类)和BZLF(E类). 这个CCR1号机组每1000份的成绩单副本数TBP(待定)使用定量实时RT-PCR评估转录本(A类). 使用商用EBV Real-TM Quant试剂盒(Sacase Biotechnologies)定量每个细胞的EBV DNA拷贝数(F类). 所示为EBV阴性BL细胞系:DG75、BL41、Akata-和Mutu cl.30;潜伏期为I的携带EBV的BL细胞系:Rael、Akata+和Mutu cl.148;携带EBV的II型BL细胞系:BL41/95、BL16、Jijoye P79和Akuba;携带EBV的III型BL细胞系:Mutu cl.99和BL18。LCL是在不同EBV阴性供体PB B细胞感染EBV株B95-8后在体外建立的:LCL-1y代表经过大约1年的长期培养的LCL;LCL-1m为早期传代细胞系(培养1-2个月);将LCL-2m细胞培养2-4个月。数据表示为两到三个独立实验的平均值;在每个实验中,样品一式三份;错误条显示SD(G公司)CCR1号机组开放式阅读框(CCR1号机组-ORF)转录本采用RT-duplex PCR检测。用两对引物扩增第一链cDNA模板,其中一对引物用于家政基因GAPDH公司和另一对侧翼CCR1号机组-ORF公司。显示了具有EBV潜伏期I(Mutu cl.148)、II型(BL16、BL41/95、Jijoye P79)和III型(Mutu cl.99、BL18)的I型BL细胞系和两个LCL(LCL-2mon、LCL-1year)的数据;FBS显示血清剥夺3小时后的样本(受体循环条件)。
图2
图2
伯基特淋巴瘤细胞系的表型。CD10阳性的百分比(%)(A类)和CCR1-表示(B)用流式细胞仪分析获得细胞。分析中省略了Annexin V染色(凋亡)和自体荧光细胞。给出的数据来自至少两个独立的实验,并显示为SD的平均值(C类)使用NCBI IGBLAST工具确定IGHV与顶级生殖系基因的同源性(%)。(D类)使用细胞裂解物和特异性抗体的免疫印迹法评估II型和III型BL细胞系中EBNA2和LMP1蛋白的表达;以人β-actin蛋白作为负荷控制。Raji和Mutu III BL II型细胞系作为阳性对照(表S1)。Mutu细胞系的所有克隆都是早期传代BL细胞系的衍生物[14]。BL41是EBV阴性细胞系。一个小面板显示了细胞系BL41/95、BL16、Akuba和Raji中的EBNA2蛋白,该免疫印迹与长期暴露相同。(E类)CCR1的免疫荧光染色显示在III型BL细胞系Mutu cl.99和作为阳性对照的人类髓系组织细胞淋巴瘤细胞系U937的细胞中;在DG75中,EBV和CCR1号机组转录阴性的BL细胞系,未观察到CCR1免疫荧光信号。
图3
图3
Burkitt淋巴瘤细胞系CCR1细胞表面表达分析。在诱导受体循环(剥夺血清3小时)后,使用三色流式细胞术分析细胞表面是否存在CCR1。BL18和Mutu cl.99是携带EBV的III型BL细胞系;Akuba、BL41/95和BL16是携带EBV的II型BL细胞系;Mutu cl.148是携带EBV的I型BL细胞系;LCL-1y和LCL-1m是已建立的体外LCL,分别培养了大约1年和1-2个月。点图显示用抗CD10-PE、抗CD191(CCR1)-Alexa Fluor 647和抗CD192(CCR2)-Alexa Fluor 647抗体染色的细胞;至少分析了20000个门控细胞;阈值边界为染色细胞的3.0%。从分析中排除凋亡细胞(用膜联蛋白V-Horizon V450或膜联蛋白V-PerCp-Cy5.5染色)和自体荧光细胞。抗CD192(CCR2)-Alexa Fluor 647抗体在BL细胞系和LCL的细胞表面均未检测到CCR2。直方图显示,在LCL和III型BL细胞系BL18和Mutu cl.99中,绝大多数CD191(CCR1)染色细胞(填充灰色)相对于CD192(CCR2)染色的细胞(粗体线)发生移位;在早期传代的Ⅱ型BL细胞系Akuba中,只有一小部分细胞(约8.4%)CCR1阳性。显示了两个独立实验的代表性结果。

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