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氧化介质细胞Longev。2022; 2022: 9925919.
2022年5月11日在线发布。 数字对象标识:10.1155/2022/9925919
预防性维修识别码:PMC9117021型
PMID:35602105

阿帕替尼通过调控VEGFR2/Nrf2通路诱导胶质瘤细胞铁凋亡

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补充资料
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摘要

背景

胶质瘤是一种常见的脑源性肿瘤,分子靶向治疗是胶质瘤的重要治疗方式之一。阿帕替尼是一种小分子酪氨酸激酶抑制剂,广泛用于胶质瘤的治疗。然而,潜在的分子机制仍然难以捉摸。最近,新的证据证明了铁下垂的显著抗癌作用。本研究探讨了阿帕替尼抑制胶质瘤细胞增殖的一种新的铁凋亡相关机制,为进一步研究阿帕替宁对肿瘤细胞的抑制作用奠定了基础。

方法

用阿帕替尼治疗人脑胶质瘤U251和U87细胞系及正常星形胶质细胞。测定细胞凋亡、细胞周期、凋亡和增殖。建立裸鼠异种移植模型,检测肿瘤生长率。收集肿瘤组织以评估铁下垂水平,并确定用阿帕替尼治疗后的相关途径。

结果

用阿帕替尼治疗可通过在体内外诱发铁下垂,导致胶质瘤细胞的细胞活力丧失,而正常星形胶质细胞则没有。研究还表明,阿帕替尼通过抑制核因子-红细胞样2相关因子2/血管内皮生长因子受体2(Nrf2/VEFGR2)通路的激活,触发了胶质瘤细胞的铁下垂。Nrf2的过度表达挽救了阿帕替尼的治疗效果。

结论

我们的研究证明,阿帕替尼通过抑制VEGFR2/Nrf2/Keap1通路的激活,诱导细胞凋亡,从而抑制胶质瘤细胞的增殖。Nrf2的过度表达可以抵消阿帕替尼诱导的铁凋亡。

1.背景

胶质瘤是一种全球知名的原发性恶性肿瘤,其特点是预后差,死亡率高[1,2]. 诱导肿瘤细胞死亡是肿瘤治疗的主要选择。脱铁症是一种由致命的脂质过氧化引起的铁依赖性调节细胞死亡[]. 最近,一些学者指出,与正常组织相比,胶质瘤组织中铁代谢相关蛋白的表达水平和铁相关酶的活性升高[4]. 然而,目前对胶质瘤中铁下垂的诱导因素和相应的结果知之甚少。

阿法替尼是一种血管内皮生长因子受体2(VEGFR-2)抑制剂,成功用于治疗多种类型的癌症[5,6]. 阿帕替尼具有不同机制的抗血管生成和抗癌活性。例如,阿帕替尼治疗可以抑制细胞生长和转移,并增强替莫唑胺在胶质瘤中的抗肿瘤活性[7]. 然而,阿帕替尼的疗效尚未得到充分证明。已经证实,阿帕替尼可以通过诱导谷胱甘肽过氧化物酶4-(GPX4-)介导的铁下垂来抑制胃癌细胞的增殖[8]. 然而,阿帕替尼治疗胶质瘤的潜在机制尚不清楚。

在本研究中,我们探讨了阿帕替尼抑制胶质瘤细胞增殖的机制。研究发现,阿帕替尼在体内外均可通过诱导细胞凋亡,将细胞周期阻滞在G0/G1期,抑制胶质瘤细胞的增殖。值得注意的是,核因子-红细胞样2相关因子2(Nrf2)通路与铁凋亡密切相关。许多学者证实,Nrf2相关的抗氧化应激在抑制铁凋亡中起着关键作用[9]. 事实上,我们表明,阿帕替尼抑制Nrf2通路的激活,从而诱导铁凋亡。因此,Nrf2的过度表达可以逆转阿帕替尼对胶质瘤细胞增殖的抑制和对细胞凋亡的诱导。因此,我们的研究揭示了阿帕替尼抑制胶质瘤细胞增殖的一种新的铁凋亡相关机制,这有助于进一步研究阿帕替尼对肿瘤细胞的抑制作用。

2.材料和方法

2.1. 细胞系和药物或质粒的转染

人脑胶质瘤U251和U87细胞来自Procell Life Science&Technology Co.,Ltd.(中国武汉)。细胞在添加了10%胎牛血清(FBS)(Gibco)和1%青霉素-链霉素溶液(Gibco-)的Dulbecco改良Eagle's培养基(DMEM;Gibco,Grand Island,NY,USA)中培养。根据制造商的方案,在胶质瘤细胞达到50%融合后,转染阿帕替尼。对于质粒转染,根据制造商的协议,使用Lipofectamine 2000试剂(Invitrogen,Carlsbad,CA,USA)接种细胞,并在质粒达到70%融合时转染质粒。

2.2. 细胞计数试剂盒-8(CCK-8)检测

采用CCK-8分析评估细胞活力。简单地说,将处于对数生长期的U251/U87细胞以5×103个细胞/孔的密度接种到96 well板中。同时,设对照组,对照组在37°C(100μ将L无菌磷酸盐缓冲盐水(PBS)加入井内)。然后分别用阿帕替尼处理细胞24、48和72小时。之后,10μ向每个孔中加入L CCK-8溶液(MCE,美国),并在37°C下培养4h;每个孔的吸光度值由miroplate阅读器在450nm波长下测定。

2.3. 细胞周期测定

将对数生长期的U87和U251细胞密度调节为1×105个/mL,然后将细胞接种到6孔板中。细胞粘附到细胞壁上后,丢弃原始培养基,并对细胞进行处理。然后在37°C的培养箱中,在5%CO2的存在下培养细胞72小时。随后,去除上清液,用PBS清洗细胞两次。700 μ缓慢添加L预冷的80%乙醇,直至最终浓度为70%,并将细胞固定在4°C下4小时以上。随后,以1500 rpm离心细胞5分钟,并在37°C下培养RNase(1 mg/mL)30分钟。10μ碘化丙酸(PI,400μ添加g/mL)溶液,在4°C下黑暗染色30 min,并进行流式细胞术。

2.4. 活性氧(ROS)、丙二醛(MDA)、谷胱甘肽(GSH)、乳酸脱氢酶(LDH)和铁的检测

将处于对数生长期的U87和U251细胞的密度调整为1×105个细胞/mL,然后将细胞接种到6孔板中,每个孔中有2mL细胞悬浮液。对于ROS检测,根据制造商的说明,使用DCFH-DA细胞ROS检测试剂盒(分类号S0033;Beyotime Biotechnology,中国上海)通过流式细胞术分析处理过的细胞。对于MDA检测,根据制造商的方案,通过MDA检测试剂盒(目录号S0131S;Beyotime Biotechnology)分析处理的细胞。对于GSH检测,根据制造商的说明,使用GSH检测试剂盒(分类号A006-1;中国南京建成生物工程研究所)对处理过的细胞进行分析。对于LDH检测,根据制造商的说明,使用LDH检测试剂盒(分类号A020-1;南京建成生物工程研究所)对处理过的细胞进行分析。为了进行铁检测,使用铁检测试剂盒(分类号A039-1;南京建成生物工程研究所)和使用的pcDNA3.1载体(分类号V38520;Invitrogen™)对处理过的细胞进行分析。

2.5. 西方印迹法

将全细胞蛋白提取物在裂解缓冲液中均质,并在12000×g下离心15分钟。使用BCA蛋白检测试剂盒测量蛋白质浓度。蛋白质裂解物在10%十二烷基硫酸钠(SDS-)聚丙烯酰胺凝胶上分离,然后转移到聚偏氟乙烯(PVDF)膜上(Millipore,Bedford,MA,USA)。在室温下用5%牛血清白蛋白(BSA)封闭1.5小时后,PVDF膜与一级抗体在4°C下孵育过夜。清洗后,PVDF膜与与辣根过氧化物酶结合的相应二级抗体孵育。使用商业ECL套件检测信号(美国马萨诸塞州沃尔瑟姆的赛默飞世尔科学公司)。抗甘油醛3-磷酸脱氢酶(GAPDH)(分类号26415-1-AP)购自Proteintech(美国伊利诺伊州芝加哥)。从Affinity Biosciences(俄亥俄州辛辛那提市,美国)购买了抗-GPX4(产品目录号DF6701)、抗SLC7A11(产品目录编号DF12509)和inti-phospho-VEGFR2(产品目录号码AF3279)。Anti-KEAP1(产品目录号GTX60660)购自GeneTex Inc.(美国加利福尼亚州欧文市)。Anti-NRF2(分类号Ab137550)从Abcam(英国剑桥)购买。

2.6. 苏木精-伊红(HE)染色和免疫组织化学

裸鼠脑胶质瘤在4°C的10%多聚甲醛中固定12 h,然后在不同浓度的乙醇中脱水。肿瘤组织用二甲苯渗透并包埋在石蜡中。然后将其切片(0.5μm) ,再水化,在4°C下用HE染色10分钟并密封。对于胶质瘤中Ki-67的IHC评估,使用了DAKO Envision系统(DAKO;Agilent Technologies,Inc.)。简单地说,将胶质瘤石蜡包埋切片在60°C下加热,然后与Ki-67(1:1000;猫。编号ab279653;Abcam)在4°C下过夜。然后用生物素标记的二级抗体(1:1000;猫。编号:ab205718;Abcam)在37°C下放置20分钟。为了评估Ki67,在光学显微镜下计算三个代表性高染色区域的阳性细胞数量。

2.7. 动物研究

雌性BALB/c裸鼠(年龄,4周龄)购自常州Cavens实验动物有限公司(中国常州)。本研究中的实验程序是根据我们的动物实验机构指南进行的,该方案得到了浙江省肿瘤医院(中国杭州)动物护理和使用机构委员会的批准。

2.8. 统计分析

数据表示为三个独立分析的平均值(SEM)的平均值±标准误差。学生的t吨-使用GraphPad Prism 6.0软件(GraphPadSoftware Inc.,San Diego,CA,USA)进行测试,以分析不同组之间的差异。一条双尾蛇P(P)<0.05被认为具有统计学意义(P(P)< 0.05,∗∗P(P)<0.01,以及∗∗∗P(P)< 0.001).

3.结果

3.1. 阿帕替尼通过诱导胶质瘤细胞铁凋亡导致细胞活力丧失

本研究中使用了胶质瘤U251和U87细胞系。在用阿帕替尼处理24、48和72小时后,U251和U87细胞的存活率显著降低,并且在72小时时效果最显著(图1(a)和1(b))。因此,选择用阿帕替尼治疗72小时进行进一步研究。用光学显微镜观察细胞形态。阿帕替尼处理72小时后,U251细胞形态紊乱,边缘模糊(图1(c)),观察到圆形U87细胞(图1(d)). 流式细胞术显示G0/G公司1相增加,S相减少,G相2/M相略有下降或保持不变(图1(e)–1(h)),表明U251和U87细胞的细胞周期进程在G0/G公司1阶段。用阿帕替尼处理72小时后,U251和U87细胞上清液中的LDH水平显著升高,表明细胞受损(图1(i)和(j))。

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阿帕替尼诱导细胞活力丧失并促进细胞周期阻滞0/G1相。(a) CCK-8分析显示,用阿帕替尼处理24、48和72小时后,U251细胞的存活率。(d) 光学显微镜下U87细胞形态的代表性图像。(e,f)无或存在阿帕替尼72小时后U251和U87细胞周期分析的代表性直方图。(h) –(k)用阿帕替尼治疗72小时后,对U251和U87细胞的细胞周期相进行定量分析。(i,j)未经处理的U251和U87细胞上清液中以及用阿帕替尼处理72小时后72小时的LDH水平。P(P)< 0.05;∗∗P(P)< 0.01.

此外,用阿帕替尼治疗72小时后,U251和U87细胞中的活性氧水平显著增加(图2(a)–2(d))。此外,MDA水平(图2(e)和2(f))和Fe(图2(克)和2(h))增加,谷胱甘肽水平(图2(i)用阿帕替尼处理72 h后,U251和U87细胞中2(j))和2(j。考虑到铁水平的增加,我们检查了细胞的铁下垂状态。研究发现,在用阿帕替尼处理72小时后,U251和U87细胞中GPX4和SLC7A11的表达水平均降低(图2(k)和2(l)),表明铁下垂的诱导。

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阿帕替尼诱导胶质瘤细胞的铁凋亡。所有数据均指存在和不存在阿帕替尼的72小时。(a) DCFH-DA染色U251细胞的流式细胞术代表直方图。(b) DCFH-DA染色U251细胞平均荧光强度的折叠变化。(c) DCFH-DA-染色U87细胞的流式细胞术代表直方图。(d) DCFH-DA-染色U87细胞平均荧光强度的折叠变化。(e,f)U251和U87细胞中的MDA水平。U251和U87细胞中的(g,h)铁水平。(i,j)U251和U87细胞中的谷胱甘肽水平。(k,l)Western blotting检测U251和U87细胞中GPX4和SLC7A11的水平。(m,n)Western blotting检测U251和U87细胞中Keap1、Nrf2、p-VEGFR2和VEGFR2的表达水平。P(P)< 0.05;∗∗P(P)< 0.01.

3.2. 阿帕替尼通过调控VEGFR2/Nrf2/Keap1通路诱导铁凋亡

接下来,我们研究了阿帕替尼是否影响了参与铁凋亡诱导的调控途径,尤其是VEGFR2/Nrf2/Keap1途径。结果表明,用阿帕替尼处理72 h后,U251和U87细胞中Keap1和VEGFR2的表达水平增加,而Nrf2和p-VEGFR2表达水平下降(图2(米)和2(n))。为了确定Nrf2是否参与U251和U87细胞对阿帕替尼治疗的反应,对过度表达Nrf2的细胞进行了进一步分析。结果表明,在用阿帕替尼治疗24、48和72小时后,过度表达Nrf2的U251和U87细胞的存活率显著增加(图3(a)与转染空载体的细胞相比,72h后增加最显著。阿帕替尼治疗组U251细胞形态紊乱,边缘模糊,而Nrf2过表达组则趋于正常,边缘清晰(图3(c)). 在U87细胞中观察到相同的趋势(图3(d)). 流式细胞术显示细胞周期在G0/G公司1期,S期减少,G期无明显变化2/用阿帕替尼处理72h后的M期,表明阿帕替尼可阻断G期细胞的生长0/G公司1阶段。Nrf2过度表达后,G0/G公司1U87细胞在S期细胞周期增加,表明抑制细胞生长的作用减轻。然而,U251细胞的结果显示,用阿帕替尼处理的Nrf2过表达细胞和非过表达细胞之间没有任何相关差异(图3(e)–3(h))。此外,LDH水平(图4(a)和4(b)),ROS(图4(c)–4(f)),MDA(图4(克)和4(h))和Fe(图5(a)和5(b))显著升高,而GSH水平(图5(c)用阿帕替尼处理U251和U87细胞72h后,5(d)和5(b))含量下降,表明细胞受到损伤。在阿帕替尼治疗的基础上,Nrf2的过表达可以降低阿帕替尼治疗的效果,从而减少细胞损伤。此外,在阿帕替尼处理的细胞中,Nrf2的过度表达增加了GPX4和SLC7A11的表达水平(图5(e)和5(f))。此外,Nrf2过度表达可消除Apatinib激发的胶质瘤细胞中Nrf2和磷酸化VEGFR2的减少以及Keap1的增加(图5(克)和5(h))。这些结果表明,阿帕替尼可以通过调控VEGFR2/Nrf2通路抑制胶质瘤细胞的增殖,促进细胞凋亡。

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Nrf2的过度表达可恢复细胞活力的丧失和细胞周期在G0/G公司1阿帕替尼诱导期。所有数据均涉及转染空载体(NC)并过度表达Nfr2的U251和U87细胞。(a,b)CCK-8分析显示用阿帕替尼处理24、48和72小时后的细胞活力。(c,d)光学显微镜下细胞形态的代表性图像。(e,g)用阿帕替尼治疗72小时后细胞周期分析的代表性直方图。(f,h)用阿帕替尼治疗72小时后细胞周期相的定量分析。P(P)< 0.05;∗∗P(P)< 0.01.

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Nrf2的过度表达可逆转阿帕替尼诱导的铁凋亡。所有数据均指用空载体(NC)转染的U251和U87细胞,在有或无阿帕替尼的情况下治疗72小时后过度表达Nfr2。(a,b)细胞上清液中的LDH水平。(c) DCFH-DA染色U251细胞的流式细胞术代表直方图。(d) DCFH-DA染色U251细胞平均荧光强度的折叠变化。(e) DCFH-DA-染色U87细胞的流式细胞术代表直方图。(f) DCFH-DA-染色U87细胞平均荧光强度的折叠变化。(g,h)MDA细胞水平。P(P)< 0.05;∗∗P(P)< 0.01.

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Nrf2过度表达可逆转铁的增加、GSH、GPX4和SLC/A11的减少以及阿帕替尼诱导的VEGFR2/Nrf2/Keap1通路成分表达的变化。(a,b)铁水平;(c,d)谷胱甘肽水平;(e,f)GPX4和SLC7A11的表达水平;U251和U87中Keap1、Nrf2、p-VEGFR2和VEGFR2的(g,h)表达水平。P(P)< 0.05;∗∗P(P)< 0.01.

3.3.在体内实验证实阿帕替尼能促进胶质瘤细胞的铁凋亡

使用裸鼠异种移植物模型进一步验证了我们的结果。裸鼠肿瘤体积逐渐增大。与对照组相比,在用阿帕替尼治疗后的每个时间点,肿瘤体积都显著减小(图6(a)和6(b))。与对照组相比,阿帕替尼治疗组的肿瘤重量较轻(图6(c)). 与对照组相比,用阿帕替尼治疗后肿瘤细胞的增殖明显减少。阿帕替尼治疗组出现核固缩和纤维瘤组织(图6(d)). Ki67阳性肿瘤细胞的百分比显著降低,表明细胞增殖受到抑制(图6(e)). 此外,肿瘤组织中的ROS、MDA和Fe水平显著升高,而用阿帕替尼治疗后GSH水平显著降低,表明肿瘤细胞受到了损伤(图6(f)–6(i))。肿瘤组织的Western blotting显示,用阿帕替尼治疗后,GPX4和SLC7A11的表达水平下调(图6(j)). 阿帕替尼治疗组Keap1和VEGFR2的表达水平增加,而Nrf2和p-VEGFR2表达水平降低(图6(k)). 上述结果表明,阿帕替尼可促进胶质瘤细胞的铁凋亡体内.

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阿帕替尼促进体内胶质瘤细胞的铁下垂。(a) 裸鼠皮下肿瘤图像。(b) 皮下肿瘤的生长曲线。(c) 皮下肿瘤的重量。(d) 皮下肿瘤的典型苏木精-伊红(HE)染色图像。(e) 使用皮下肿瘤的Ki67的代表性免疫组织化学图像。阿帕替尼治疗对皮下肿瘤、ROS(f)、MDA(g)、Fe(h)和GSH(i)水平、GPX4和SLC7A11(j)表达水平以及Keap1、Nrf2、p-VEGFR2和VEGFR2(k)表达水平的影响。P(P)< 0.05;∗∗P(P)< 0.01.

4.讨论

胶质瘤是一种常见的脑源性肿瘤,分子靶向治疗是胶质瘤的重要治疗方式之一[10]. 阿帕替尼是一种小分子酪氨酸激酶抑制剂,广泛用于治疗胶质瘤[7,11,12]. 例如,阿帕替尼可以通过诱导凋亡和自噬来抑制胃癌细胞的生长[13]. 然而,潜在的分子机制仍然很神秘。诱导肿瘤细胞死亡是癌症治疗的主要选择。最近,铁下垂被证明是一种新型的调节性细胞死亡,可能由铁依赖性脂质过氧化引起[14]. 触发肿瘤细胞的铁下垂已被证实是一种有效的抗癌方法[15].

在本研究中,我们试图探讨铁下垂在阿帕替尼参与的抗癌机制中的作用。我们首先证明了阿帕替尼可以抑制神经胶质瘤细胞的生长。研究表明,高活性氧水平会增加细胞内铁水平和铁凋亡[16]. 例如,RSL3可以通过使GPX4失活并产生ROS来驱动铁下垂[17]. 测量了ROS和Fe的水平,以及典型的脱铁性贫血的细胞变化,表明阿帕替尼治疗使神经胶质瘤细胞发生这种类型的调节性死亡。

许多学者指出Keap1/Nrf2信号通路可以调节铁凋亡的激活[18]. 例如,HMGB1可以通过激活系膜细胞中的Keap1/Nrf2信号通路来调节铁下垂[19]. 此外,Nrf2过表达或Keap1敲除可加速胶质瘤细胞的增殖和致癌转化[20]. Nrf2-Keap1通路也被证明可以减少铁凋亡[21,22]. 为了探讨阿帕替尼调节铁下垂的潜在机制,我们测定了阿帕替宁治疗胶质瘤细胞中Nrf2的表达水平。这个在体外体内结果表明,用阿帕替尼处理的细胞和肿瘤组织中,Nrf2和p-VEGFR2的表达水平降低。此外,在阿帕替尼治疗组中,Nrf2的过度表达可以逆转阿帕替宁诱导的铁下垂和抑制细胞增殖。这些结果表明,阿帕替尼可以通过调节Keap1/Nrf2信号通路促进胶质瘤细胞的铁凋亡。

5.结论

总之,我们的研究表明,阿帕替尼可以通过诱导铁凋亡抑制胶质瘤细胞的增殖。就潜在机制而言,已经证明Keap1/Nrf2信号通路介导了这一过程。因此,本研究结果揭示了阿帕替尼抑制胶质瘤细胞增殖的新机制,为进一步研究阿帕替布对肿瘤细胞的抑制作用奠定了基础。

致谢

本研究得到浙江省医学科技项目(批准号:2018KY291、2018KYS92、2019RC127、2017KY260)、国家自然科学基金(批准号81502147)、浙江省中医药科技计划(批准号2016ZA039、2021ZB036)、,浙江省自然科学基金(批准号:LY21H160007、Y21H16000、LQ18H290002、LQ20H290001、LQ21H16006)、苏州市青年科技项目(批准号KJXW2020067)、浙江省肿瘤医院青年科技创新基金(批准编号:QN201402、QN201902)、,第三届“浙江省新型医学人才工程”

缩写

VEGFR-2:血管内皮生长因子受体2
GPX4:谷胱甘肽过氧化物酶4
二甲醚:Dulbecco改良的Eagle's培养基
联邦统计局:胎牛血清
HMGB1:高迁移率组蛋白1。

数据可用性

作者确认,支持本研究结果的数据可在文章中找到。

道德认可

中国医学科学院肿瘤医院伦理委员会批准了该研究方案。动物实验严格按照动物实验机构指南进行,并得到浙江省肿瘤医院(中国杭州)动物护理与使用机构委员会的批准。

同意

所有作者都报告说,没有与手稿有关的任何披露。

利益冲突

提交人声明不存在利益冲突。

作者的贡献

CXS和LX构思了该项目,并参与了研究设计、实验室过程监督、分析和结果解释。MJG构思了这项研究。YFZ和LX参与了研究设计和手稿起草。ZW和BW执行了在体外实验和数据分析。SYZ、LWL、KJ和BW参与了数据解释,并对手稿进行了批判性审查。所有作者都阅读并批准了最终的手稿。梁霞、龚明杰和邹仰凡对本研究做出了同样的贡献。

补充资料

补充资料

图形摘要阿帕替尼通过抑制Nrf2/VEFGR2通路的激活而诱导胶质瘤细胞的铁下垂,从而导致胶质瘤细胞活性的丧失。

工具书类

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