生物协议。2022年9月5日;12(17): e4504(电子4504).
重复有丝分裂早期DNA合成的显微检测拉科人类细胞中的序列
,1,2 ,三和三,* 吉田和泽(Kazumasa Yoshida)
1日本福冈福冈大学医学院细胞生物学系
2日本福冈福冈大学高级分子医学研究所
石本理子
三日本福冈九州大学药物科学研究生院细胞生物化学系
藤田正人
三日本福冈九州大学药物科学研究生院细胞生物化学系
1日本福冈福冈大学医学院细胞生物学系
2日本福冈福冈大学高级分子医学研究所
三日本福冈九州大学药物科学研究生院细胞生物化学系
通讯作者。 2022年5月6日收到;2022年7月20日修订;2022年8月3日验收。
版权©2022作者;独家许可证持有者Bio-protocol LLC。 摘要
在人类细胞周期中,DNA的完全复制是维持基因组完整性的基本过程。复制应激干扰复制分叉的进展,导致难以复制的区域在有丝分裂开始之前一直处于低复制状态。在早期有丝分裂中,同源定向修复DNA合成,称为有丝分裂DNA合成(MiDAS),被触发以完成DNA复制。在这里,我们提出了一种检测人类U2OS 40-2-6细胞中MiDAS的方法拉科整合到人类染色体中的序列会引起复制应激和伴随的不完全复制拉科数组。BrdU和LacI蛋白的免疫染色用于早期有丝分裂中DNA合成的可视化和拉科数组。该方案的建立仅使用常见的免疫染色方法即可在特定位点轻松检测MiDAS,并可用于研究其他标记有位点特异性结合蛋白的难以复制区域。
关键词:DNA复制, 复制压力, DNA修复, 有丝分裂, MiDAS公司, 重复DNA, 溴化铀, 免疫荧光
材料和试剂
Lab-Tek II,4孔室玻璃载玻片(Thermo Fisher,Nunc,目录号:154526)
腔室拆卸工具(包括腔室滑块)
玻璃科普林罐,5片式(AsOne,目录号:4-567-01)
注射过滤装置,PES 0.22μm(Merk Millipore,目录号:SLGPR33RS)
注射过滤装置,PVDF 0.45μm(Merk Millipore,目录号:SLHVR33RS)
矩形盘(Eiken Chemical,目录号:AW2000)
棉签
纸巾(日本Crecia纸巾,目录号:37105)
玻璃盖玻片,24×60 mm(松下玻璃,目录号:C024601)
指甲油(透明面漆)
人细胞系U2OS 40-2-6(Ishimoto等人,2021年),一种携带拉科阵列和ERT2段-U2OS 2-6-3细胞产生的LacI基因(Janicki等人,2004年). U2OS 40-2-6单元和原始U2OS 2-6-3单元包含大约200个拷贝的256个数组拉科重复(大约50000份拉科序列总数)。该阵列稳定地整合到1号染色体的1p36染色体位点中。 Dulbecco改良Eagle's培养基(D-MEM)(含L-谷氨酰胺的高糖)(例如Wako,目录号:043-30085)
胎牛血清(FBS)(例如,Nichirei,目录号:175012)
RO-3306(例如,Sigma-Aldrich,目录号:SML0569)
4-羟氨苄(4-OHT)(例如,Abcam,目录号:ab141943)
乙醇(例如,Nacalai Tesque,目录号:14713-53)
10×磷酸盐缓冲盐水(PBS)(例如Wako,目录号:048-29805),稀释至1×
溴脱氧尿苷(BrdU)(例如,Sigma-Aldrich,目录号:B5002)
盐分(例如大冢正常盐分、大冢制药)
管道(例如,Dojindo,目录号:347-02224)
0.1 M EGTA-2Na溶液(例如,Nacalai Tesque,目录号:37346-05)
Triton®声波风廓线仪X-100(例如Wako,目录号:169-21105)
氯化镁2(例如,Wako,目录编号:133-00165)
37%甲醛溶液(例如Nacalai Tesque,目录号:16223-55)
硫柳汞(例如Nacalai Tesque,目录号:21624-74),用水溶解至10%(w/v)
Alexa 594驴抗兔IgG(分子探针,目录号:A21207)
甲醇(例如,Nacalai Tesque,目录号:21915-93)
HCl(例如Wako,目录号:080-01066),稀释至1 M
小鼠抗BrdU抗体,克隆号:3D4(BD Pharmingen,目录号:555627)
Alexa 488山羊抗鼠IgG抗体(分子探针,目录号:A11029)
4',6-二氨基-2-苯基吲哚(DAPI)(例如,Wako,目录号:043-18804)
Fluoro-KEEPER防褪色试剂(Nacalai-Tesque,目录号:12593-64)
RO-3306储备溶液(见配方)
4-OHT原液(见配方)
BrdU原液(见配方)
PTEMF缓冲区(见配方)
抗体工作液的FBS(见配方)
抗体工作溶液(见配方)
DAPI原液(见配方)
注:在我们的实验室中,我们通常使用DAPI、Alexa 488和Alexa 594对DNA和两种感兴趣的蛋白质进行三重染色。可能存在其他荧光团组合。
设备
细胞培养箱(ASTEC,型号:SCA-165D)
吸水器(例如FLINN scientific,型号:AP1136)
宽视野荧光显微镜,配备冷却CCD摄像机、LED照明源和滤光片,用于拍摄Alexa 488、Alexa 594和DAPI(例如,Keyence、BZ-X700)。类似的传统荧光显微镜也适用。
40×物镜[例如,尼康,CFI(无色差无限大)平面Apoλ40×/0.95 NA]。也可以使用放大倍数更高的物镜,例如63倍透镜。
软件
显微镜操作软件(例如,Keyence,BZ-X查看器软件)
程序
细胞同步化和诱导LacI结合
平板U2OS 40-2-6细胞,4×104细胞置于0.5 mL D-MEM培养基中,每孔4孔室载玻片补充8%FBS,使细胞第二天融合50%-60%。
在含有5%CO的细胞培养箱中培养细胞2在37°C下过夜。
将RO-3306添加到每个孔中添加8%FBS的D-MEM培养基中,使最终浓度达到7μM。
(可选)为了诱导S相中的LacI结合,添加4-OHT至最终浓度1μM。
注:S期LacI结合诱导额外的复制应激;然而,它不会增加MiDAS的频率,可能是因为MiDAS容量有限(Ishimoto等人,2021年).
在37°C下用RO-3306培养细胞20小时,以使细胞在G2晚期同步。
培养16小时后,为了在G2期诱导LacI结合,添加4-OHT至1μM的最终浓度(在RO-3306存在下用4-OHT处理4小时),用于剩余的4小时RO-3306。
释放到有丝分裂中并用BrdU标记
培养20小时后,细胞现在处于G2晚期。
用1 mL 1×PBS清洗细胞三次,预热至37°C,以去除RO-3306。
添加0.5 mL预先加热的D-MEM培养基,补充8%FBS。
同时,将BrdU添加到最终浓度10μM,以标记新生DNA。
在37°C下培养细胞20分钟,使细胞进入前期。
注意:快速清洗和处理细胞,以限制暴露在室温(RT)下,这可能会干扰细胞周期的进展。预温PBS和D-MEM至37°C对于快速同步进入有丝分裂也至关重要.
LacI的细胞固定、渗透和免疫染色
用带有黄色尖端(200μL)的吸水器轻轻去除生长介质。
小心地向每个孔中添加1mL冰镇PBS。
轻轻地去除PBS,并小心地加入1mL PTEMF缓冲液,以同时固定和透化细胞。
室温下培养20分钟。
吸入PTEMF缓冲液并从玻璃滑块上拆卸腔室。拆卸时小心不要使电池变干。
注:玻璃载玻片可以用手搬运,但应使用镊子从科普林罐中的溶液中取出并转移载玻片。
通过将载玻片浸入含有50mL冰冷PBS的Coplin罐中洗涤载玻片,三次,每次5分钟。
将载玻片面朝上放置在一个矩形盘子中,并用棉签清除水井周围疏水区域中多余的PBS。不要让细胞变干。
向每个孔中添加95μL主要抗LacI抗体溶液(稀释1:500,见配方)。
关闭矩形培养皿的盖子,在室温下培养1小时。
在纸巾上倾斜载玻片,轻轻排空抗体溶液。
用冰镇PBS在Coplin罐中清洗载玻片三次,每次5分钟。
将载玻片面朝上放在长方形盘子中,用棉签去除多余的PBS。不要让细胞变干。
向每个孔中添加95μL Alexa 594二次抗兔抗体溶液(1:1000稀释,见配方)。
关闭矩形培养皿,在室温下培养1小时。
从现在开始,将样品遮住,避免荧光染料的光漂白。
BrdU的复性、DNA变性和免疫染色
在纸巾上倾斜载玻片,轻轻排空抗体溶液。
用50毫升冰镇PBS在科普林瓶中清洗载玻片,每次清洗三次,每次5分钟。
将载玻片浸入含有100%甲醇的科普林罐中(在-30°C的冷冻柜中预冷过夜),在工作台上(室温下)浸泡10分钟,以重新放置样品。
用50毫升冰镇PBS在科普林瓶中清洗载玻片,每次清洗三次,每次5分钟。
为了使DNA变性,将载玻片在含有50 mL 1M HCl的Coplin罐中在室温下浸泡15分钟。
注:BrdU的免疫染色需要DNA变性;然而,过多的HCl处理可能会导致步骤E3的DAPI染色较弱。
在Coplin罐中用冰镇PBS清洗载玻片三次,每次5分钟。
将载玻片面朝上放在长方形盘子中,用棉签去除多余的PBS。不要让细胞变干。
向每个孔中添加95μL初级抗BrdU抗体溶液(稀释1:200,见配方)。
关闭矩形培养皿,在室温下培养1小时。
在纸巾上倾斜载玻片,轻轻排空抗体溶液。
在Coplin罐中用冰镇PBS清洗载玻片三次,每次5分钟。
将载玻片面朝上放在长方形盘子中,用棉签去除多余的PBS。不要让细胞变干。
向每个孔中添加95μL Alexa 488次级抗鼠抗体溶液(稀释为1:1000,见配方)。
关闭矩形培养皿,在室温下培养1小时。
DAPI染色和安装
在纸巾上倾斜载玻片,轻轻排空抗体溶液。
在Coplin罐中用50mL冰冷的PBS洗涤载玻片,三次,每次5分钟。
将载玻片在装有DAPI工作溶液(0.2μg/mL,避光)的Coplin罐中,在室温下浸入PBS中15分钟。
用50毫升冰镇PBS在科普林瓶中清洗载玻片,每次清洗三次,每次5分钟。
将载玻片面朝上放在纸巾上,用棉签去除多余的PBS,注意防止细胞变干。
在玻片的每个孔中添加一滴Fluoro-KEEPER防褪色试剂。
使用玻璃盖玻片安装,确保避免出现气泡。
擦去盖玻片边缘多余的Fluoro-KEEPER防褪色试剂。
在盖玻片边缘用指甲油密封,让其干燥并在室温下固化至少2小时或一夜。
进行显微镜检查或将载玻片在4°C下保存1-2个月,并避光保存。
图像采集
使用荧光显微镜对载玻片进行成像。
使用DAPI通道找到包含前期/中期细胞的区域,并使用Alexa 594通道聚焦LacI病灶。
在相同的场位置连续采集每个通道(DAPI、Alexa 488和Alexa 594)的图像,而不改变焦距().
有丝分裂DNA合成的代表性图像拉科数组。白色箭头表示LacI和BrdU的共定位。比例尺=10μm。
评估MiDAS在拉科阵列,计算BrdU病灶与拉科数组。具有LacI焦点的前期/前期细胞核的数量和BrdU信号在LacI焦点上形成焦点的细胞核的频率被手动评分。尽管在这种情况下前期/前中期细胞富集,但BrdU病灶与拉科病灶可见于早期/中期和中期细胞。相反,正如之前报道的那样,在G2阳性细胞(未从RO-3306中释放)中未检测到BrdU掺入(Ishimoto等人,2021年).
注:这些图像应与没有BrdU标记的对照分析进行比较(,底部)以确认BrdU信号的特异性。
食谱
RO-3306原液
将RO-3306溶解在二甲基亚砜中,使其储存浓度达到1 mM,并将等分样品储存在-80°C下。使用前预热至37°C。
4-OHT储备溶液
将4-OHT溶解在100%乙醇中,使其储备浓度达到125μM,并将等分样品储存在-30°C下。使用前预热至37°C。
BrdU原液
将BrdU溶解在盐水中,使其储备浓度达到10 mg/mL(32.5 mM),并将等分样品储存在-80°C下。
PTEMF缓冲器
20 mM管道,pH 6.8
10毫米EGTA
0.2%Triton®声波风廓线仪X-100
1 mM氯化镁2
4%甲醛
注:制备不含甲醛的溶液,用0.22μm过滤器过滤,并在4°C下储存。每次实验新鲜加入甲醛。
抗体工作液FBS
将硫柳汞添加到FBS中,浓度为0.1%,并用0.45μm过滤器过滤。储存在4°C或-30°C下,以便长期储存。
抗体工作溶液
将抗体在1×PBS中稀释,加入10%的FBS。为每个实验重新准备。
LacI的检测
一抗:兔抗LacI,1:500
二级抗体:Alexa 594抗兔,1:1000
BrdU的检测
一抗:小鼠抗BrdU,1:200
二级抗体:Alexa 488抗小鼠,1:1000
DAPI储备溶液
将DAPI溶于水中,浓度为1 mg/mL,避光。储存温度为-30°C。
引用
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