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.2022年7月;13(7):490-512.
doi:10.1007/s13238-021-00864-5。 Epub 2021年7月31日。

LIN28协同促进多能干细胞的核仁/核糖体功能并抑制2C类转录程序

附属公司

LIN28协同促进多能干细胞的核仁/核糖体功能并抑制2C类转录程序

甄孙等人。 蛋白质细胞. 2022年7月.

摘要

LIN28是一种RNA结合蛋白,在早期胚胎发育、干细胞分化/重编程、肿瘤发生和代谢中发挥重要作用。以前的研究主要集中在它在细胞溶质中的作用,在细胞溶液中它与Let-7 microRNA前体或mRNA相互作用,很少有研究涉及LIN28在细胞核中的作用。在这里,我们发现LIN28在小鼠胚胎发育过程中表现出动态的时间和空间表达。母体LIN28的表达在退出2细胞期时下降,而合子LIN28蛋白在4细胞到胚泡期的发育过程中在形成核仁处被诱导,在着床后在细胞质中主要表达。在培养的多能干细胞(PSCs)中,LIN28的缺失导致核仁应激和激活以内源性逆转录病毒基因表达为特征的2细胞/4细胞样转录程序。从机械上讲,LIN28与小核仁RNA和rRNA结合以维持核仁完整性,其丢失导致核仁相分离缺陷、核糖体应激和P53活化,而P53又与2C转录因子Dux结合并激活。LIN28还存在于含有核仁因子核仁蛋白(NCL)和转录抑制因子TRIM28的复合体中,LIN28的缺失导致NCL/TRIM28复合体在Dux和rDNA位点上的占有率降低,从而使Dux失表达,rRNA表达降低。带有核仁应激的Lin28敲除细胞更可能呈现缓慢循环、翻译惰性和合成代谢不活跃状态,这是以前未被认可的2C类转录程序的一部分。这些发现阐明了核仁LIN28在PSC中的新作用,以及在PSC和早期胚胎发育中连接2C程序和核仁功能的新机制。

关键词:2-细胞样程序;LIN28;NCL/TRIM28复合体;核仁完整性。

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数字

图1
图1
LIN28A在小鼠早期胚胎发育及不同状态多能干细胞中的时空表达.(A)mRNA表达林28a和阶段特异性标记基因Yap1号机组(卵母细胞),Zscan4d公司(2C)和纳克根据已发布的RNA-seq数据分析了不同发育阶段的(胚泡内细胞质量)(Wang等人,2018)。MII:中期II。TPM:mRNA表达水平的百万分转录本。R: 右y轴。括号中的数字表示胚胎数量。(B) 小鼠植入前胚胎发育早期LIN28A和核仁标记蛋白纤维蛋白(FBL)的免疫荧光染色。2PN:双原核期。BC:囊胚期。比例尺,50μm。(C) 上面板:原始和启动的多能干细胞中具有代表性的Lin28A免疫染色。下部面板:主要在细胞核中含有LIN28A的细胞百分比汇总。细胞作为单个细胞生长,或在小菌落中生长,并分别计数。图中的每个点代表每个条件下大约10个细胞的一次计数实验。比例尺,10μm**< 0.01, ***< 0.001,t吨-测试,误差栏:平均值的标准误差。(D和E)免疫荧光染色和共聚焦(使用Airyscan模块)显示LIN28A亚细胞定位和核仁室标记蛋白,如核蛋白(NPM1,颗粒组分)、纤维素酶(FBL,致密纤维组分)和Pol I(RPA194,纤维中心)。直方图表示每个蛋白质沿箭头栏的信号强度。比例尺,10μm
图2
图2
LIN28缺乏导致ERV和2C标记基因激活(A)比较野生型和林28a敲除ES细胞。(B) 胚胎期特异性基因根据其表达模式分为五类。(C) 日志2基因表达丰度在林28a敲除每个基因簇的ES细胞和野生型细胞***<0.001,Mann-Whitney U检验。(D) 中不同类别的长末端重复或LTR表达林28a林28b敲除ES细胞。(E) ERVL基因的两个亚类MERVL-int和MT2_Mm在林28a敲除ES细胞。对于(D和E),LTR表达的TPM值在所有样本中线性归一化为0到1的范围***<0.001,Wilcox符号秩检验。所选2C标记基因和Mervl-聚合酶基因的(F和G)qPCR验证(Mervl-pol公司)野生型和林28a/b敲除ES细胞。(H和I)LIN28A在敲除细胞中的过度表达逆转了2C基因和ERV基因的激活。(J) 显微镜照片和流式细胞术显示了使用转染有2C::td番茄记者结构。(K) 野生型和林28a敲除ES细胞*< 0.05, **< 0.01, ***<0.001,双向方差分析,n个=3,误差栏:平均值的标准误差
图3
图3
LIN28通过抑制 杜克斯(A和B)UCSC基因组浏览器视图,显示所示ES细胞(A)或iPS细胞(B)中Dux基因的RNA-seq结果。(C) ATAC-seq轨道位于杜克斯宽型(蓝色)和Lin28a敲除(棕色)ES细胞的家族基因座。(D) qRT-PCR显示杜克斯用空载体或Lin28a过表达载体转导的野生型和双敲除iPS细胞中的基因表达(相对表达标准化为Gapdh)。(E) 箱线图显示,通过分析Lin28双敲除iPS细胞中上调的基因,Dux靶点比非靶点更容易诱导。(F) qRT-PCR显示杜克斯野生型和Lin28双敲除iPS细胞中,2C基因和MERVL的表达杜克斯siRNA。(G) ChIP-qPCR显示H3K9me3水平杜克斯野生型和敲除型ES细胞的基因位点。IgG作为对照。(H) UCSC基因组浏览器查看H3K9me3 ChIP-seq结果杜克斯家庭*< 0.05, **< 0.01, ***<0.001,双向方差分析,n个=3,误差栏:平均值的标准误差
图4
图4
LIN28与snoRNA和rRNA结合,其丢失导致rRNA生物生成减少和核糖体应激(A)LIN28A CLIP-seq富集分析。与其他基因相比,ERVL、MERVL-int和MT2_Mm类在LIN28A结合靶点中没有富集。(B) qRT-PCR显示rRNA在野生型和林28a敲除ES细胞。PCAGIG:空向量。OE:过度表达*< 0.05, **< 0.01, ***<0.001,双向方差分析,n个=3,误差栏:平均值的标准误差。(C) GSEA分析显示核糖体基因集的集体变化林28a与野生型细胞相比,敲除ES细胞。NES:标准化浓缩分数。(D) 流式细胞术显示OP-puromycin(OP-puro)标记野生型和林28a敲除ES细胞。(E) 电镜显示野生型和林28a敲除ES细胞。比例尺,2μm。(F) 左侧面板:GSEA分析显示p53信号通路基因集的集体变化。右侧面板:上调p53靶基因林28a与野生型细胞相比,敲除ES细胞。(G–I)qRT-PCR显示杜克斯(G) 、2C相关基因(H)或MERVL(I)在野生型和林28a用干扰阴性对照处理的敲除ES细胞,或Trp53基因siRNA。(J和K)qRT-PCR显示杜克斯(J) 或用4μmol/L CX-5461或等量水(对照)处理12小时的ES细胞中的2C相关基因(K),或Trp53基因在相同条件下处理的敲除ES细胞。(五十) UCSC基因组浏览器使用p53抗体和磷酸化p53 S18P查看ChIP-seq结果杜克斯基因位点*< 0.05, **< 0.01, ***<0.001,双向方差分析,n个=3,误差栏:平均值的标准误差
图5
图5
LIN28A与核仁蛋白相关,并通过NCL/TRIM28复合物介导rRNA生物发生和2C基因抑制(A)维恩图,显示LIN28A拉下的蛋白质与核仁蛋白质或核糖体蛋白质之间的重叠。(B) 通过Co-IP验证内源性LIN28A和核仁或核蛋白之间的相互作用,然后在ES细胞中进行Western blot分析。IgG被用作IP的阴性对照。(C) 野生型和野生型中NCL和FBL的RIP-qPCR测定林28a敲除ES细胞*< 0.05, **< 0.01, ***<0.001,双向方差分析,n个=3,误差栏:平均值的标准误差。(D) RiboMethseq对野生型和林28a敲除ES细胞。MethScore是使用(Birkedal等人,;Marchand等人,2016)中提到的方法计算的***< 0.001. 威尔科克斯签署了等级测试。(E) 左侧面板:RiboMeth-seq显示28s rRNA上一系列snoRNA靶向区域(从3366 bp到3397 bp)的映射测序结果。红色突出显示的A是预测的甲基化位点(来自SnoRNA Orthological Gene Database)。右侧面板,计算RiboMeth-Seq得分,以指示A预测位点的2'-O-甲基化水平(Birkedal等人,2015)。(F) 蛋白质组学分析显示野生型和林28a敲除ES细胞***< 0.001,t吨-测试,n个=3,误差栏:平均值的标准误差。(G) 蛋白质组学分析显示野生型和第28行敲除细胞(平均蛋白质组数据来自林28a敲除ES细胞和林28a/b条敲除iPS细胞)。误差栏:平均值的标准误差。n个=2个独立的蛋白质组学实验。(H和I)qRT-PCR显示2C相关基因在用干扰阴性对照或指示的siRNAs处理的ES细胞中的表达。(J和K)NCL和TRIM28 ChIP-qPCR分析杜克斯(J) 和rRNA(K)基因座林28a敲除ES细胞。(五十) p53和TRIM28 ChIP-qPCR分析杜克斯未经处理和CX-5461处理的ES细胞中的基因座
图6
图6
LIN28的缺失改变了2-细胞/ES的稳态,并导致RP表达更低和翻译惰性的2C样细胞(A)GSEA分析2C::td番茄+ES细胞与2C::td番茄-指定基因集的细胞。(B) tSNE图显示野生型和林28a将敲除的ES细胞放在一起。(C) tSNE图显示与(B)中相同细胞的平均核糖体蛋白(RP)基因表达和ERV基因表达。颜色强度表示单个细胞中ERV基因或核糖体蛋白基因的平均表达。(D) 散点图显示了野生型和野生型中MERVL-int或MT2_Mm表达与单细胞RNA-seq核糖体基因表达之间的相关性林28a敲除细胞。每个点代表一个具有可检测ERV表达的单个细胞。(E) tSNE图显示野生型和林28a分别敲除ES细胞。颜色强度表示单个细胞中ERV基因或核糖体蛋白基因的平均表达
图7
图7
LIN28在植入前胚胎发育过程中促进蛋白质合成并促进2C基因阻遏s.(A)在(B)、(C)、(E–I)(B)qRT-PCR中siRNA微注射实验的示意图,显示林28a受精卵注射siRNAs后囊胚中的mRNA水平在体外注射胚胎的培养。A类林28a用siRNA池敲除胚胎中的Lin28a基因,用打乱的siRNA双链作为阴性对照(siNC)*< 0.05,t吨-测试,误差栏:平均值的标准误差。(C) LIN28A的胚胎免疫染色显示LIN28A敲除成功。该图像代表了三个独立实验中的一个。比例尺,50μm。(D) 受精卵注射林28asiRNA池或对照siRNA。(E)荧光成像显示OP-puromycin标记的(1小时)培养胚胎在体外在不同的阶段。比例尺,50μm。(F) 对照组和对照组OP-puromycin标记(1 h)和LIN28A表达免疫染色第28行敲除桑椹胚阶段的胚胎。比例尺,50μm*< 0.05,t吨-测试,误差栏:平均值的标准误差。(G) qRT-PCR显示受精卵注射siRNAs后2C相关基因在囊胚中的表达在体外培养这些胚胎*< 0.05, **< 0.01, ***<0.001,双向方差分析,n个=3,误差栏:平均值的标准误差。(H) 日志2基因表达丰度在林28a图2B中描述的每个基因簇的敲除和对照胚胎*< 0.05, ***<0.001,Mann-Whitney U检验。(一) 两个亚类MERVL基因MERVL-int和MT2_Mm在林28a敲除和控制胚胎***<0.001,Wilcox符号秩检验。(J) GSEA分析显示核糖体基因集的集体变化林28a敲除和控制胚胎。NES:标准化浓缩分数

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引用人

参考文献

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