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.1998年7月13日;142(1):117-27.
doi:10.1083/jcb.142.1.117。

连接黏附分子,免疫球蛋白超家族的一个新成员,分布于细胞间连接并调节单核细胞迁移

附属公司

连接黏附分子,免疫球蛋白超家族的一个新成员,分布于细胞间连接并调节单核细胞迁移

我Martìn-Padura等。 J细胞生物学. .

摘要

紧密连接是内皮细胞和上皮细胞间隙最顶端的组成部分。在内皮细胞中,这些结构在控制细胞旁对循环细胞和溶质的通透性方面起着重要作用。唯一已知的位于紧密连接的膜-膜相互作用位点的完整膜蛋白是闭塞素,它在细胞内与细胞骨架和信号蛋白的复杂网络相连。我们在这里报道了一种新的蛋白质(连接黏附分子[JAM])的鉴定,它选择性地集中在不同来源的内皮细胞和上皮细胞的细胞间连接处。共聚焦显微镜和免疫电镜显示,JAM与细胞间隙顶端的紧密连接成分共分布。编码JAM的cDNA克隆定义了一个新的免疫球蛋白基因超家族成员,该基因由两个V型Ig结构域组成。体外发现一种针对JAM(BV11)的单克隆抗体可抑制自发和趋化因子诱导的单核细胞通过内皮细胞单层的迁移。在皮下气囊中给予趋化因子后,用BV11mAb对小鼠进行系统治疗阻断单核细胞浸润。因此,JAM是内皮和上皮连接的一种新成分,在调节单核细胞迁移中发挥作用。

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数字

图9
图9
(A类)小鼠皮肤炎症气袋模型的治疗方案。以三维间隔向动物皮下注射两种不同体积的空气。在第二次空气注射60小时后,静脉注射BV11或相同同型的无关纯化单抗(HB151)或生理盐水。12小时后,经口注射MCP-3。在1小时后杀死小鼠,并用1毫升盐水洗涤袋。出现的单核细胞用红血球染色并计数。(B类)BV11单克隆抗体对体内气囊模型中MCP-3诱导的单核细胞迁移的影响。该图报告了至少三次典型实验的结果。误差条,SD*P(P)通过方差分析和Dunnett检验,与无抗体情况下获得的值相比,<0.001。
图1
图1
培养EC(H5V)单层中BV11抗原、ZO-1和VE-cadherin细胞分布的免疫荧光分析(A类 C类)BV11和肝脏小动脉切片中的扣带蛋白(D–F型). 在培养的EC中,BV11抗原分布(A类)显示了与ZO-1类似的电池-电池接触模式(B类)和VE-cadherin(C类). 在动脉冷冻切片中,在共焦双标记免疫荧光显微镜下,BV11抗原(红色荧光;E类)以类似于扣带蛋白的方式分布在细胞-细胞接触处(绿色荧光;D类). 合并中(F类),BV11抗原染色显示在少数区域与扣带蛋白共定位(黄色荧光;F类). 棒材,5μm。
图2
图2
培养上皮细胞中细胞BV11抗原分布的免疫荧光分析(A类 C类, c(c))在小鼠十二指肠的组织切片中(D类 F类). 培养的上皮细胞(PDV)与扣带蛋白共染(绿色荧光;A类,)和BV11单克隆抗体(红色荧光;B类,b). 水平方向的共焦激光扫描显微照片(A类,B类)和垂直(,b)焦平面和两种染色模式的合并(黄色荧光;C类c(c))如图所示。BV11和扣带蛋白在细胞间隙的近端亚顶端水平共分布。培养的上皮细胞厚度为5-8μm。小鼠十二指肠上皮的冷冻切片与β-连环蛋白共染色(D类)和BV11单克隆抗体(E类). 两种染色模式的合并如所示F类BV11被限制在细胞连接的顶端区域,并且不与β-连环蛋白共定位,β-连环蛋白沿着膜的侧面更广泛地分布。五十、 流明。棒材,5μm。
图3
图3
(A类B类)BV11抗原(JAM)在小鼠十二指肠上皮超薄冰冻切片上的电镜定位。金颗粒装饰着紧密的连接(TJ公司)面积(箭头). 粘附连接处没有免疫金(粘连带,南非)和桥粒(D类). 棒材,0.1μM。
图4
图4
(A类)不同培养细胞中BV11抗原的免疫沉淀分析。生物素化全细胞提取物取自汇合EC(H5V,lane1)、上皮细胞(PDV、lane2)小鼠JAM全长cDNA转染COS细胞)和转染空pCDM8质粒的COS细胞(lane4)和免疫沉淀,如材料和方法中所述,在还原条件下显示36–41 kD的单一条带。左侧报告了分子量标记的迁移。(B类)小鼠不同器官mRNA表达的Northern blot分析:肺(lane)1)、脾脏(lane2),大脑(车道)和心脏(车道4). 分子质量标记的迁移如左图所示。
图5
图5
(A类)小鼠BV11抗原(JAM)cDNA的核苷酸和推导的氨基酸序列。推测的疏水信号肽(带下划线的虚线)和跨膜序列(下划线的)已标记。潜力N个-连接的糖基化位点用粗体标记,并在位置42和185处加下划线。假定的磷酸化位点用粗体标记。可能在两个免疫球蛋白结构域(V型)中形成二硫键的半胱氨酸被装箱。这些序列数据可从GenBank、欧洲分子生物学实验室和日本DNA数据库获得,登录代码为U89915。(B类)小鼠JAM的结构模型。细胞外部分包含两个具有链内二硫键的结构域,这是典型的V型免疫球蛋白样环。两个假定N个-显示了连接的糖基化位点(-•)。
图5
图5
(A类)小鼠BV11抗原(JAM)cDNA的核苷酸和推导的氨基酸序列。推测的疏水信号肽(带点下划线)和跨膜序列(下划线的)已标记。潜力N个-连接的糖基化位点用粗体标记,并在位置42和185处加下划线。假定的磷酸化位点用粗体标记。可能在两个免疫球蛋白结构域(V型)中形成二硫键的半胱氨酸被装箱。这些序列数据可从GenBank、欧洲分子生物学实验室和日本DNA数据库获得,登录代码为U89915。(B类)小鼠JAM的结构模型。细胞外部分包含两个具有链内二硫键的结构域,这是典型的V型免疫球蛋白样环。两个假定N个-显示了连接的糖基化位点(-•)。
图6
图6
免疫荧光分析BV11单克隆抗体在转染JAM的CHO细胞中的分布,并评估转染单分子膜的细胞旁通透性。在稀疏的JAM-CHO细胞中,BV11染色模式仅限于细胞与细胞接触的区域(A类)而在汇合单层中,BV11单克隆抗体沿细胞间连接分布(B类). 对照CHO细胞单层的渗透性(普华永道)JAM转染降低FITC-右旋糖酐(JAM-CHO公司),并添加EGTA(JAM-CHO公司+EGTA公司)消除了这种差异(C类). EGTA没有改变对照CHO细胞的通透性(普华永道+EGTA公司). VE-cadherin的转染(VE-CAD公司)和N-钙粘蛋白(N-计算机辅助设计)以类似于JAM转染的方式降低了细胞旁渗透性。相比之下,截短VE-cadherin的转染(tVE-CAD)是无效的。对来自三个独立实验的三个不同井的样品进行分组。当用其他三个独立克隆的对照细胞和转染细胞进行类似实验时,得到了重叠的结果。
图7
图7
JAM转染CHO细胞中BV12单抗分布的免疫荧光分析(A类),对照CHO细胞(B类)、H5V内皮细胞(C类)和PDV上皮细胞(D类). 与BV11类似(见图1、2和6),BV12染色模式仅限于表达JAM的所有细胞中细胞-细胞接触的区域。棒材,5μm。
图8
图8
JAM抗体对体外单核细胞经内皮细胞迁移的影响。(A类)单克隆抗体BV11(IgG和F(ab′)片段)抑制体外单核细胞自发跨EC单层迁移,而抗JAM单克隆抗体BV12或抗CD34(MEC14)单克隆抗体则不抑制。BV11的同一同型(IgG2b)的一个无关单克隆抗体(MK 2.7)也不活跃。(B类)抗JAM单抗BV11自发阻断(开放式酒吧)MCP-1(100 ng/ml;阴影条)和MCP-3(100 ng/ml)诱导的迁移(实心钢筋)单核细胞在体外跨EC单层。(C类)mAb BV11通过LPS处理的EC单层抑制单核细胞迁移。EC与LPS(50 ng/ml)孵育24 h,然后在添加单核细胞之前清洗,如所述。数据是至少三个四重实验的平均值。误差条,SD*P(P)通过方差分析和Dunnett检验,与在没有抗体的情况下获得的值相比,<0.001。

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