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.2019;20(4):435-443.
doi:10.1080/15384047.2018.1529117。 Epub 2018年10月25日。

RasGRF2通过Src/Akt/NF-κB途径调节MMP9的表达,促进结直肠癌细胞的迁移和侵袭

附属公司

RasGRF2通过Src/Akt/NF-κB途径调节MMP9的表达,促进结直肠癌细胞的迁移和侵袭

佩芬路等。 癌症生物治疗. 2019.

摘要

Ras-specific guanine nucleotide releasing factor 2(RasGRF2)是鸟嘌呤核苷酸交换因子家族的成员,在多种组织和癌症中表达。然而,RasGRF2在癌症中的作用却鲜有报道,尤其是在结直肠癌(CRC)中。因此,本研究旨在研究RasGRF2的功能及其在CRC样本和细胞系中影响肿瘤进展的方式。我们首先测量了结肠癌手术切除后26个配对肿瘤和非肿瘤结肠组织中RasGRF2 mRNA的水平,并测定了97个配对石蜡包埋结肠癌组织中Ras GRF2蛋白的水平,发现与相邻非肿瘤组织相比,结肠癌组织的RasGRF2 mRNA和蛋白水平升高。然后我们检测了RasGRF2基因敲除对CRC细胞(SW480、HCT116和LS174T)增殖、迁移和侵袭的影响。将RasGRF2基因敲除的HCT116细胞注入裸鼠尾静脉,建立转移模型,并检测肿瘤转移情况。我们发现,敲除CRC细胞中的RasGRF2可减少其在体外的迁移和侵袭以及在小鼠体内的转移。此外,我们探索了RasGRF2介导的CRC迁移和侵袭的潜在分子机制。结果表明,RasGRF2在CRC细胞中的敲除可降低MMP9的表达,并抑制Src/Akt和NF-κB信号的激活。我们得出结论,RasGRF2在控制CRC的迁移和侵袭中发挥作用,并通过Src/PI3激酶和NF-κB途径调节MMP9的表达。

关键词:AKT1蛋白激酶;大肠癌;基质金属蛋白酶9;核因子-κB;ras鸟嘌呤核苷酸释放因子。

PubMed免责声明

数字

图1。
图1。
RasGRF2在原发性CRC肿瘤和CRC细胞系中的表达增加。(a) 实时PCR和(b)western blot分析原发性肿瘤(T)、匹配的相邻非肿瘤性结直肠组织(N)中RasGRF2蛋白水平。(c) 组织中RasGRF2的典型免疫组织化学染色结果。(d) 几种CRC细胞系中RasGRF2表达的Western blot分析。GAPDH被用作所有分析的内部控制。
图2。
图2。
敲除RasGRF2表达对CRC细胞株的增殖和凋亡无影响。(a) RNA干扰后细胞中RasGRF2 mRNA的实时PCR分析。(b) RNA干扰后细胞中RasGRF2蛋白的蛋白质印迹分析。(c) MTT法测定对照组和RasGRF2低表达CRC细胞的细胞增殖分析。(d) 通过Annexin V-APC/7-AAD染色和流式细胞术测定对照组和RasGRF2下调表达的CRC细胞的凋亡分析。数值表示为平均值±标准偏差。
图3。
图3。
CRC细胞中RasGRF2的敲除抑制细胞迁移和侵袭。(a) 用对照shRNA和shRasGRF2转染SW480和HCT116细胞进行伤口愈合分析。48小时时观察到细胞向伤口的迁移。(b) 无基质Transwell分析显示RasGRF2对HCT116和LS174T中迁移能力的影响。(c) 在有或无RasGRF2下调表达的HCT116和LS174T细胞中进行基于Matrigel的Transwell分析。此图显示了三个独立实验的代表性图像和统计分析。数值表示为平均值±标准偏差*经Student t检验,P<0.05。
图4。
图4。
RasGRF2有助于体内CRC细胞迁移。(a) 注射对照组和RasGRF2增强HCT116细胞的小鼠的Kaplan-Meier生存曲线。n、 每组使用的小鼠数量。(b) 用苏木精和伊红(H&E)对接种对照细胞和RasGRF2敲除细胞的小鼠的荷瘤肺组织切片进行染色。使用RasGRF2和MMP9抗体进行IHC染色。
图5。
图5。
RasGRF2调节的MMP9表达依赖于Src/PI3K/Akt/NF-κB信号通路。下调RasGRF2的CRC细胞中各种信号蛋白磷酸化状态的Western blot分析。GAPDH被用作总蛋白的内部对照。

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引用人

工具书类

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