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.2021年4月20日;13(8):11762-11773.
doi:10.18632/aging.202870。 Epub 2021年4月20日。

D-半乳糖诱导衰老模型中小鼠乳腺干/祖细胞的特性

附属公司

D-半乳糖诱导衰老模型中小鼠乳腺干/祖细胞的特性

Hui Gao公司等。 老龄化(纽约州奥尔巴尼市). .

摘要

衰老在许多疾病中扮演着重要角色,包括乳腺癌。衰老的乳腺干/祖细胞被认为是乳腺肿瘤发生的起源细胞;然而,成本、时间、疾病并发症和高死亡率阻碍了自然衰老小鼠在研究中的广泛应用。在这项研究中,我们在D-半乳糖诱导的加速衰老模型中表征了小鼠乳腺干/祖细胞,并将其与我们早期对自然衰老小鼠的研究结果进行了比较。我们的结果表明,D-半乳糖诱导衰老模型中的乳腺在病理变化、上皮细胞组成和乳腺干/祖细胞功能方面模仿自然衰老。这些变化伴随着血液和乳腺局部全身炎症反应的升高,这与自然衰老的小鼠相似。我们的研究首次在D-半乳糖诱导的啮齿动物衰老模型中评估了乳腺和乳腺干/祖细胞的功能,我们的研究结果表明,D-半乳糖治疗可以作为一种替代物来研究衰老干/祖电池在乳腺肿瘤发生中的作用。

关键词:D-半乳糖;老化;乳腺癌;乳腺干/祖细胞。

PubMed免责声明

利益冲突声明

利益冲突:提交人报告没有利益冲突。

数字

图1
图1
D-半乳糖诱导炎症信号升高。(A类)对照小鼠和D-半乳糖治疗小鼠血清样本中炎症细胞因子IL-6和TNFα的水平(n个= 3); (B类)对照组和D-半乳糖处理组小鼠乳腺淋巴结面积(n个= 5); (C类)对照组和D-半乳糖处理小鼠乳腺中p-STAT5染色的定量(n个= 4). 比例尺,50μm。星号,对照组和D-半乳糖之间的显著差异(*P(P)< .05,**P(P)< .01).
图2
图2
D-半乳糖影响乳腺形态和病理。(A类)对照和D-半乳糖处理的小鼠的乳腺的全山胭脂红明矾染色的代表性实例(比例尺,1mm);(B类)H&E组织学图像显示对照组和D-半乳糖治疗组小鼠的正常和增生导管(比例尺,100μm);(C类)对照组和D-半乳糖治疗小鼠每毫米(mm)导管分支点(上面板)和增生导管百分比(下面板)的量化(n个= 5). 星号,对照组和D-半乳糖之间的显著差异(*P(P)< .05,**P(P)< .01).
图3
图3
D-半乳糖改变乳腺基底/腔细胞池。(A类)对照组和D-半乳糖处理小鼠乳腺上皮细胞的代表性流式细胞术分析。基底细胞表达高水平的CD49f,管腔细胞表达高浓度的CD24;(B类)从对照组和D-半乳糖治疗小鼠分离的乳腺上皮细胞中%基底细胞、%管腔细胞和管腔-基底细胞比率的定量(n个= 5). 星号,对照组和D-半乳糖之间的显著差异(*P(P)< .05).
图4
图4
D-半乳糖改变乳腺干/祖细胞功能在体外.(A类)代表性图片显示在体外基底干细胞的连续传代包含从初级类器官(P0)到P1和P5的3D类器官(比例尺,100μm);(B类)代表性图片显示在体外含有3D类器官的管腔前体细胞从初级类器官(P0)连续传代到P1和P5(比例尺,100μm);(C类)定量来自对照组和D-半乳糖处理小鼠的干/祖细胞可传代至P5的3D类有机物数量(对于每种3D类有机物质,每只动物10个有机物×3只动物=30个有机物)。
图5
图5
D-半乳糖改变管腔祖细胞分化在体外.(A类)具有代表性的免疫荧光图像显示预先喂入辐照NIH-3T3成纤维细胞的平板上管腔前体细胞形成的明显集落;(B类)条形图显示了由对照组和D-半乳糖处理小鼠的腔祖细胞形成的不同类型菌落的分布(每只动物>20个菌落×3只动物)。K14:基底细胞标志物角蛋白14;K8:管腔细胞标记角蛋白8。
图6
图6
D-半乳糖改变乳腺干/祖细胞功能体内并增加再生腺体的增生。(A类)再生腺体体内从经过或不经过D-半乳糖处理的GFP小鼠移植一种基础3D类器官(比例尺,1mm);(B类)清除脂肪垫(CFP)移植试验中,从对照组或D-半乳糖处理的干/祖细胞中获得阳性生长产物;(C类)从对照组和D-半乳糖处理的GFP小鼠再生腺体中分离的乳腺上皮细胞的发光-基底细胞比率(n个= 3–4); 和(D类)H&E组织学分析显示,来自对照组和D-半乳糖治疗的GFP小鼠再生腺的乳腺导管增生%(n个= 3–6). 星号,对照组和D-半乳糖之间的显著差异(*P(P)< .05).

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