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.1998年6月15日;187(12):2073-9.
doi:10.1084/jem.187.12.2073。

白细胞介素(IL)-1受体相关激酶(IRAK)对多种IL-1信号通路和IL-6产生的最佳诱导需求

附属公司

白细胞介素(IL)-1受体相关激酶(IRAK)对多种IL-1信号通路和IL-6产生的最佳诱导需求

P卡纳卡拉杰等。 实验医学杂志. .

摘要

白细胞介素(IL)-1是一种在炎症中具有多效性作用的促炎细胞因子。IL-1与其受体结合可触发一系列信号事件,包括激活应激激活的有丝分裂原活化蛋白(MAP)激酶、c-Jun NH2-末端激酶(JNK)和p38 MAP激酶以及转录因子核因子κB(NF-kappaB)。IL-1信号传导通过诱导炎症基因产物如IL-6而导致细胞反应。IL-1信号传导中最早的事件之一是IL-1受体相关激酶IRAK和IRAK-2与受体复合体的快速相互作用。IRAK和IRAK-2在IL-1信号通路和随后的细胞反应中的相对作用尚未确定。为了评估IRAK在IL-1信号传导中的重要性,制备并研究了IRAK缺失的小鼠成纤维细胞。在这里,我们报告了IL-1介导的JNK、p38和NF-kappaB的激活在IRAK表达缺陷的胚胎成纤维细胞中均减少。此外,IRAK缺陷小鼠的胚胎成纤维细胞和皮肤成纤维细胞对IL-1产生的IL-6也显著减少。我们的结果表明,IRAK在协调多种IL-1信号通路以最佳诱导细胞反应方面发挥着重要的近端作用。

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数字

图1
图1
IRAK缺陷细胞中缺乏IRAK表达。(A类)小鼠IRAK基因图谱和构建体。用含有小鼠IRAK基因5′部分的基因组DNA片段作为同源区域进行重组。该基因的外显子5至外显子7被新霉素抗性基因盒取代(近地天体). 单纯疱疹病毒胸苷激酶基因(HSV-TK病毒)放置在构件的3′处。限制地点为BamHI(B类)、生态研究院(E类)和SpeI(S公司). (B类)男性胚胎干细胞中单个IRAK等位基因的破坏。使用EcoRI消化来自带有野生型(+)或中断型(−)IRAK基因的胚胎干细胞的基因组DNA,并将其杂交到如A类在杂交中检测到的野生型等位基因的12-kb DNA带和破坏的等位基因2.6-kb带也显示在A类. (C类)IRAK缺陷细胞中缺乏IRAK蛋白。按照材料和方法中的描述制备原代胚胎EF细胞。用10%SDS-PAGE分离来自对照(+)和IRAK缺陷(−)EF细胞的蛋白质,并使用IRAK特异性抗体通过免疫印迹检测IRAK。随后用细胞外信号调节激酶2抗体进行印迹,证明蛋白质负载相等(ERK-2号机组).
图1
图1
IRAK缺陷细胞中缺乏IRAK表达。(A类)小鼠IRAK基因图谱及构建。用含有小鼠IRAK基因5′部分的基因组DNA片段作为同源区域进行重组。该基因的外显子5至外显子7被新霉素抗性基因盒取代(近地天体). 单纯疱疹病毒胸苷激酶基因(HSV-TK病毒)放置在构件的3′处。限制地点为BamHI(B类)、生态研究院(E类)和SpeI(S公司). (B类)男性胚胎干细胞中单个IRAK等位基因的破坏。使用EcoRI消化来自带有野生型(+)或中断型(−)IRAK基因的胚胎干细胞的基因组DNA,并将其杂交到如A类在杂交中检测到的野生型等位基因的12-kb DNA带和破坏的等位基因2.6-kb带也显示在A类. (C类)IRAK缺陷细胞中缺乏IRAK蛋白。按照材料和方法中的描述制备原代胚胎EF细胞。用10%SDS-PAGE分离来自对照(+)和IRAK缺陷(−)EF细胞的蛋白质,并使用IRAK特异性抗体通过免疫印迹检测IRAK。随后用细胞外信号调节激酶2的抗体进行印迹,证明了蛋白质的负载量相等(ERK-2号机组).
图1
图1
IRAK缺陷细胞中缺乏IRAK表达。(A类)小鼠IRAK基因图谱及构建。使用包含小鼠IRAK基因5′部分的基因组DNA片段作为同源区域进行重组。该基因的外显子5至外显子7被新霉素抗性基因盒取代(近地天体). 单纯疱疹病毒胸苷激酶基因(HSV-TK型)放置在构件的3′处。限制地点为BamHI(B类)、生态研究院(E类)和SpeI(S公司). (B类)男性胚胎干细胞中单个IRAK等位基因的破坏。使用EcoRI消化来自带有野生型(+)或中断型(−)IRAK基因的胚胎干细胞的基因组DNA,并将其杂交到如A类在杂交中检测到的野生型等位基因的12-kb DNA带和破坏的等位基因2.6-kb带也显示在A类. (C类)IRAK缺陷细胞中缺乏IRAK蛋白。按照材料和方法中的描述制备原代胚胎EF细胞。用10%SDS-PAGE分离来自对照(+)和IRAK缺陷(−)EF细胞的蛋白质,并使用IRAK特异性抗体通过免疫印迹检测IRAK。随后用细胞外信号调节激酶2抗体进行印迹,证明蛋白质负载相等(ERK-2号机组).
图2
图2
在IRAK缺陷的EF细胞中,缺陷的IL-1诱导p38和JNK活化。用IL-1β(0.1–10 ng/ml)或TNF-α(100 ng/ml。(A类)MAPKAPK2通过免疫沉淀p38磷酸化,c-Jun通过免疫沉淀JNK1磷酸化。p38和JNK1的蛋白质印迹作为负荷对照。(B类)p38和JNK1激活的定量。p38和JNK1激酶分析通过荧光成像仪(分子动力学)进行定量,并根据Western blotting检测到的每个样品的p38或JNK1的数量以及每个分析中未刺激IRAK缺乏EF细胞的活性进行标准化。p38数据代表三个实验,JNK1数据表示为两个实验的平均值。
图3
图3
IL-1减少IRAK缺陷细胞中NF-κB通路的激活。(A类)IRAK缺陷EF细胞中IκB的低效降解。对照(+)和IRAK缺陷(−)细胞在37°C下用IL-1刺激15分钟。用SDS-PAGE分离细胞裂解液中的蛋白质,并用IκB-α特异性抗体检测IκB。随后用细胞外信号调节激酶2特异性抗体对同一滤纸进行印迹,证明样品装载量相等(ERK-2号机组). 蛋白质条带的强度通过密度计进行定量。IL-1刺激的细胞中IκB的量以未刺激细胞中IκB的百分比表示。(B类)IL-1降低IRAK缺陷细胞中NF-κB的活化。在37°C下用IL-1或TNF-α刺激EF细胞30分钟。制备核提取物,并用电泳迁移率变化法测定NF-κB DNA结合活性。这些数据代表了两个具有类似结果的独立实验。
图3
图3
IL-1减少IRAK缺陷细胞中NF-κB通路的激活。(A类)IRAK缺陷EF细胞中IκB的低效降解。用IL-1在37°C下刺激对照(+)和IRAK缺陷(−)细胞15分钟。用SDS-PAGE分离细胞裂解液中的蛋白质,并用IκB-α特异性抗体检测IκB。随后用细胞外信号调节激酶2特异性抗体对同一滤纸进行印迹,证明样品装载量相等(ERK-2号机组). 蛋白质条带的强度通过密度计进行定量。IL-1刺激的细胞中IκB的数量表示为未刺激细胞中的百分比。(B类)IL-1降低IRAK缺陷细胞中NF-κB的活化。在37°C下用IL-1或TNF-α刺激EF细胞30分钟。制备核提取物,并用电泳迁移率变化法测定NF-κB DNA结合活性。这些数据代表了两个具有类似结果的独立实验。
图4
图4
IRAK缺陷细胞中IL-1对IL-6的诱导降低。(A类)IRAK缺陷细胞中IL-6 mRNA的诱导减少。用IL-1或TNF-α在37°C下处理对照(+)和IRAK缺陷(−)EF细胞3小时。通过Northern杂交检测不同样本中IL-6 mRNA的表达,并在荧光成像仪上进行定量。(B类)IRAK缺陷细胞分泌IL-6的诱导减少。控制(+)和IRAK不足(−)EF(顶部)和SF(底部)用IL-1在37°C下刺激细胞8小时。ELISA法测定培养上清中分泌IL-6的量。
图4
图4
IL-1减少IRAK缺陷细胞中IL-6的诱导。(A类)IRAK缺陷细胞中IL-6 mRNA的诱导减少。用IL-1或TNF-α在37°C下处理对照(+)和IRAK缺陷(−)EF细胞3小时。通过Northern杂交检测不同样本中IL-6 mRNA的表达,并在荧光成像仪上进行定量。(B类)减少了IRAK缺陷细胞分泌IL-6的诱导作用。控制(+)和IRAK不足(−)EF(顶部)和SF(底部)用IL-1在37°C下刺激细胞8小时。ELISA法测定培养上清中分泌IL-6的量。

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引用人

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