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.1998年11月;72(11):9323-8.
doi:10.1128/JVI.72.11.9323-9328.1998。

EBER基因:裂解病毒复制过程中的差异调节

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EBER基因:裂解病毒复制过程中的差异调节

N格雷芬格等。 J维罗尔. 1998年11月.

摘要

在每个潜伏感染EB病毒的细胞中,病毒基因EBER-1和EBER-2通过聚合酶III转录。在体内的溶血感染细胞中,EBER基因无法检测到。然而,在细胞培养中,下调不能被证实,因此这种关闭与病毒复制的相关性尚不清楚。我们用富集的溶血感染细胞通过核连载试验检测了EBER基因的转录活性,并证明在转换为溶血病毒复制期间,EBER-1和EBER-2在转录水平上受到不同程度的下调。这种下调是病毒裂解复制过程中的早期事件。

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数字

图1
图1
各种化学处理诱导的溶血感染P3HR1/13细胞的百分比。用TPA-BA(泳道1、7和13)、IUdR(泳道2、8和14)、TGF-β(泳道3、9和15)、TPA–BA–TGF-β(泳道4、10和16)、IUdR–TGF-β(泳道5、11和17)或TPA–BA–IUdR–TGF-β(泳道6、12和18)处理P3HR1/13细胞,并在24、48和72小时后测定裂解感染细胞的百分比。(A)5×105在每个时间点采集细胞,用聚丙烯酰胺凝胶电泳和Western blotting检测蛋白提取物,用单克隆抗体检测Zta和gp350/220。gp350/220特异性单克隆抗体mab-64D7产生了一个双谱带,该双谱带的迁移速度总是比标准谱带快,可能是因为糖基化严重。(B) 免疫荧光分析。显示gp350/220阳性细胞的百分比。(C) 5×105在每个时间点采集细胞,并用gp350/220特异性单克隆抗体mab-64D7进行FACS分析。每组右上象限的细胞被视为阳性;右下象限的人被认为是阴性的。左面板:C1,未经处理的DG75;C3,潜伏P3HR1/13;右侧面板:C2,化学处理DG75;C4,处理过的P3HR1/16。gp350/220阳性细胞的百分比显示在面板中。这个x个轴表示前向光散射(FSC);这个轴表示gp350/220特异荧光(FL1)的强度。
图2
图2
纯化溶血感染的gp350/220阳性P3HR1/13细胞。用TPA–BA–TGF-β处理P3HR1/13细胞72小时。根据制造商的说明,用gp350/220特异性小鼠单克隆抗体mab-64D7标记溶血感染的细胞,并用顺磁珠(MACS系统)纯化,包被次级抗鼠抗体。每组右上象限的细胞被视为阳性;右下象限的细胞被认为是阴性的。(A) P3HR1细胞诱导72小时后、纯化前和(B)纯化gp350/220阳性细胞后。(C) DG75细胞诱导72小时后、纯化前和(D)纯化gp350/220阳性细胞后。面板中显示了gp350/220阳性细胞的百分比。这个x个轴表示前向光散射(FSC);这个轴表示gp350/220特异荧光(FL1)的强度。
图3
图3
通过核运行实验分析潜伏和溶解感染细胞系中的病毒基因活性。用TPA–BA–TGF-β处理Akata、B95-8、Raji、P3HR1/16和P3HR1/13细胞系(此处未显示)72小时,以诱导EBV的裂解复制。72小时后,纯化细胞核并进行核试运行实验。将反映实际基因活性的放射性标记RNA与几个固定化的基因特异性DNA探针杂交,最后将膜暴露在X射线胶片上。基因特异性探针:通道1,组蛋白H3;车道2,EBNA-2;车道3,LMP-1;车道4,EBER-1;车道5,EBER-2;6号车道,BRLF-1(Rta);第7车道,BZLF-1(Zta);BALF-2(EA)第8车道;第9车道,BcLF-1(VCA)。(A) 化学诱导前的细胞。(B) 细胞诱导72小时后,纯化前。(C) 细胞诱导72小时后,纯化gp350/220阳性细胞。(D) 用抗免疫球蛋白G诱导Akata细胞72小时后,未经纯化。(E) 在PAA存在下用TPA–BA–TGF-β诱导72小时后,P3HR1/16细胞抑制病毒DNA复制。
图4
图4
通过Northern blot分析定量潜伏和溶血感染的P3HR1/13细胞中的EBER转录物。用TPA–BA–TGF-β处理Akata、B95-8、P3HR1/16和P3HR1/13细胞系72小时,以诱导EBV的裂解复制。72小时后,纯化总RNA并进行Northern印迹实验。固定化RNA与(A)EBER-1-特异性、(B)EBER-2-特异性或(C)组蛋白H3特异性(RNA对照)放射性标记探针进行杂交。细胞系:Akata的1号和6号通道;车道2和7,B95-8;车道3和8;P3HR1/13;4号和9号车道,P3HR1/16。通道1至5:潜伏细胞;通道6至9:经过化学处理的细胞。

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