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.2021年2月4日;17(2):e1009283。
doi:10.1371/journal.pgen.1009283。 eCollection 2021年2月。

ATF3下调其新靶点IFI6和IFI27,以抑制舌鳞癌细胞的生长和迁移

附属公司

ATF3下调其新靶点IFI6和IFI27,以抑制舌鳞癌细胞的生长和迁移

林旭等。 公共科学图书馆-基因. .

摘要

激活转录因子3(ATF3)是调节细胞应激反应的关键转录因子,在不同组织中具有不同的表达水平和功能。ATF3也被证明在调节肿瘤的发展和进展中起着关键作用,但其在口腔鳞状细胞癌中的潜在作用尚未得到充分研究。在本研究中,我们检查了舌鳞状细胞癌(TSCC)的活检,发现ATF3的核表达水平与TSCC的分化状态呈负相关,这通过对ATGC数据库的分析得到了验证。通过对四种不同TSCC细胞系中ATF3的功能获得或丧失分析,我们证明ATF3在体外对人TSCC细胞的生长和迁移具有负调控作用。RNA-seq分析确定了ATF3的两个新下游靶点,即干扰素α诱导蛋白6(IFI6)和27(IFI27),它们在ATF3缺失细胞中上调,在ATF3-过度表达细胞中下调。染色质免疫沉淀分析表明,ATF3结合IFI6和IFI27基因的启动子区域。IFI6和IFI27在TSCC活检中均高表达,TSCC细胞中IFI6或IFI27的敲除阻断了ATF3缺失诱导的细胞生长和迁移。相反,IFI6或IFI27的过度表达抵消了ATF3过度表达诱导的TSCC细胞生长和迁移的抑制。最后,一项小鼠体内研究证实了这些体外发现。我们的研究表明,ATF3通过对其下游靶点IFI6和IFI27的负调控,在TSCC中发挥抗肿瘤作用。

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提交人声明,不存在相互竞争的利益。

数字

图1
图1。ATF3与TSCC的进展呈负相关。
答:。高、中、低分化临床TSCC肿瘤和正常口腔组织的典型组织学分析图像(H&E染色)。B。来自不同级别TSCC组织的一名患者的ATF3免疫化学染色代表性图像A、,红色箭头表示ATF3的核染色,绿点线表示正常口腔或肿瘤组织中表皮(E)和间充质(M)分区之间的边界。S1图显示了来自不同级别TSCC的另外两名患者的低倍图像和ATF3染色的代表性图像培养的原代口腔人角质形成细胞(OHKCs)、CAL 27和SCC-9细胞中ATF3(红色)和DAPI(蓝色)免疫荧光染色的代表性融合图像,DAPI用于细胞核染色。红色箭头表示ATF3的核染色。图S3显示了ATF3和DAPI染色的单独图像。A-C:比例尺=100μm。D。用核ATF3染色定量正常口腔上皮细胞和肿瘤细胞的百分比(B)通过计数ATF3核染色细胞在总共200个上皮或肿瘤细胞中的数量来计算B.电气.ATF3核阳性染色百分比的量化C类.F、。从细胞中制备的细胞核和细胞质部分C类用于ATF3的western blot分析。层蛋白B1被用作核组分的负荷控制,GAPDH被用作细胞质组分的负载控制。G.公司。根据ATGC数据得出的正常组织和口腔肿瘤组织中ATF3(相对对数表达)的正常表达水平。D、 E、F:*p<0.05**p<0.01***如图所示,比较两组时,p<0.005。
图2
图2。ATF3的缺失促进TSCC细胞的生长和迁移。
答:。使用CCK8试剂盒在不同时间点分析CRISPR/Cas9介导的ATF3缺失(SG1或SG2)或空载体作为对照(V)的CAL 27细胞的生长**与对照组比较p<0.01。B、 C类用ATF3缺失(SG1或SG2)或对照(V)TSCC细胞进行横向迁移分析;24小时迁移细胞的图像如所示B,不同组中迁移的单元数如所示C类与对照组相比**p<0.01,**p<0.005。比例尺英寸B=100微米。D、 E.公司。在指定时间用ATF3缺失(SG1或SG2)或对照(V)TSCC细胞进行伤口愈合分析,典型的伤口愈合图像如所示D类,伤口闭合百分比计算为E类与对照组相比,**p<0.01。比例尺英寸D类=200微米。F类对对照组和ATF3缺失的TSCC中指示的蛋白质水平进行Western blot分析。红色箭头表示与对照细胞相比,ATF3缺失细胞的带密度增加(V)。G公司.磷酸化AKT(p-AKT)和ERK(p-ERK)水平的量化与相应蛋白质的总水平标准化。*与对照组相比,p<0.05、**p<0.01。
图3
图3。ATF3的过度表达抑制TSCC细胞的生长和迁移。
答:。使用CCK8试剂盒在不同时间点分析感染过表达ATF3(ATF3)或表达新霉素作为对照(NEO)的逆转录病毒的SCC-9 TSCC细胞的生长情况***与对照组相比p<0.005。B、 C类用过表达ATF3(ATF3)或对照(NEO)的TSCC细胞进行跨孔迁移测定;24小时迁移细胞的图像如所示B,不同组中通过过滤器迁移的单元格数量如所示C类.**p与对照组相比<0.01。比例尺英寸B=200微米。D、 E类伤口愈合测定是用在指定时间过表达ATF3(ATF3)或对照(NEO)的TSCC细胞进行的;代表性图像如所示D类,伤口闭合百分比计算为E类.*与对照组相比,p<0.05。比例尺=200μm。F类Western blot分析对照NEO和ATF3过度表达(ATF3)TSCC中的指示蛋白质水平。红色箭头表示与对照组相比,带密度降低。G公司量化磷酸化形式AKT(p-AKT)和ERK(p-ERK)的相对水平(密度),并与相应蛋白质的总水平进行标准化*如图所示,与对照组ATF3过度表达细胞相比,p<0.05。
图4
图4。ATF3抑制在TSCC中高度表达的IFI6和IGI27。
答:。ATF3缺失(SG1)和对照(V)CAL 27 TSCC细胞基因表达谱的RNA-seq分析。丰富GO项的点图。基因比率最大的15个GO过程按基因比率顺序显示。点大小表示与GO项相关的对照细胞(V)相比,SG1细胞中表达增加的基因数量。点颜色表示对数p值。B。通过基因聚类分析,在SG1与对照V细胞中上调最多的基因中鉴定出IFI6和IFI27。C、。ATF3缺失(SG1和SG2)和对照(V)TSCC细胞中IFI6和IFI27表达的RT-PCR分析。D。对ATF3过度表达(ATF3)和对照(NEO)TSCC细胞中IFI6和IFI27的表达进行RT-PCR分析。E、 F类:对具有ATF3缺失(SG1或SG2)或ATF3过表达的CAL 27细胞的提取物进行处理,用抗ATF3抗体进行染色质免疫沉淀(CHIP)分析,然后对IFI6进行RT-PCR分析(E))或IFI27(F类)包含ATF3结合位点的启动子区域(上图中的黑框)。TSS:转录起始点。CHIP产物也用常规PCR进行了分析,PCR产物的凝胶电泳图像如S9图所示。G.公司。6例临床TSCC肿瘤和6例正常组织中IFI6表达的IHC分析。H(H)G中IFI6染色的定量(n=6).I.一。ATGC数据库中TSCC组织和正常组织中IFI6的表达。J。ATGC数据库中TSCC组织和正常组织中IFI27的表达。两者都有J型以Y轴的相对对数表达式显示。C、 D、H-J:与相应对照组相比,*p<0.05、**p<0.01和***p<0.005。
图5
图5。ATF3通过调节IFI6和IFI27调节TSCC细胞的生长和迁移。
答:。使用CCK8试剂盒在不同时间点分析了CAL 27 TSCC细胞的生长情况,包括CRISPR/Cas9介导的ATF3(SG1)缺失、IFI6(SG1+siIFI6)或IFI27(SG1+4iIFI27)的敲除或干扰siRNA(SG1+siCtrl)的干扰,以及一个空载体和干扰siRNA作为对照(V+siCtrl)。BRT-PCR分析转染后48小时,TSCC细胞预先感染CRISPR/Cas 9 ATF3病毒,然后转染IFI6或IFI27的siRNA。C、。使用CCK8试剂盒在不同时间点分析感染过表达ATF3(ATF3)的逆转录病毒、稳定表达IFI6(ATF3+IFI6)或IFI27(ATF3+IFI27)或GFP(ATF8+GFP)以及表达新霉素和GFP作为对照的SCC-9细胞的生长情况。D类在感染表达ATF3的病毒和表达逆转录病毒的IFI6或IFI27后48小时,对TSCC细胞中的IFI7或IFI6进行RT-PCR分析C类.E、,用CAL 27细胞在同一组中进行伤口愈合迁移分析A、,S11A图显示了受伤后24小时的愈合百分比和伤口愈合图像。F、。在与C、,伤后24小时的愈合率如图所示,伤口愈合图像如S11B图所示。G.公司。使用与C、。图中显示了不同组中迁移细胞的数量,24小时迁移细胞的图像如S11C图所示。H(H)Western blot分析同一组细胞中指示的蛋白质水平A类..磷酸化AKT(p-AKT)和ERK(p-ERK)水平的量化与相应蛋白质的总水平标准化H(H).J型Western blot分析同一组细胞中指示的蛋白质水平C类.英国。磷酸化AKT(p-AKT)和ERK(p-ERK)水平的量化与J型. *答-答:*与所示的相应对照组相比,p<0.05,**p<0.01,***p<0.005,***p<0.001。
图6
图6。ATF3负调控OSCC细胞生长体内通过调节IFI6和IFI27的表达。
答:。从CAL 27细胞移植物上采集的肿瘤图像,ATF3缺失(SG1或SG2)或对照组(V)。代表小鼠图像如S12A图所示.B类。肿瘤的重量(A)各组均进行测量;每个闭合的圆圈代表一个肿瘤。C类肿瘤的Ki-67和角蛋白(K14)染色的代表性图像A类。红色箭头表示Ki-67阳性细胞。Ki-67和K14染色图像的低倍放大如S12B和S12C图所示。D。Ki-67阳性细胞的定量和K14染色的相对分数C.E.公司。肿瘤图像取自ATF3(ATF3)过度表达加上IFI6(ATF3+IFI6)或IFI27(ATF3+IFI27)过度表达的SCC-9细胞移植物,NEO作为对照组。代表小鼠图像如S13A图所示.F.(法语)。肿瘤的重量(E类)各组均进行了测量,并显示在图表中;每个闭合的圆代表一个肿瘤。G、 I、K、MKi-67的代表性图片(G公司),角蛋白14(K14,),角蛋白4(K4,K(K))和角蛋白13(K13,M(M))肿瘤染色E类。红色箭头表示Ki-67阳性细胞G公司,K4阳性细胞K(K)和K13阳性细胞M(M)Ki-67、K14、K4和K13染色图像的低倍放大显示为S13B–S13E图。H、 J、L、N.相应的量化G、 I、KM(M)如标记的。所有量化数据均来自每组6个肿瘤(n=6):与所示的两个相应对照组相比,*p<0.05,**p<0.01,***p<0.005。所有比例尺=100μm。

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工具书类

    1. Vigneswaran N,Williams MD。头颈癌和艾滋病诊断的流行病学趋势。北美口腔颌面外科诊所2014;26(2):123–41. 电子出版2014/05/06。10.1016/j.coms.2014.01.01-内政部-项目管理咨询公司-公共医学
    1. Boldrup L、Coates PJ、Laurell G、Wilms T、Fahraeus R、Nylander K。miRNA-424下调:临床正常舌鳞状细胞癌旁区域癌变的迹象。英国癌症杂志。2015;112(11):1760–5。Epub 2015年5月13日。10.1038/bjc.2015.150-内政部-项目管理咨询公司-公共医学
    1. Hussein AA、Forouzanfar T、Bloemena E、de Visscher J、Brakenhoff RH、Leemans CR等。舌鳞癌早期诊断和预后预测最有希望的生物标志物综述。英国癌症杂志。2018;119(6):724–36. Epub 2018年8月23日。10.1038/s41416-018-0233-4-内政部-项目管理咨询公司-公共医学
    1. Karatas OF,Oner M,Abay A,Diyapoglu A.人类舌鳞癌中的微RNA:从发病机制到治疗意义。口腔癌。2017;67:124–30. 电子出版2017/03/30。2016年10月10日/j.口腔科2017.02.015。-内政部-公共医学
    1. Hai T、Wolford CC、Chang YS。ATF3,细胞适应性反应网络的枢纽,在疾病的发病机制中:炎症的调节是一个统一的组成部分吗?基因表达。2010;15(1):1–11. 电子出版2010/11/11。10.3727/105221610x12819686555015-内政部-项目管理咨询公司-公共医学

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